Workshop - VisualSonics Education

COME SI RAGGIUNGE L’IRFMN
NUOVO ECOGRAFO
AD ALTA RISOLUZIONE
VEVO 3100
La futuristica piattaforma di imaging Vevo 3100 presenta
le tecniche più aggiornate di imaging nell’ambito della
ricerca medica preclinica.
Workshop
La sua esclusiva interfaccia “touchscreen” di utilizzo
“gesture-driven” può essere personalizzata secondo
le necessità di operatori diversi.
Ecografia nel Piccolo Animale
Altri vantaggi sulle versioni precedenti:
•
Facilità di utilizzo e di apprendimento
•
Rapida acquisizione
•
Ridotto speckle noise ed artefatti nelle
Presentazione ed Utilizzo della Nuova
Piattaforma d’Imaging VEVO®3100
immagini grazie alla nuovissima tecnologia
•
Vevo HD brevettata
L’ Istituto di Ricerche Farmacologiche “Mario Negri” si
Una guida in real time sui passi da eseguire
trova a Milano in zona Bovisa nelle vicinanze
del Campus Politecnico (Ingegneria) e della Triennale
secondo pre-impostazione
•
Sistema più compatto del 40% e più manovrabile
•
Sonde leggere ed ergonomiche
•
Monitor a più alta risoluzione
•
Risoluzione assiale di 30um
•
Guide di imaging per più facile
apprendimento direttamente su schermo
•
Sistema di handling dell’animale ridisegnato
Bovisa. E’ facilmente raggiungibile con
il passante
ferroviario, scendendo alle fermate di Bovisa (FNM) o
Villapizzone (FS).
Aula “Poster”
Con le Ferrovie FS
Dalla stazione centrale prendere la metropolitana
linea gialla direzione San Donato e scendere alla
prima fermata Repubblica.
Seguire le indicazioni per il passante ferroviario e al
binario 2 prendere un
treno in direzione Bovisa o
Saronno. Scendere alla fermata Bovisa Politecnico.
e con nuovo video-monitor di controllo fisio
e nuovo tavolino.
22-23 Ottobre 2014
Con le ferrovie NORD
Da Piazza Cadorna prendere il treno alla Stazione
Nord per qualunque direzione e scendere alla
fermata Bovisa Politecnico.
IRCCS - Istituto di Ricerche
Farmacologiche “Mario Negri”
Via G. La Masa 19
20156 Milano
COMITATO
PROGRAMMA
ESPERIENZE IN AMBITO ONCOLOGICO
ORGANIZZATIVO
Mercoledì 22 Ottobre
Lidia Staszewsky
(Dipartimento di Ricerca Cardiovascolare, IRFMN–Milano)
Diaphragmatic structure and motion studied by ultrasonography in
cachectic mice.
Dieter FUCHS
FUJIFILM VisualSonics
Savino LACERENZA
FUJIFILM VisualSonics
Raffaella GIAVAZZI
IRCCS- Istituto di Ricerche
Farmacologiche, Milano
Dipartimento di Oncologia
Roberto LATINI
IRCCS- Istituto di Ricerche
Farmacologiche, Milano
Dipartimento di Ricerca
Cardiovascolare
Lidia STASZEWSKY
IRCCS- Istituto di Ricerche
Farmacologiche, Milano
Dipartimento di Ricerca
Cardiovascolare
Mattina 09:30 – 12:30
• Presentazione del VEVO 3100
Dieter Fuchs
(FujiFilm Visaulsonics)
Vevo technology, the ultimate preclinical Imaging Experience: the
uniqueplatform for Cardio-Vascular , Cancer and Photoacoustic
applications
ESPERIENZE IN AMBITO CARDIOVASCOLARE
Francesca Colazzo
(Laboratorio di Scienze Farmacologiche e Biomolecolari, UnimiMilano)
Ecocardiographic Evaluation of Left Atrial Remodeling in a Mouse
Model of Long – Term Myocardial Infarction
Pierluigi Lesizza
(Medicina Molecolare, ICGEB-Trieste)
Exploitment of ultrasound imaging to assess myocardial function in
heart regeneration studies
Andrea Martini
(Dipartimento di Medicina,Università-Padova)
Hyperdynamic circulatory syndrome in a mouse model transgenic for
SERPINB3
Ilaria Russo
(Dipartimento di Ricerca Cardiovascolare, IRFMN–Milano)
Two different echocardiographic methods versus MRI to calculate left
ventricular ejection fraction in a mouse myocardial infarction model
Marco Mongillo
(Dipartimento di Scienze Biomediche, Università-Padova)
Functional cardiovascuolar assessment in murine models of
proteotoxicity cardiomyophathy
Massimo Venturini
(Radiologia Diagnostica, Ospedale S. Raffaele-Milano)
Preclinical Ultrasound in the murine model: a single-center
Giorgio Mauri
(Unità di Immunologia Molecolare, Istituto Nazionale dei Tumori Milano)
Ultrasound imaging of prostatic cancer models: Mprphology and
therapeutic Approaches
Pierangela Giustetto
(Centro Ricerche Bioparco–Ivrea)
Improved cancer imaging research through innovation:
High frequency ultrasounds and photo-acustic methods
Pomeriggio 14:00 – 17:00
• Dimostrazione ed esecuzione di esami in
ambito cardiovascolare ed oncologico
Giovedì 23 Ottobre
Mattina 09:30 – 16:00
• Prova dello strumento per tutti gli interessati,
previa prenotazione.
La partecipazione del Workshop è gratuita.
Vi preghiamo di inviare conferma, del numero dei partecipanti dal Vs. centro,
via mail all’indirizzo mail: [email protected] entro il 20 Ottobre.
Vi invitiamo inoltre a comunicare entro il 20 Ottobre, i nominativi
degli interessati alla dimostrazione.
Per informazioni si prega di contattare:
Dr. Savino Lacerenza
FUJIFILM VisualSonics, Inc.
Tel: 349 56 80 296
[email protected]
Coffee Break
Antonella Vasamì
IRCCS Istituto di Ricerche Farmacologiche
“Mario Negri”
Tel: 02 39014450
[email protected]
Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri
Servizio Prevenzione e Protezione
Responsabile: dott.ssa Anna Maria Segalini – dott.ssa Paola Boccardo ( Ranica)
ISTITUTO
Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri
sede di: Milano - Bergamo - Ranica
PROCEDURA N° 41
Relativa alle norme da seguire per:
Visitatori aree di stabulazione e sperimentazione
(funzione - attività - processo)
EMESSA DA:
Servizio Prevenzione e Protezione
PREPARATA DA:
Dr.ssa Anna Maria Segalini
DESTINATARI:
Personale esterno all'Istituto in visita
Data di prima emissione: aprile 2008
Data successivi aggiornamenti:
MANUALE DI SICUREZZA - Aprile 2008
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Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri
Servizio Prevenzione e Protezione
Responsabile: dott.ssa Anna Maria Segalini – dott.ssa Paola Boccardo ( Ranica)
PROCEDURA VISITATORI AREE DI STABULAZIONE E SPERIMENTAZIONE IN VIVO
Attività di ricerca in vivo
Rientrano in questa situazione di rischio le attività che fanno uso di animali da laboratorio. Queste
attività generalmente si possono dividere in:
•
ricerca: manipolazione di animali, prelievo di liquidi organici, somministrazione di preparati,
autopsie…;
•
mantenimento e allevamento: pulizia e cambio delle gabbie; pulizia delle zone di stabulazione
Gli animali che vengono utilizzati in Istituto provengono da allevamenti certificati, vengono
correttamente trasportati e stabulati in ambienti puliti in grado di mantenere il loro stato sanitario
(SPF). Frequenti controlli vengono effettuati su animali sentinella e/o animali in sperimentazione per
verificare l'effettivo mantenimento del loro stato sanitario.
Le specie utilizzate in Istituto sono topi e ratti di diverso ceppo
Rischi:
- allergie (dovute a proteine della saliva, dell'urina, delle feci, del siero, dalla forfora del pelo, polveri);
- infezioni diretta da animale (zoonosi) per:
via orale
via respiratoria
via oculocongiuntivale
via transcutanea (a cute integra)
attraverso morso e graffi
- infezione dovuta ad inoculazione di agenti patogeni negli animali da laboratorio;
- rischi dovuti ad utilizzo di sostanze chimiche e/o farmacologiche.
Misure di carattere generale
Riferirsi al personale dello stabulario o al ricercatore dell'istituto da cui si viene accompagnati per le
procedure e il comportamento da tenere nelle aree di stabulazione e sperimentazione.
MANUALE DI SICUREZZA - Aprile 2008
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Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri
Servizio Prevenzione e Protezione
Responsabile: dott.ssa Anna Maria Segalini – dott.ssa Paola Boccardo ( Ranica)
Le aree di stabulazione e sperimentazione sono ad accesso limitato alle sole persone autorizzate.
All'ingresso è obbligatorio indossare i necessari dispositivi di protezione individuale, seguendo una
particolare procedura, mantenendoli integri e correttamente posizionati.
E' vietato lavorare soli all'interno dei locali di stabulazione o sperimentazione
Evitare di sovraffollare i locali di stabulazione e sperimentazione.
Evitare i movimenti improvvisi ed i rumori eccessivi.
E' vietato mangiare o conservare alimenti, bere, fumare.
All'uscita dismettere gli indumenti dedicati all'area
Se si prende parte attiva ad uno studio in vivo è necessario:
•
rispettare il regolamento dello stabulario
•
conoscere il comportamento degli animali che si stanno studiando ed in modo particolare i segni di
aggressività.
•
utilizzare le tecniche di manipolazione specifiche.
•
riferirsi alle procedure di smaltimento dei rifiuti ed alla scheda di sicurezza del prodotto e/o agente
utilizzato durante l’attività; utilizzando i contenitori per materiali biologici o per oggetti taglienti
Io sottoscritto/a ………………………………………………………………………………………….
DICHIARO
di essere idoneo all'attività nelle aree di stabulazione e sperimentazione in vivo (assenza di allergie
accertate ad allergeni presenti tipicamente negli stabulari; non essere in gravidanza; ecc.)
Data…………………………………….
MANUALE DI SICUREZZA - Aprile 2008
Firma………………………………….
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Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri
Servizio Prevenzione e Protezione
Responsabile: dott.ssa Anna Maria Segalini – dott.ssa Paola Boccardo ( Ranica)
PROCEDURE
FOR
VISITORS
TO
THE
ANIMAL
CARE
AND
IN
VIVO
EXPERIMENTATION UNIT
In vivo research
This heading covers at-risk research involving the use of laboratory animals, and can generally be
divided up as follows:
•
research: handling animals, sampling organic liquids, administering preparations, autopsies, etc.
•
animal maintenance and breeding: cage cleaning and changing, cleaning the animal care premises.
The Institute uses
mice and rats of various strains, supplied by certified breeders.
They are
transported correctly and housed in clean surroundings designed to keep them in good health (SPF –
specific pathogen-free).
Frequent checks are made on sentinel animals and/or animals involved in
experiments to check their state of health.
Risks
- Allergies (to proteins in saliva, urine, feces, serum, dander (dandruff), other dust
- Animal infections (zoonosis) transmitted:
orally
by respiratory routes
to the eyes and conjunctiva
transcutaneously (through intact skin)
through scratches or bites.
- Infection due to contact with laboratory animal pathogens
- Risks related to using chemicals and/or pharmacological substances
General measures
The Animal Care Unit staff or the Institute researcher who accompanies you will be able to tell you
what procedures to follow and how to behave in the animal housing and experimentation areas. Access
to these areas is strictly limited, to authorized persons only.
MANUALE DI SICUREZZA - Aprile 2008
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Istituto di Ricerche Farmacologiche Mario Negri
Servizio Prevenzione e Protezione
Responsabile: dott.ssa Anna Maria Segalini – dott.ssa Paola Boccardo ( Ranica)
Individual protective garments must be put on at entry to the Unit, following a specific procedure to
ensure they remain intact and are correctly positioned.
When you leave the Unit, take off the
protective garments.
It is forbidden to work alone in the animal housing and experimentation rooms but avoid overcrowding
these areas. Avoid sudden movements and excessive noise. It is forbidden to eat, drink or smoke in the
Unit, or to store food and drink.
If you take an active part in an in vivo study, please observe the following rules:
•
respect the Animal Care Unit regulations
•
get to know the behavior of the animals being studied, particularly their signs of aggression;
•
use the specific handling techniques;
•
follow the refuse disposal procedures and consult the safety forms for the products/agents employed
in the research. Use the appropriate containers for biological waste or sharp objects.
I, the undersigned (Name) …………………………………………………………………………….
DECLARE
That I am in a suitable condition for work in the animal housing and in vivo experimentation area, with
no known allergies to the substances typically found in such units; I am not pregnant, and have no other
known risk factors.
Date…………………………………….
Signature………………………………
….
MANUALE DI SICUREZZA - Aprile 2008
5/5
R S 03_ 02
VISITOR ACCESS TO
ANIMAL FACILITY
Data: 14/09/201
Rev.:01
In vigore da:
20/09/2010
DATE ______________________________
IRFMN
REFERENT
NAME________________________________________________________________________________________
LABORATORY AFFILIATION___________________________________________________________________
POSITION____________________________________________________________________________________
WILL BE THE REFERENCE PERSON TO ANIMAL FACILITY ACCESS
VISITOR
FOR Ms/Mr-Dr_________________________________________________________________________________
AFFILIATION_________________________________________________________________________________
______________________________________________________________________________________________
DATE_________________________
FROM HOUR ________________________ TO HOUR ____________________________________________
FOR THE FOLLOWING REASONS: ___________________________________________________________
REF
REFERENT SIGNATURE _____________________________
THE VISITOR
VISITOR
MR/MRS - DR ______________________________________________________________________________
DECLARES:
1- I have read and signed the form: PROCEDURE FOR VISITORS TO THE ANIMAL CARE AND IN VIVO
EXPERIMENTATION UNIT.
2- I DO NOT HAVE gerbils, mice, rats, rabbits, hamsters, ferrets, guinea pigs, etc…
3- I DO NOT SOFFER claustrophobia
4- I DO NOT HAVE allergies
5- I HAVE NOT ATTENDED any other animal facilities in the previous 14 days. If yes, please indicate the name
of the structure visited and the date of visit
NAME OF THE VISITED
STRUCTURE
DATE OF VISIT
Date_____________________________
VISITOR SIGNATURE_____________________________
RESPONSIBLE OF ANIMAL CARE UNIT SIGNATURE___________________________________
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