Sparus au
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Biol. Mar. Medit. (2006), 13 (2): 136-137 L. Pane, C. Barisione, M. Feletti*, G.L. Mariottini Dipartimento di Biologia, Università di Genova, Viale Benedetto XV, 5 – 16132 Genova, Italia. [email protected] *Regione Liguria, Dipartimento Agricoltura-Protezione Civile, Produzioni Agroalimentari, Genova, Italia. ALGHE FITOPLANCTONICHE IMMOBILIZZATE NELL’ALIMENTAZIONE DI LARVE DI SPARUS AURATA IMMOBILIZED PHYTOPLANKTON IN LARVAL FEEDING OF SPARUS AURATA Abstract - Feeding systems able to provide balanced nourishment are important in aquaculture practices. In this study, free or immobilized in sodium alginate microparticles Tetraselmis suecica (Chlorophyta) and Chlorella minutissima (Chlorophyta) were used to feed fish larvae. The diet with immobilized algae showed good results in larvae of bigger size, which showed the best growth and reduction of gill cover malformity. Key-words: phytoplankton, aquaculture, nutrition, alginates. Introduzione - Le diete artificiali microincapsulate a composizione nutrizionale controllata stanno suscitando un crescente interesse nell’allevamento di specie ittiche (Jones et al., 1974; Yúfera et al., 1996). Tuttavia, sebbene esse si siano rivelate appetibili e digeribili (Jones et al., 1974; Önal e Langdon, 2000) l’utilizzo di cibo vivo è ancora essenziale per la sopravvivenza e lo sviluppo delle larve di pesci. Nell’alimentazione delle larve di Sparus aurata, le sperimentazioni hanno fornito risultati incoraggianti soprattutto utilizzando diete microincapsulate costituite da miscele di cibo vivo ed artificiale (Yúfera et al., 1996). In questo studio è stata valutata l’efficacia dell’utilizzo delle alghe fitoplanconiche Tetraselmis suecica e Chlorella minutissima, libere ed immobilizzate in alginato, nell’alimentazione di larve di Sparus aurata. Materiali e metodi - Colture di Tetraselmis suecica (Kylin) Butcher e di Chlorella minutissima (Fott e Nováková) sono state mantenute in soluzione di Walne+vitamina B1 e B12, a 18±0,5 °C con fotoperiodo luce-buio 12-12 ore. La densità cellulare è stata valutata tramite conteggio (emocitometro Thoma). Cellule in stadio esponenziale di crescita sono state immobilizzate in gel di alginato (Pane et al., 1998) e mantenute come sopra riportato. Le larve di Sparus aurata sono state acquisite (avannotteria Valle Figheri, VE) in due lotti di diversa età (LP: 50 giorni; LG: 75 giorni) e mantenute in acquario per 26 giorni con alimentazione a base di dieta commerciale (C) (Salt Creek Feeds for Aquaculture, Salt Lake City, USA) e diete sperimentali: S1 (miscela di dieta commerciale 80%+ alghe immobilizzate in alginato di sodio), S2 (nauplii I-II di Artemia salina), S3 (miscela di dieta commerciale 80%+mistura di: gel di alginato, dieta commerciale, acido l-ascorbico ed alghe fitoplanctoniche essiccate 20%). Le diete C, S1 e S2 sono state utilizzate per nutrire tre gruppi di LP di 18 larve ciascuno; sono stati forniti 0,25 g/ind./die delle diete C ed S1 e nauplii di Artemia salina ad libitum (S2). Due gruppi di larve LG di 100 individui ciascuno sono state nutrite per 74 giorni con C e S3; la quantità di alimento somministrata è variata con l’accrescimento. Su alcuni esemplari sono stati valutati alcuni parametri biometrici e ponderali. Risultati - I risultati migliori sull’accrescimento di LP di S.aurata sono stati ottenuti con S2, che sono paragonabili a quelli di C, mentre S1 ha fornito risultati più scarsi. Le LP hanno mostrato un incremento medio di 3,3, 0,2 e 5,1 mm in lunghezza con nutrizione a base di C, S1 e S2 rispettivamente, con un corrispondente incremento in peso secco di 5,0, 0,2 e 9,8 mg e in sostanza organica di 7,0, 5,8 e 8,5%. Le LG 137 hanno mostrato un buon incremento dimensionale e ponderale. I valori riscontrati sono stati pressoché equivalenti nei due gruppi; tuttavia, ad eccezione del peso secco, le larve nutrite con S3 hanno mostrato un incremento più sensibile di tutti i parametri considerati. Nelle larve nutrite con S3 si è notata una minore incidenza di malformazioni distali dell’opercolo. Conclusioni - L’immobilizzazione in alginato di sodio ha permesso una buona crescita delle alghe in coltura. Con questa tecnica, già applicata in precedenti ricerche (Pane et al., 1998; Pane et al., 2005; Teshima et al., 2000), le alghe hanno mostrato una più alta resa di crescita, un valore energetico più consistente ed una maggiore produzione di metaboliti (dati non riportati) rispetto alle alghe coltivate in fase libera. Le larve di orata hanno mostrato una sopravvivenza superiore al 95% ed un’attiva ricerca del cibo in tutte le condizioni sperimentali. Tra i risultati si segnala la minore presenza di malformazioni dell’opercolo nelle LG alimentate con dieta sperimentale. Questo dato, che necessita tuttavia di ulteriori conferme, è in linea con quanto riportato in letteratura in relazione all’aggiunta di alginato alle diete per gli stadi giovanili di pesci e di crostacei marini; questa sostanza, unitamente alla vitamina C, sarebbe in grado di potenziare le difese immunitarie degli organismi in allevamento e di favorirne, pertanto, una migliore e sana crescita (Miles et al., 2001; Ortuño et al., 2003), consentendo anche di ridurre l’incidenza di anomalie opercolari che sono presenti abbondantemente in esemplari allevati (Coves e Gasset, 1993). Ringraziamenti - Si ringrazia il Dott. Attilio Spanò, dell’Avannotteria di Valle Figheri (VE), per aver fornito le larve di S. aurata. Bibliografia COVES D., GASSET E. (1993) - Gilthead sea bream (Sparus aurata) intensive larva rearing in closed system. International Conference World Aquaculture ’93, Torremolinos, Spain, May 26-28, 1993, European Aquaculture Society, Special Publication, 19: 342. JONES D.A., MUMFORD J.P., GABBOT P.G. (1974) - Microcapsules as artificial food particles for aquatic feeders. Nature, 247: 233. MILES D.J.C., POLCHANA J., LILLEY J.H., KANCHANAKHAN S., THOMPSON K.D., ADAMS A. (2001) - Immunostimulation of striped snakehead Channa striata against epizootic ulcerative syndrome. Aquaculture, 195: 1–15. ÖNAL U., LANGDON C. (2000) - Characterization of two microparticle types for delivery of food to altricial fish larvae. Aquacult. Nutr., 6: 159. ORTUÑO J., ESTEBAN M.A., MESEGUER J. (2003) - The effect of dietary intake of vitamins C on the stress response of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish Shellfish Immunol., 14: 145. PANE L., FELETTI M., BERTINO C., CARLI A. (1998) - Viability of the marine microalga Tetraselmis suecica grown free and immobilized in alginate beads. Aquacult. Int., 6: 411. PANE L., MARIOTTINI G.L., FRANCESCHI E. (2005) - Zeolite and immobilized phytoplanktonic algae in culture: growth and energetic parameters. Biol. Mar Medit., 12 : 642-645. TESHIMA S., ISHIKAWA M., KOSHIO S. (2000) - Nutritional assessment and feed intake of microparticulate diets in crustaceans and fish. Aquacult. Res., 31: 691-702. YÚFERA M., SARASQUETE M.C., FERNÁNDEZ-DIÁZ C. (1996) - Testing protein-walled microcapsules for the rearing of first-feeding gilthead sea bream (Sparus aurata L.) larvae. Mar. Freshw. Res., 47: 211-216. Ricerca effettuata su fondi SFOP-MPAF.