Fase Preanalitica con capillari

Come evitare errori preanalitici
nel prelievo capillare per l' emogasanalisi
Di Gitte Wennecke e Malene Dal Knudby, Radiometer Medical ApS.
Copyright © 2009 Radiometer Medical ApS, Denmark.
I contenuti possono essere riprodotti se la fonte è conosciuta.
Stampato in Danimarca da Radiometer Medical ApS, 2700 Brønshøj,
2009. ISBN978-87-91026-06-5
994-414. 200911D.
In vitro diagnostic medical device.
Dati soggetti a modifiche senza preavviso.
Radiometer, i loghi Radiometer , ABL, AQT, TCM, RADIANCE, PICO e
CLINITUBES sono marchi di fabbrica di Radiometer Medical ApS.
Come evitare errori della fase
preanalitica in emogasanalisi
Quasi il 60 % di tutti gli errori commessi in emogasanalisi
avviene nella fase preanalitica [1]. Fortunatamente
molti di tali errori si possono evitare.
Questo manualetto offre informazioni rapide e dirette
sugli errori più comuni relativi alla fase preanalitica
del prelivo di sangue capillare e, sopratutto, fornisce
indicazioni su come prevenirli.
Il formato tascabile consente di portarlo sempre con sè,
rendendolo un prezioso strumento per il lavoro di
ogni giorno.
Per maggiori informazioni su questo argomento ed altri,
relativi all'emogasanalisi, non esitate a contattarci:
A. De Mori SpA
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20138 Milano
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Attenzione: In generale i risultati ottenuti da
capillare, in particolare i valori di pO2, vanno
interpretati con cautela, dato che potrebbero
risultare distorti a causa della tecnica di
prelievo anaerobico.
In alternativa effettuare, se possibile, un
prelievo arterioso.
Preparazione C
Identificazione campione
Campionamento
n
se
en
sJ
Jen
FIG. 1.
Transporto e
conservazione
Analisi
Prelievo
Scalpo Fetale
4
Jens Jensen
21955485156
5548515
L' identificazione del paziente deve essere fatta prima del
prelievo. Se possibile utilizzare due ID paziente [2].
Per evitare un mix di risultati tra pazienti, i campioni devono
avere un' etichetta ID prima di lasciare il paziente stesso.
L'etichetta può essere collegata come in Fig. 1
Campionamento
Le etichette possono contenere informazioni quali il nome del
paziente e data di nascita o un numero di adesione. Queste
informazioni sono spesso contenute in un codice a barre, a
garanzia che i dati, siano inseriti correttamente
nell'analizzatore e che i risultati, dopo l'analisi, vengono
consegnati correttamente ai pazienti.
Preparazione C
Considerazioni
Procedure raccomandate
Utilizzare, se possibile, due identificativi paziente, per
prelievo capillare.
• Assicurarsi che il capillare abbia un'etichetta ID quando
si lascia il paziente.
Transporto e
conservazione
•
• Inserire sempre ID paziente nell'analizzatore.
Analisi
Prelievo
Scalpo Fetale
5
Preparazione C
Selezionare la misura
corretta del capillare
Ancoretta
cCrea
cCl–
cCa2+
cK+
cNa+
pO2
pCO2
pH
cGlu
cLac
ctBil
ctHb +
derivati
Campionamento
125µL
195µL
95µL
70µL
Transporto e
conservazione
55µL
35µL
35µL
FIG. 2.
Analisi
Considerazioni
La corretta scelta della misura del capillare è importante, per
assicurarre che i parametri misurati, siano letti in maniera
corretta e precisa.
Prelievo
Scalpo Fetale
Per garantire la massima precisione, gli analizzatori Radiometer*
hanno specifiche modalità di misura, in base alle dimensioni dei
capillari, oltre alla modalità FLEXMODE** .
6
Preparazione
FLEXMODE è utilizzato per le situazioni in cui l'utilizzatore
non conosce o la misura del capillare o la quantità esatta di
sangue a disposizione.
• Se la misura del capillare è più piccola di quanto richiesto,
lo strumento abortisce l'esame.
• Se la misura del capillare è maggiore di quanto richiesto,
Nota: Tutti volumi indicati da Radiometer tengono conto del
dispositivo di miscelazione (Ancoretta), da inserire nel capillare
per facilitare la miscelazione del sangue con l'eparina.
• Assicurarsi che le misure dei capillari siano corrette rispetto
al volume richiesto per l'analisi dei parametri
(vedere Fig. 2 )
• Se sono disponibili volumi variabili, utilizzare la modalità
Trasporto e
conservazione
Procedure raccomandate
CCampionamento
le correzioni interne dello strumento non saranno corrette
e i risultati non accurati.
FLEXMODE**. FLEXMODE fornirà i valori dei parametri
possibili, in base alla quantità di sangue utilizzabile, nel
modo più accurato e preciso.
Analisi
*ABL5/5XX, ABL6XX/ABL7XX/8XX
**ABL8XXFLEX
Prelievo
Scalpo Fetale
7
Preparazione C
Selezionare il tipo corretto
di capillare
Volume
capillare
Eparina
Riferimento
Campionamento
35microL
70 IU bilanciata per elettroliti
Adulti/NICU
55microL
70 IU bilanciata per elettroliti
Adulti/NICU
70microL
70 IU bilanciata per elettroliti
Adulti/NICU
100microL
70 IU bilanciata per elettroliti
Adulti/NICU
125microL
70 IU bilanciata per elettroliti
Adulti/NICU
140microL
80 IU Na-bilanciata*
Adulti
Transporto e
conservazione
210microL
70 IU bilanciata per elettroliti
55microL
240 UI Na-bilanciata*
Adulti/NICU
85microL
240 UI Na-bilanciata*
Adulti/NICU
*No refertazione elettroliti
Adulti
TAB. I.
Considerazioni
Utilizzare solo capillari preeparinati, per l'esame dei gas del
sangue. Sono disonibili capillari con diversi tipi di eparina e
concentrazione.
Analisi
Eparina in appropriata concentrazione è necessaria per
evitare che il sangue coaguli.
L'uso di eparina non bilanciata può portare alla distorsione
dei parametri elettrolitici, dato che l'eparina lega a se gli
ioni positivi del sangue, in particolare lo ione calcio.
Prelievo
Scalpo Fetale
8
I capillari ad alta eparinizzazione* sono destinati ai campioni
ad alto rischio di coagulazione in-vitro, per esempio:
prelievo da scalpo fetale o campioni a lento riempimento.
Preparazione C
Per compensare gli effetti sui parametri elettrolitici,
Radiometer offre capillari con Eparina perfettamente
bilanciata (vedere Tab. I).
Campionamento
* 240 IU/mL Sodium Heparin
Procedure raccomandate
• Utilizzare sempre capillari pre eparinati con eparina
• Utilizzare capillari altamente eparinizzati per eseguire
campioni, in vitro, ad alto rischio di coagulazione. Non
refertare gli elettroliti.
Analisi
Attenzione: Non utilizzare capillari altamente eparinati
per refertare i valori degli elettroliti, in quanto, i valori,
potrebbero essere falsati [3].
Transporto e
conservazione
bilanciata per tutti gli elettroliti e in particolare quando
parametri come cNa+, cK+, cCa2+, devono essere
analizzati.
Prelievo
Scalpo Fetale
9
Preparazione C
Arterializzazione del sito
di prelievo
Campionamento
Transporto e
conservazione
FIG. 3.
Analisi
Prelievo
Scalpo Fetale
10
Anche se studi indicano che, il preliscaldamento, potrebbe non
essere necessario, quando si utilizza un dispositivo di incisione
cutaneo, per aumentare l'afflussso di sangue capillare.
La riduzione del massaggio e della compressione della zona
di prelievo, ridurrebbe la possibilità di emolisi e di
contaminazione con fluidi tissutali.
• Utilizzare un aciugamano caldo ed umido (vedi Fig. 3) o
altri dispositivi di riscaldamento ad una temperatura non
superiore a 42 °C; coprire poi il sito per 3 - 5 minuti
prima di eseguire la puntura [4].
Prelievo
Scalpo Fetale
11
Analisi
Attenzione: In generale, i risultati ottenuti con prelievo da
capillare, in particolare per i valori di pO 2 devono essere
interpretati con cautela; i risultati potrebbero essere
distorti a causa del campionamento anaerobico.
In alternativa, se possibile, effettuare un prelievo arterioso.
Transporto e
conservazione
Procedure raccomandate
Campionamento
Arterializzare il sito di prelievo, mediante riscaldamento, prima
di effettuare la puntura. Tale procedura viene effettuata
per aumentare il flusso di sangue arterioso presso il sito.
Tuttavia ci sono ancora discussioni se tale procedura sia
realmente efficace [4], sui parametri gas del sangue di bambini
e di neonati.
Preparazione C
Considerazioni
Preparazione
Tecniche di puntura
Neonati
Campionam ento
FIG. 4.
Considerazioni
Trasporto e
conservazione
La tecnica raccomandata, per la puntura della pelle
di neonati e bambini fino a 12 mesi, è la puntura del
tallone. Seguire rigorosamente le procedure indicate
per evitare errori preanalitici o danni permanenti
al sito di prelievo.
Errori preanalitici da evitare:
• Emolisi e incremento di cK+ causati dallo
Analisi
schiacciamento della zona di prelievo o
inquinamento con fluidi tissutali.
• Diluizione da fluidi tissutali, con la determinazione
di bassi valori di pCO2.
• Contaminazione con prodotti disinfettanti, che
possono causare emolisi.
Danni nel sito della puntura:
Prelievo scalpo
fetale
Una puntura profonda può causare danni ossei.
Usare cautela sopratutto nei piccoli neonati
prematuri, dove la struttura ossea, nel sottopelle
del tallone, si trova a circa 2 mm [4].
12
• Dispositivo di puntura della pelle [4,5]:
Utilizzare un dispositivo di prelievo monouso, con
lama retrattile permanente o con funzionalità dell'ago
tale da minimizzare la possibilità di lesioni o la
possibilità di riutilizzo.
Pulire la zona di prelievo con Isopropanolo 70 % o altro
prodotto simile, lasciando asciugare bene.
• Sito di prelievo [4]:
Zona mediale o laterale della superficie plantare del
piede, vedere Fig. 4.
Campionam ento
• Disinfezione del sito di prelievo [6]:
Preparazione
Procedure raccomandate
• Profondità del prelievo:
Trasporto e
conservazione
Massimo 2 mm. Usare cautela con neonati prematuri.
• Flusso di sangue dal sito:
Premere delicatamente la zona arterializzata, senza
massaggiare. Ci sono alcuni suggerimenti sul possibile
uso di creme al silicone o alla Vasellina per facilitare la
formazione di gocce di sangue.
• Anestetici locali:
Non ci sono prove documentate che gli anestetici locali,
come scritto da EMLA, possano avere effetti sul livello
di dolore, durante la puntura della pelle del tallone [7].
13
Prelievo scalpo
fetale
Nota: Il pianto, durante il prelievo di sangue, potrebbe essere
associato ad un incremento dei valori delle concentrazioni
di glucosio e lattato [8].
Analisi
Per alleviare il dolore si potrebbebro somminstrare gocce
di soluzione di Glucosio per os. prima del prelievo.
Preparazione
Tecniche di puntura
Adulti e bambini oltre i tre mesi di età
Campionam ento
FIG. 5.
Trasporto e
conservazione
Considerazioni
La tecnica raccommandata per il prelievo sia per
adulti che per bambini oltre i 3 mesi, è dal dito o dal
lobo dell'orecchio. Le procedure descritte di seguito
vanno eseguite attentamente, sia per evitare errori
preanalitici che danni al sito di prelievo.
Errori preanalitici da evitare:
• Emolisi e incremento di cK+ causati dallo
Analisi
schiacciamento della zona di prelievo
o inquinamento con fluidi tissutali.
• Diluizione con fluidi tissutali, con la determinazione
di bassi valori di pCO2.
• Contaminazione con prodotti disinfettanti che
possono causare emolisi.
Danni nel sito di prelievo:
Prelievo scalpo
fetale
Punture troppo profonde possono causare danni ossei.
14
Preparazione
Procedure raccomandate
• Dispositivo di puntura della pelle [4,5]: Utilizzare un dispositivo di prelievo del sangue
dotato di lama retrattile permanente o con ago che
minimizzi il rischio di lesioni e di riutilizzo.
•
• Sito di prelievo:
Pungere sulla superficie palmare della falange distale,
vedi Fig. 5.
Pungere attraverso le impronte digitali e non
parallelamente ad esse.
Il dito medio e l' anulare sono preferibili.
Campionam ento
Disinfezione del sito di prelievo [6]:
Pulire la zona di prelievo con isopropanolo 70 % o altro
prodotto e lasciare asciugare bene, prima del prelievo.
Trasporto e
conservazione
• Profondità della puntura:
2-4 mm
• Flusso di sangue dalla puntura:
premere delicatamente la zona arterializzata, senza premere o
massaggiare. alcuni raccommandano di utilizzare creme al
silicone o divasellina, per facilitare la formazione goccia di
sangue.
Analisi
Prelievo scalpo
fetale
15
Preparazione
Rimuovere il tubo capillare
Campionam ento
FIG. 6.
Trasporto e
conservazione
Considerazioni
Prima di rimuovere il capillare è importante rimuovere
la prima goccia, utilizzando una garza o simile, dato che
ci potrebbero essere fluidi tissutali.
Analisi
Il dispositivo di miscelazione deve essere inserito prima
nel capillare (tranne che per il prelievo da scalpo fetale).
Se fatto dopo, il sangue potrebbe uscire dal capillare.
Per ottenere il volume corretto di sangue, il dispositivo
di miscelazione deve essere già presente nel tubo
capillare.
Prelievo scalpo
fetale
Durante la raccolta, il capillare deve essere tenuto inclinato
per consentire la risalita capillare.
Tuttavia se il sangue non fluisce liberamente
dal sito di prelievo, sarà utile inclinare il capillare verso il
basso per consentire alla goccia successiva di formarsi
ed impedire comunque all'aria di entrare.
16
Preparazione
Subito dopo il riempimento, chiudere il capillare con i tappi
di plastica in dotazione. L'utilizzo di tali dispositivi è di vitale
importanza per evitare che il sangue si contamini durante la
miscelazione, il trasporto, ecc.
Procedure raccomandate
una garza o tessuto non tessuto.
• Posizionare il dispositivo di miscelazione nel capillar ed
un tappino, appena appoggiato, all'altra estremità.
Campionam ento
• Dopo la puntura rimuovere la prima goccia di sangue con
• Lasciare che il capillare si riempia, tenedolo leggermente
inclinato verso il basso. Il sangue, per capillarità
riempirà il dispositivo. (vedere Fig. 6).
occorre considerare che:

• L'uscita del sangue è facilitata tenendo il sito di 
Trasporto e
conservazione
• Se il sangue non fluisce agevolmente, si può ripungere ma
prelievo verso il basso e premendo leggermente
il tessuto circostante, o prossimale al sito di prelievo
se lo si effettua da un dito.
Analisi
• Evitare di premere o di massaggiare con forza la zona di prelievo, per ridurre al minimo la possibilità di emolisi o cantaminazione con fluidi tissutali . • Sigillare il capillare con il secondo cappuccio.
Prelievo scalpo
fetale
17
Preparation
Preparazione
Miscelazione campione
Sampling and
Campionam
handlingento
FIG. 7.
FIG. 8.
Transport
Trasportoand
e
storage
conservazione
Considerazioni
I capillari preeparinati devono essere miscelati
immediatamente dopo essere stati riempiti e sigillati.
Ciò permetterà all' eparina di miscelarsi perfettamente
con il campione ed evitare la formazione di coaguli.
Analysis
Analisi
Miscelare sempre con estrema cautela per evitare rischi
di emolisi, specialmente nei campioni più delicati, come
quelli neonatali. Questo per evitare falsi valori alti di
cK+ e ridotti valori di cNa+ nei referti [9,10].
Fetal scalp
Prelievo
scalpo
sampling
fetale
Di seguito sono descritte tre procedure di miscelazione .
Una procedura per campioni capillari di aduli, una per
campioni più delicati, a maggior rischio emolisi, quelli
neonatali [9,10], e una procedura per gestire l'analisi
con il metodo FLEXMODE e quindi con un capillare non
completamente e correttamente riempito.
18
Preparazione
Procedure raccomandate
Miscelazione di campioni di adulti:
• Tenere il capillare chiuso tra due dita.
• Muovere il magnete, per tutta la lunghezza del capillare,
Miscelazione di un campione di sangue neonatale, o di
campione soggetto ad emolisi:
• Tenere il capillare tra due dita.

Campionam ento
avanti e indietro almeno 10 volte . Assicurarsi che il
magnete di miscelazione si muova tra le due estremità
del capillare, come mostrato in Fig. 7.
• Muovere, invertendo lentamente il capillare, almeno
Miscelazione di un campione non completamente
riempito:
• Tenere il capillare tra due dita.
Trasporto e
conservazione
20 volte. Assicurarsi che il magnete di miscelazione
si muova tra le due estremità del capillare, come si vede
in Fig. 8.
• Muovere il magnete per tutta la lunghezza del capillare,
Analisi
avanti e indietro, almeno 10 volte . Non rimuovere il
dispositivo di miscelazione dal capillare, per fare l'esame,
in modo da evitare la formazione di bolle d'aria, che
potrebbero influenzare i valori di pO2
.
19
Prelievo scalpo
fetale
Attenzione: in generale, i risultati ottenuti con prelievo
capillare, in particolare i valori di pO2 vanno attentamente
valutati ed interpretati.
Preparazione
Trasporto & Conservazione
en
ns
Je
en
ns
Je
ns
Je
ns
Je
Campionamento
FIG. 9.
Considerazioni
Trasporto e
cconservazione
Il tempo e temperatura di conservazione dei capillari
dipendono dal tipo di capillare utilizzato.
In tutti i casi, comunque, la raccommandazione generale
è di analizzare subito i campioni.
Capillari di plastica: se non è possibile analizzare
subito il campione, cercare di farlo entro 10 minuti.
Lasciare il campione a temperatura ambiente.
Analisi
Capillari di vetro: se non è possibile analizzare
subito il campione, cercare di farlo entro 10 minuti, se
conservato a temperatura ambiente. Se il tempo si
protrae, tenere il campione in posizione orizzontale
a 0-4 °C (32-39 °F) per un massimo di 30 minuti.
La conservazione prolungata, altera diversi parametri.
In particolare cGlu, cLac, pO2 cambiano in modo evidente.
Prelievo scalpo
fetale
Non conservare il capillare a diretto contatto con
ghiaccio, per evitare emolisi.
20
• Analizzare il campione immediatamente dopo il prelievo
e la sua miscelazione.
Preparazione
Procedure raccomandate
• Se la conservazione è inevitabile ricordarsi delle
Campionamento
raccomandazioni, date sopra, per i capillari di plastica
e di vetro [11].
Trasporto e
cconservazione
Prelievo scalpo
fetale
21
Analisi
Attenzione: In generale, i risultati ottenuti con prelievo
capillare, in particolare i valori di pO2 vanno interpretati
con cautela.
Preparazione
Analisi
Ancoratta miscelazione
I
Trappola coaguli
Campionamento
FIG. 10.
Considerazioni
Trasporto e
conservazione
Prima di analizzare il campione, assicurarsi che sia stato
miscelato. Seguire le procedure di miscelazione descritte
a pagina 19.
Piccole quantità di sangue, in capillari con una superficie
interna relativamente ampia, sedimentano velocemente.
La miscelazione, dopo la conservazione, è importante
per evitare distorsioni nella misura di emoglobina ed
ematocrito.
Analisi
La miscelazione deve essere fatta sempre con molta attenzione
per evitare emolisi specialmente nei campioni di sangue
neonatale. Ciò può dare valori alterati, in particolare aumento
di cK+ e diminuzione di cNa+ [9,10].
Se si sospetta la presenza di coaguli, utilizzare le apposite
trappole per prevenire il blocco della camera di misura.
Prelievo
scalpo fetale
22
Preparazione
Procedure raccomandate
• Miscelare il campione come da procedure descritte
alla pagina 19.
• Utilizzare un ID paziente.
• Posizionare l'ancoretta di miscelazione al lato opposto
• Rimuovere il tappino dove si dovrà aspirare ed utilizzare
una trappola per coaguli.
• Allentare il secondo tappino posizionato all'estremità
Campionamento
dell' aspirazione (vedere Fig. 10)*.
opposta all'aspirazione.
• Posizionare il capillare con la trappola per coaguli nello
• Dopo che il campione è stato aspirato, rimuovere
il capillare e la trappola per coaguli, e richiudere lo
inlet dello strumento.
Trasporto e
conservazione
inlet dello strumento, prima di premere il pulsante di
aspirazione.
* Per analisi su ABL77/80 rimuovere il dispositivo di
miscelazione del safeCLINITUBES, prima dell' esame.
Analisi
Prelievo
scalpo fetale
23
Preparazione
Prelievo da scalpo fetale
Campionamento
Trasporto e
conservazione
FIG. 11.
Considerazioni
Il prelievo da scalpo fetale è una procedura difficile,
che richiede esperienza e formazione. Il risultato
può fornire informazioni imporatanti sulla eventuale
necessità di un taglio cesareo.
Analisi
La procedura descritta è indicata come la prassi migliore
ed è stata introdotta dal gruppo di lavoro di Sandbjerg
in Danimarca [12] e descritta dal Dr. J.S. Jørgensen,
Odense University Hospital, Danimarca [13].
Procedura raccomandata
• Il presupposto di lavoro è che si siano rotte sia le
Prelievo
scalpo fetale
membrane fetali che le acque. Il cervice deve
essere dilatato di almeno 3-4 cm.
24
• Utilizzare un bisturi per incidere, raggiungendo una
profondità di 1.4 mm (profondità massima consentita
2 mm). La lama è inclinata; affilare, eventualmente la
lama, per poter aumentare la superficie di taglio e
migliorare la velocità di uscita del sangue. Se il feto si
muove, potrebbe essere necessario un nuovo taglio.
Trasporto e
conservazione
• Rimuovere la prima goccia di sangue e raccogliere il
campione. Il capillare viene introdotto, collegato ad un
porta capillare. E' importante mantenere la punta del
capillare, all'interno della goccia di sangue, durante tutta
la fase di prelievo, tenere il tutto orientato verso l'alto.
Campionamento
• Spalmare il sito di prelievo con vasellina o silicone per
favorire la formazione di gocce di sangue.
Preparazione
• Indirizzare un endoscopio transvaginale verso il cuoio
capelluto del bambino ed illuminare la zona. In presenza
di sangue, liquido amniotico, grassi vari, pulire la zona.
Strofinare la parte visibile del cuoio cappelluto, per
aumentare l' irrorazione e poter, così, raccogliere
più sangue sotto la pelle.
• Riempire due capillari.
Analisi
• Dopo il prelievo, inserire il magnete nel dispositivo di
prelievo, sigillare e miscelare il campione raccolto, come
da procedure indicate a pagina 19. (Miscelazione di
campioni neonatali o soggetti ad emolisi).
• Seguire le procedure descritte alle pagine 20-23
per la conservazione e l'analisi.
Prelievo
scalpo fetale
25
Referenze bibliografiche:
1. Carraro P, Plebani M. Errors in Stat Laboratory:
Types and Frequencies 10 years after. Clin Chem
2007; 53, 7: 1338-42.
2. Joint Commission on Accreditation of Healthcare Organizations. 2008 National Patient Safety
Goals. Available at: http://www.jcipatientsafety.
org.
3. Sampling. In: ABL800 FLEX Operator’s Manual.
Ed. 200802I. Brønshøj: Radiometer
Medical ApS, 2008: Chapter 12, 7-8. Code no.
989-942.
4. Reiner CB, Meites S, Hayes JR. Optimal sites and
depths for skin puncture of infants and children
as assessed from anatomical measurements.
Clin Chem 1990; 36, 3: 547-49.
5. Meites S, Hamlin CR, Hayes JR. A study of experimental lancets for blood collection to avoid
bone infection of infants. Clin Chem 1992; 38,
6: 908-10.
6. Ernst DJ, Ballance LO, Becan-McBride KE et al.
Procedure and devices for the collection of diagnostic capillary blood specimens. Fifth edition.
CLSI (former NCCLS) publication H4-A5. Wayne,
Pennsylvania: CLSI, 2004.
7. AstraZeneca. Quick Guide to EMLA anaesthetic
times. http://www.anaesthesia-az.com/sites/156/
imagebank/typeArticleparam509796/10180.pdf
Assessed February 2008.
8. Young DS. Preanalytical issues in neonatology.
Blood Gas News 2002; 11,1: 14-18.
9. Unpublished data from the Biochemistry department in Aalborg Hospital by Kristensen SR and
Pedersen J.
26
10. Meites S. Skin-puncture and blood-collecting
technique for infants: Update and problems.
Clin Chem 1988; 34,9: 1890-94.
11. Skurup A. Storage recommendations for blood
gas samples. Radiometer Publication bulletin no.
31 - 2006. Copenhagen: Radiometer
Medical ApS, 2006. Code no. 918-686.
12. Brooks L, Hvidman L, Jørgensen JS et al. Bestemmelse af pH, SBE og laktat i føtale scalp-blodprøver under fødslen. Sandbjerg 2001. http://
www.ringamt.dk/SU/Haandboeger/DokHaandbogGynObs.nsf/Sandbjerg2001.pdf
13. Interview with Jørgensen JS. Get in control of
fetal scalp blood sampling. 2001.
www.bloodgas.org
27
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