OpusoloAnisakis - O.R.S.A. Campania

Transcript

OpusoloAnisakis - O.R.S.A. Campania
Valutazione della qualità igienico-sanitaria del
pesce azzurro
pescato nel golfo di Napoli
Università degli studi di Napoli Federico II
Dipartimento di Scienze Zootecniche ed Ispezione Alimenti Napoli
Con il contributo della Provincia di Napoli”
Questa iniziativa è contro il “sistema” della camorra
1
Valutazione della qualità igienico-sanitaria del
pesce azzurro
pescato nel golfo di Napoli
di A. Anastasio°,R. Marrone°,M. Panzardi°,G. Palma*
°Università di Napoli
*Direttore del Mercato Ittico all’Ingrosso di Pozzuoli
Università degli studi di Napoli Federico II
Dipartimento di Scienze Zootecniche ed Ispezione Alimenti Napoli
Con il contributo della Provincia di Napoli”
Questa iniziativa è contro il “sistema” della camorra
2
Valutazione della qualità igienico-sanitaria del pesce azzurro pescato nel golfo di
Napoli
Gli agenti chimici o biologici in grado di minacciare la sicurezza degli alimenti sono
molteplici ed estremamente complessi i meccanismi attraverso i quali essi possono
agire. Data la natura interrelata della produzione alimentare, una politica efficace di
sicurezza alimentare non può prescindere dall’attuazione di sistemi di valutazione e
monitoraggio dei rischi e di controllo che devono necessariamente cominciare dalla
produzione primaria, ed, attraverso l’eventuale trasformazione, coinvolgere i diversi
livelli della filiera.
I prodotti della pesca rappresentano una delle principali fonti di approvvigionamento
proteico a livello mondiale. In Italia ed in Campania in particolare, le attività legate
alla pesca ed alla piccola pesca in particolare, hanno avuto una notevole importanza
per lo sviluppo sociale, culturale ed occupazionale. Le produzioni della piccola pesca,
infatti, sebbene con quantità ridotte rispetto a quelle garantite da altri sistemi di
cattura, sono spesso caratterizzate da un elevato valore commerciale. Lo stretto
legame con un areale geografico relativamente limitato e gli sbarchi giornalieri
determinano un elevato
livello di apprezzamento riconducibili alla qualità
organolettica delle specie catturate ed alla freschezza del prodotto.
Tuttavia le problematiche connesse al consumo dei prodotti ittici sono molteplici e
particolare importanza riveste la possibile presenza di parassiti, in quanto essi oltre a
causare problemi nel pesce (gravi stati anemici e di emaciazione, diminuzione delle
performance riproduttive) ed indurre modificazioni dei profili chimici e nutrizionali
delle carni possono essere responsabili di zoonosi.
Al fine di fornire un contributo alla valutazione della qualità igienico sanitaria del
pesce azzurro del golfo di Napoli, il presente progetto si pone l’obiettivo di
identificare e valutare la prevalenza di parassiti responsabili di zoonosi in alici
pescate nelle acque del golfo di Napoli e di Pozzuoli.
3
Anisakiosi o Anisakidosi
E’ una zoonosi parassitaria provocata dalla ingestione di nematodi anisakidi in
seguito al consumo di preparazioni alimentari a base di pesci di mare crudi o poco
cotti (sushi, sashimi, pesce blandamente affumicato o marinato).
Una volta ingerite queste larve determinano la cosiddetta sindrome da “larva
migrante” in quanto si possono localizzare a livello di cavità addominale, duodeno,
esofago, mesentere, parete addominale, sul grande omento, pancreas, fegato , lingua,
polmone, gangli linfatici, tessuti peritesticolari.
Una volta penetrate in una di queste sedi determinano una reazione da corpo estraneo
che può evolvere come un flemmone, un ascesso, un ascesso-granuloma o più
frequentemente come granuloma.
La patogenesi non è dovuta solo all’azione fisica della perforazione causata dalle
larve ma anche alla reazione allergica che esse possono scatenare. Nel caso della
localizzazione allo stomaco l’individuo, già dopo circa 4-5 ore dall’ ingestione,
avverte una forte dolorabilità a livello dell’addome (in particolare nella regione
epigastrica); il mal di stomaco è accompagnato da sensazioni di nausea e da vomito.
Se, invece, la penetrazione delle larve si verifica a livello dell’intestino i primi
sintomi appaiono dopo circa una settimana; in questi casi la più o meno violenta
dolorabilità viene avvertita nella parte bassa dell’ addome; anche qui si avvertono
sensazioni di nausea e di vomito, ma esse sono complicate da fenomeni di
meteorismo e dalla comparsa di febbre (M. T. Manfredi univ. di Milano Parassiti nei
pesci e implicazioni sanitarie).
4
Tab.1 Casi di anisakiosi nel mondo (Fioravanti et al, 2006)
Anisakiosi nel mondo
Olanda: dal 1955 al 1968
Anisakis)
160 casi (sostenuti prevalentemente dal genere
Prima segnalazione ufficiale: Van Thiel (1960) descrive in Olanda anisakiosi
umana in correlazione all’abitudine di consumare aringhe affumicate a freddo
(“green herring”).
Giappone: 16.090 casi diagnosticati fino al 1990 (sostenuti prevalentemente da
Anisakis - solo circa 50 casi da Pseudoterranova)
Usa: circa 10 casi/anno diagnosticati (sostenuti frequentemente da larve di
Pseudoterranova)
Francia: circa 6-7 casi all’anno, dovuti soprattutto a larve di Anisakis
Casi sporadici in Spagna, Germania, Danimarca, Inghilterra, Norvegia, Belgio,
Cile,Canada
In Italia il 1° caso ad eziologia certa risale al 1996, la paziente presentava una
violenta epigastralgia associata a vomito e diarrea.
Parassiti del genere Anisakis
Alla famiglia Anisakidae appartiene la subfamiglia Anisakinae, con i generi Anisakis,
Contracaecum e Pseudoterranova (sin. Phocanema, Terranova, Porrocaecum) e la
subfamiglia Raphidascaridine, con il genere Hysterothylacinum. Al genere Anisakis
appartengono tre specie:
1) A. Pegreffii (in precedenza denominata A. Simplex A), rinvenuta nei pesci del Mar
Mediterraneo;
2) A. Physeteris rinvenuta nei pesci del Mar Mediterraneo;
3) A. Simplex S.S. (in precedenza denominata A. Simplex B), rinvenuta nei pesci dell’
Oceano Atlantico e Mar del Nord.
Sono parassiti più o meno filiformi, a sezione circolare e spesso con le estremità
assottigliate. Hanno grandezza variabile ed apparato digerente completo. I sessi sono
5
separati: dall’uovo si sviluppa un embrione, che può liberarsi quando un ospite lo
ingerisce oppure si libera attivamente.
La localizzazione naturale del parassita adulto è il tratto gastrointestinale di
mammiferi marini, che eliminano con le feci le uova del parassita. Le prime forme
larvali sono reperibili in crostacei planctonici, che costituiscono il primo anello del
ciclo riproduttivo e nei quali il parassita evolve sino al terzo stadio.
Il pesce costituisce l’ospite intermedio di questo parassita, mentre numerosi
mammiferi marini e l’uomo rappresentano gli ospiti definitivi, nei quali le larve si
localizzano nello stomaco e nell’intestino divenendo adulte.
Le uova eliminate con le feci in ambiente acquatico embrionano, originando la larva
L1 e, dopo una prima muta in L2 che, se ingerita, da un crostaceo, si trasforma in L3,
ripetendo il ciclo biologico prima descritto ( Fig.1).
Fig. 1
Nel pesce la localizzazione viscerale è nettamente prevalente rispetto a quella
muscolare; quest’ultima, pur essendo possibile anche intra-vitam, inizia già dalle
prime ore dopo la morte del pesce e viene facilitata da ritardata, insufficiente o
discontinua refrigerazione (Tab. 2)
6
Tab. 2 : Localizzazione delle larve (Fioravanti et al, 2006)
Localizzazione
dell’anisakis
cavità peritoneale e visceri
in Localizzazione dell’anisakis a livello
muscolare anche intra vitam
Aringa
Nasello
Suro
Merlano
Sgombro
Scorfano
Triglidi
Resistenza delle larve
Le larve di parassiti anisakidi hanno diverso comportamento ai trattamenti termici, in
particolare si è visto che a T°< 30°C esse non sopravvivono oltre i 5 minuti; a T°
<17°C resistono invece per circa 5 ore. A
-10°C la sopravvivenza supera la
settimana, mentre a -5 circa tre settimane e quasi 50 giorni alla temperatura di - 2°C.
Mentre a T° ≥ a 60°C le larve sono devitalizzate immediatamente, occorre un quarto
d’ora a 50°C e circa un’ora e venti minuti a 45°C.
Nei confronti di trattamenti tecnologici il comportamento è alquanto diverso.
La marinatura infatti riesce a devitalizzare le larve soltanto dopo circa 4 settimane
con una concentrazione del 6% di sale e del 4% di acido acetico; i tempi sono più
brevi se il pesce è marinato in una soluzione con almeno il 6,5% di sale e con un pH
inferiore a 4 . Il solo aceto è efficace dopo due settimane, mentre la mostarda dolce
lo è già prima di una settimana .
7
In seguito ad affumicatura la percentuale di sopravvivenza di larve di Anisakis è
dell’87% circa se la temperatura impiegata è di 28°C; mentre si abbassa al 14,4% se
la temperatura sale a 40°C. In tutti i casi invece in cui il procedimento di
affumicamento a caldo prevede l’uso di una temperatura che oscilli fra 53 e 60°C la
devitalizzazione è completa.
PARTE SPERIMENTALE
L’indagine è stata condotta su un numero di 4117 alici (Engraulis encrasilocus)
catturate nelle acque prospicienti il golfo di Napoli (lat. 40°50’0” e long. 14°15’0”) e
analizzate singolarmente. In particolare i pesci su cui è stata effettuata la ricerca
provenivano dai seguenti specchi d’acqua: Ischia (27,78%), Procida (17,29%), Licola
(15,66%), Pozzuoli-Miseno (10,68%), Castellammare di Stabia (12,50%) e Napoli
(16,05%) (Fig.2).
8
Zone di pesca analizzate
Ischia
Procida
Licola
Pozzuoli-Miseno
Castellammare di Stabia
Napoli
Fig. 2
Il campionamento è stato effettuato presso il Mercato Ittico di Pozzuoli al momento
dello sbarco dei pescherecci (Figg. 3-4-5-6).
Fig.3
Fig.4
Fig.5
Fig.6
9
In questa fase si è “tracciato” il campione riportando su un’apposita scheda (Tab. 4) il
nome del peschereccio, la zona di pesca ed il quantitativo pescato totale riferito alla
battuta di pesca e il quantitativo rappresentativo di alici campionate.
Tab. 4 : Schema della scheda con cui sono stati tracciati i campioni
Peschereccio
Luogo di pesca
Kg alici campionate
N° alici campionate
M/P Angela Madre
Pozzuoli-Miseno
3,7
440
M/P Ciro Padre NA 2285
Procida
2,3
183
Campania Import S.r.l. Portici/NA
Sorrento
1,35
134
M/P Angela Madre
Procida-Ischia
3,3
529
D'Alessio Giuseppe
Castellammare di Stabia
2,05
140
D'Alessio Giuseppe
Castellammare di Stabia
1,7
135
D'Alessio Giuseppe
Castellammare di Stabia
1,2
106
M/P Blu fish
Ischia
0,6
84
Coop Santaniello
Licola
1,7
265
M/P Blu fish
Licola
2,7
380
M/P S. Vincenzo
Ischia
2
280
M/P S. Vincenzo
Ischia
2,4
523
M/P S. Vincenzo
Ischia
2,1
257
10
Fig.7
Fig.8
Ricerca parassita
La ricerca delle larve di Anisakidi è stata eseguita secondo lo schema di seguito
descritto:
Le alici prelevate con dalla cassetta (Figg. 7-8) e pronte per la commercializzazione,
venivano deposti su un ripiano (Figg. 9-10) dove si procedeva all’apertura della
cavità celomatica, infilando la punta delle forbici nell’apertura anale e tagliando
lungo la linea ventrale fino alla base degli opercoli. Si effettuava un altro taglio col
coltello perpendicolare al taglio ventrale, indi si solleva il lembo di tessuto laterale e
si osservavano i visceri contenuti in cavità celomatica. Si ispezionavano
accuratamente lo stomaco, il fegato, la milza, le gonadi, il mesentere e tutto il
peritoneo, nonché l’intestino (Figg. 11-12-13-14-15).
11
Fig.9
Fig.10
Fig.11
Fig.12
Fig.13
Fig.14
Fig.15
Fig.16
La vitalità delle larve, eventualmente presenti, è stata verificata direttamente in cavità
celomatica. Successivamente si è proceduto all’osservazione del tessuto muscolare, di
12
ogni singolo esemplare, mediante transilluminatore. Le alici risultate infestate
venivano misurate dall'apice del muso, a bocca chiusa, fino all'estremità del lobo più
lungo della pinna codale (Fig.16). Le larve ritrovate venivano poste singolarmente in
provette eppendorf con una goccia di acqua distillata e poi stoccate a temperatura di 20°C .
Identificazione
L’identificazione delle forme larvali del genere Anisakis è stata effettuata presso il
Dipartimento di Scienze di Sanità Pubblica dell’Università La Sapienza di Roma
mediante l’utilizzo dei marcatori genetici ottenuti dall’elettroforesi moltilocus, tale
tecnica permette la precisa identificazione a qualsiasi stadio di sviluppo dei parassiti
sulla base dei loci enzimatici diagnostici evidenziati tra le specie di Anisakis.
In particolare i diversi alleli osservati ai loci enzimatici diagnostici sono stati: Mdh,
Adk, Mpi , Ap, Pgi, 6-Pgdh, GOT esistenti nelle diverse specie di Anisakis (Figg. 1718-19-20-21-22).
Fig.17
Fig.18
13
Fig.19
Fig.21
Fig.20
Fig.22
RISULTATI DELLA SPERIMENTAZIONE
Dei 4117 campioni esaminati, 20 esemplari sono risultati positivi all’esame visivo
della cavità celomatica e 1 all’esame della muscolatura con transilluminatore. La
maggior parte delle larve è stata ritrovata in soggetti pescati nello specchio d’acqua a
largo di Pozzuoli-Miseno (7) e Napoli (7), 4 sono state trovate in alici raccolte lungo
la fascia costiera davanti al comune di Licola (NA), 2 in esemplari provenienti da
Castellammare di Stabia (NA), 1 a Procida (NA). La maggior parte delle larve (19)
sono state evidenziate in alici di lunghezza compresa tra i 10 e i 12 cm, soltanto due
provenivano da esemplari di lunghezza inferiore ai 10 cm (9 cm).
14
La valutazione dei livelli di infestazione parassitaria è stata calcolata mediante i
parametri di seguito riportati:
1) Prevalenza (P), espressa usualmente in percentuale, è data dal rapporto del numero
totale di ospiti parassitati e il numero totale di ospiti esaminati, nella sperimentazione
il valore è stato pari a 0.51%.
2) Abbondanza (A), espressa come il rapporto tra il numero totale di esemplari di una
specie parassitata ritrovati nel campione della specie ospite e il numero di ospiti
esaminati, è risultata essere pari a 0.00024.
3) Intensità media (Im) che esprime il rapporto tra il numero totale di esemplari di
una specie parassita ritrovata nel campione della specie ospite e il numero di ospiti
parassitati da quella specie, è stata pari a 1.
Mediante osservazione al microscopio ottico ed analisi morfologica della struttura
della larva si è accertato che i parassiti appartenevano alla specie Anisakis spp. ed
erano allo stadio L3 .
L’elettroforesi multilocus dei marcatori genetici (Mattiucci et al,1986;1997;2001a
2001b) ha permesso l’identificazione delle larve come tutte appartenente alla specie
Anisakis pegreffi.
DISCUSSIONE
I cambiamenti gastronomici osservati negli ultimi anni con l’avvento di una cucina
che prevede la somministrazione di pesce crudo e il ritorno alle tradizioni locali con
preparazioni a base di pesce blandamente cotto o poco trattato impongono una stretta
sorveglianza igienico-sanitaria sui prodotti ittici.
Per quanto riguarda le parassitosi dei prodotti della pesca il recente
Reg. CE
2074/2005, recante modalità di attuazione relative a taluni prodotti di cui al Reg. CE
853/2004 e all’organizzazione di controlli ufficiali a norma dei Regg. 854/2004 e
882/2004, stabilisce che spetta agli operatori del settore effettuare controlli in tutte le
fasi della produzione dei prodotti della pesca affinché quelli palesemente infestati da
15
parassiti non siano immessi sul mercato per il consumo umano. Stabilisce in
particolare che il controllo visivo deve essere effettuato su un numero rappresentativo
di campioni. I responsabili degli stabilimenti a terra e le persone qualificate a bordo
delle navi officina determinano, in funzione della natura dei prodotti della pesca,
della loro origine geografica e del loro impiego, l’entità e la frequenza dei controlli.
Qualora sia tecnicamente necessaria, la speratura dei filetti dovrà essere inclusa nel
piano di campionamento.
Parallelamente il Regolamento 853/2004 al fine di tutelare la sicurezza del
consumatore dalla ingestione di larve di parassiti, stabilisce che è necessario
sottoporre le specie ittiche ritenute pericolose in quanto frequentemente infestate, a
trattamento termico (62 °C per 10’) e quelle destinate a consumarsi praticamente
crude al congelamento a – 20 °C per 24 ore.
E’ opportuno ricordare che con il congelamento in determinate specie ittiche si
verificano modificazioni delle caratteristiche organolettiche (consistenza in primis)
che possono condizionare il destino commerciale del pesce.
Tuttavia lo stesso
regolamento, più volte citato, all’art.11, riporta che “…..possono essere fissate
misure di attuazione o adottate modifiche, tra le altre cose, per:
specificare criteri volti a determinare quando i dati epidemiologici indicano che una
zona di pesca non presenta rischi sanitari con riguardo alla presenza di parassiti e, di
conseguenza, quando l'autorità competente può autorizzare gli operatori del settore
alimentare a non congelare i prodotti della pesca.
In altre parole, relativamente alla presenza dei parassiti in alcuni prodotti della pesca,
è possibile derogare al trattamento col freddo per i pesci consumati crudi o
praticamente crudi, nel caso in cui:
a) i dati epidemiologici disponibili indichino che le zone di pesca
d’origine non presentano rischi sanitari con riguardo alla
presenza di parassiti;
b) le autorità competenti lo autorizzino.
16
E’ opportuno però sottolineare che la deroga suddetta può essere concessa solo nel
caso in cui sussistano dati epidemiologici affidabili viste le fluttuazioni biologiche di
diversi parassiti zoonosici, Anisakis in primis.
In base al Codex Alimentarius la presenza di nematodi nei tessuti dei pesci è tollerata
fino a 5 parassiti/Kg di carne, laddove parassita visibile è un parassita di almeno 3
mm di diametro o 1 cm di lunghezza.
Da quanto detto e considerato i risultati di questa sperimentazione, pur se preliminari
in quanto svolta per un periodo limitato e su un numero di soggetti contenuto,
verrebbe provato che le alici pescate le acque prospicienti la città e la provincia di
Napoli, potrebbero rientrare nella deroga summenzionata e quindi poter essere
destinate alla lavorazione senza il preventivo trattamento di congelamento. La
prevalenza d’infestione riscontrata è infatti notevolmente al di sotto dei valori fissati
dal Codex Alimentarius, da quelli riportati in letteratura e accettati come soglia;
Se gli studi epidemiologici futuri confermeranno questi risultati il pesce azzurro di
queste zone ed in particolare le alici, uno dei prodotti ittici che maggiormente le
caratterizza, sarà enormemente rivalutato, con notevoli ritorni economici potendo
essere consumato per preparazioni gastronomiche che ne prevedono l’uso crudo sena
il preventivo trattamento con il freddo.
In conclusione è opportuno tuttavia ribadire, anche alla luce del presente status
normativo, che la profilassi dell’anisakiasi umana da consumo di pesce azzurro passa
oltre che da un trattamento di congelamento per quei pesci destinati ad essere
consumati crudi o blandamente trattati anche e soprattutto da un’approfondita
conoscenza epidemiologica non disgiunta da un'efficace opera di educazione sanitaria
ed alimentare del consumatore.
17
Tab. 3 : Metodi di prevenzione e controllo (Fioravanti et al, 2006)
Metodi di prevenzione e controllo
Educazione alimentare
Eviscerazione rapida dopo la pesca
Controllo ispettivo (Reg. Ce 853/ 854/2004; Reg CEE 2074/05)
Trattamenti del prodotto ittico atti a devitalizzare le larve:
Alte temperature:
70°C (1”)
50°C (15’)
45°C (78’)
Basse temperature:
-35°C (15 ore)
-20°C (24-48 ore)
-10°C (oltre 7 giorni
Bibliografia:
1)
2)
3)
4)
5)
6)
International Day for Zoonoses and Foodborne Diseases 24/05/2007 Andrea Gustinelli – DSPVPA, Università
di Bologna.
Maggi P., Caputi-Lambrenghi O., Scardino A., Scoppetta L., Saracino A., Valente M., Pastore G., Angarano
G.: Gastrointestinal infection due to Anisakis simplex in Southern Italy. European Journal of Epidemiology.
2000, 16: 75-78.
Pampiglione S., Rivasi F., Criscuolo M., De Benedittis A., Gentile A., Russo S., Testini M., Villani M.:
Human Anisakiosis in Italy: A Report of Eleven New Cases. Pathology Research and Practice. 2002, 198: 429434.
Stallone O., Paggi L., Balestrazzi A., Mattiucci S., Montanari M.: Gastric anisakiosis in Italy: case report. The
Mediterranean Journal of Surgery and Medicine. 1996, 1: 13-16.
Marrone R., Damiano S., Panzardi M., Palma G., Mattiucci S., Anastasio A. “Occurrence of anisakis pegreffii
larvae in the anchovy engraulis encrasicolus caught off naples gulf (italy)” 7th International Symposium on
Fish Parasites, Viterbo (RM) 24-25-26-27-28 Settembre 2007.
Panebianco A., Lo Shiavo A.: Ulteriori indagini sulla presenza di larve di Anisakis in aringhe salate e
affumicate. Riscontro di una larva viva. Industrie alimentari. 1987, 252: 778-780.
18