PAX-8 (MRQ-50) - Menarini Diagnostics
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PAX-8 (MRQ-50) Mouse Monoclonal Antibody Identificazione Prodotto N° Catalogo 44753 44754 44367 Descrizione PAX-8 0,1 M (MRQ-50) PAX-8 1 M (MRQ-50) PAX-8 RTU M (MRQ-50) Definizione Dei Simboli P pronto uso C concentrato A asciti E siero S supernatante DIL DOC# DIS range di diluizione di concentrato numero documento distribuito da Finalità D’Uso Questo anticorpo è destinato per l’uso diagnostico in vitro (IVD). Anticorpo PAX-8 è indicato per i laboratori qualificati per l’identificazione qualitativa tramite microscopio ottico della presenza di antigeni associati in sezioni di tessuto fissate in formalina e incluse in paraffina utilizzando metodi di test IHC (immunoistochimici). L’uso di questo anticorpo è indicato, a seguito di una diagnosi patologica differenziale su base clinica, come ausilio per l’identificazione di carcinomi a cellule renali, carcinomi della tiroide e carcinomi ovarici nel contesto di pannelli di anticorpi, insieme alla storia clinica del paziente e ad altri test diagnostici sottoposti alla valutazione di un patologo qualificato. Sommario E Spiegazione Questa proteina è un fattore di trascrizione membro della famiglia “paired box” (PAX). I membri di questa famiglia di geni codificano solitamente proteine che contengono un dominio “paired box”, un octapeptide, e un omeodominio “paired”. Questa proteina nucleare è coinvolta nello sviluppo delle cellule follicolari tiroidee ed è espressione di geni tiroide-specifici. Le mutazioni di questo gene sono state associate alla disgenesia della tiroide, ai carcinomi follicolari della tiroide e agli adenomi atipici della tiroide. PAX-8 è espresso nei carcinomi della tiroide (e nei carcinomi associati), delle cellule mucose non ciliate delle tube di Falloppio e nelle semplici cisti ovariche da inclusione, ma non delle cellule epiteliali normali della superficie ovarica. PAX-8 è espresso in un’elevata percentuale di carcinomi sieroso ovarico, endometrioide e delle cellule chiare, ma solo raramente negli adenocarcinomi ovarici primari mucinosi. Gli studi hanno inoltre evidenziato espressioni di PAX-8 sia nel carcinoma dei tubuli renali che nel carcinoma a cellule renali, nel nefroblastoma e nel seminoma. Uno studio di Tong et al. ha mostrato che il 98% dei carcinomi a cellule renali a cellule chiare, il 90% dei carcinomi a cellule renali papillari, e il 95% degli oncocitomi sono risultati positivi per l’anti- PAX-8 con frequenze di positività simili a quelle dell’anti-PAX-2. Perciò, l’antiPAX-8 può essere utilizzato come marcatore immunoistochimico aggiuntivo per i tumori renali epiteliali. I carcinomi polmonari normali e il carcinoma polmonare non esprimono PAX8. Allo stesso modo, l’assenza dell’espressione di PAX-8 nei carcinomi del seno e in altri carcinomi non ginecologici diversi da quelli primari della tiroide indica che l’anti-PAX-8 è un importante nuovo marcatore del cancro ovarico e un utile marcatore delle diagnosti distintive dei tumori del polmone e del collo, o dei tumori in siti distanti in cui è possibile la presenza di carcinoma primario del polmone, carcinoma del seno o carcinoma della tiroide. L’anti-PAX-8, combinato con marcatori specifici organici come anti-uroplachina III, anti-mammaglobin, e anti-TTF-1, può servire collettivamente come utilissimo pannello per determinare il sito primario di carcinomi ovarici micropapillari invasivi rispetto ai carcinomi invasivi con origine nella vescica, nel polmone e nel seno.1-9 Principi E Procedure L’anticorpo primario citato può essere utilizzato quale anticorpo primario per la colorazione immunoistochimica delle sezioni di tessuto fissate in formalina e incluse in paraffina. DIS A.Menarini Diagnostics S.r.l. Via Sette Santi, 3 50131 Firenze Italy DOC# MEN36321000 IT Rev. 0,0 Cell Marque Corporation 6600 Sierra College Blvd Rocklin California 95677 USA EMERGO EUROPE Molenstraat 15, 2513 BH The Hague NL PAX-8 (MRQ-50) Mouse Monoclonal Antibody In generale, la colorazione immunoistochimica insieme al sistema di rilevazione biotina-streptavidina consente la visualizzazione degli antigeni tramite l’applicazione sequenziale di un anticorpo specifico (anticorpo primario) all’antigene, di un anticorpo secondario (anticorpo di collegamento) all’anticorpo primario, un complesso enzimatico e un substrato cromogeno con fasi di lavaggio interposte. In alternativa può essere utilizzato un sistema di rilevamento privo di biotina. L’attivazione enzimatica del cromogene causa la produzione di una reazione visibile sul sito dell’antigene. Il campione può essere quindi contro colorato ed è possibile applicarvi del copri vetrino. I risultati vengono interpretati utilizzando un microscopio ottico e consentono la diagnosi differenziale dei processi pato-fisiologici, associabili o meno a un particolare antigene. Materiali E Reagenti Necessari Ma Non Forniti I prodotti prediluiti sono diluiti in modo ottimale per l’uso con un’ampia varietà di kit di rivelazione offerti da altri produttori. 7. Etanolo o alcool reagente 8. Acqua deionizzata o distillata 9. Pentola a pressione elettrica per la fase di pretrattamento del tessuto I seguenti reagenti e materiali possono essere necessari per la colorazione ma non sono forniti con l’anticorpo primario: 1. 3. Forno per essicazione in grado di mantenere una temperatura di 5860 °C ± 5 °C 4. Ampolle o bagni di colorante 5. Timer 6. Xilene o sostituto di xilene Materiali E Metodi 10. Sistema di rilevamento e cromogeno 11. Soluzioni per lavaggio Per i dettagli specifici dei lotti dei seguenti, fare riferimento all’etichetta del prodotto: 1. Tessuto di controllo positivo e negativo 2. Vetrini per microscopio, caricati positivamente 12. Ematossilina o altro contro colorante 13. Diluenti di anticorpi Concentrazione di immunoglobulina dell’anticorpo 14. Blocco perossido per uso con HRP 2. Dettagli sull’origine 15. Blocco avidina-biotina Reagenti Forniti 16. Reagente di controllo negativo Prediluito Il prodotto anticorpo primario citato contiene il reagente pronto per l’uso. 18. Copri vetrino Il tasso di concentrazione di immunoglobuline prediluite per questo prodotto è di 5-15 µg/ml. Conservazione E Manipolazione 17. Soluzione montante 19. Microscopio ottico (40-400x) Conservare a 2-8 °C. Non congelare. Concentrato Il prodotto anticorpo primario citato contiene reagente concentrato. Per garantire un’erogazione adeguata di reagente e la stabilità dell’anticorpo dopo ciascuna analisi, riposizionare il tappo e riporre immediatamente il flacone in frigorifero in posizione verticale. Sia il formato prediluito sia quello concentrato di questo anticorpo sono diluiti in Tampone Tris, pH 7,3-7,7, con BSA 1% e azoturo di sodio <0,1%. Ogni reagente di anticorpi è provvisto di data di scadenza. Se conservato adeguatamente, il reagente resta stabile fino alla data indicata sull’etichetta. Non utilizzare il reagente oltre la data di scadenza relativa al metodo di conservazione indicato. Il tasso di concentrazione di immunoglobulina concentrata per questo prodotto è di 385-720 µg/ml. La gamma operativa di diluizione raccomandata per il prodotto concentrato è di 1:50-1:200 e si trova sull’etichetta del prodotto. Non vi sono segni evidenti che indichino l’instabilità di questo prodotto. Pertanto, è consigliabile eseguire contemporaneamente controlli positivi e negativi sui campioni da testare. Contattare il Servizio Clienti A.Menarini Diagnostics in caso di segni sospetti d’instabilità del reagente. Isotipo: IgG Ricostituzione, Miscelazione, Diluizione, Titolazione Prelievo Di Campioni E Preparazione Per L’Analisi L’anticorpo prediluito è pronto all’uso e ottimizzato per la colorazione. Non è necessaria alcuna ricostituzione, miscelazione, diluizione o titolazione. L’anticorpo concentrato è ottimizzato per essere diluito entro il range di diluizione. I tessuti ordinariamente trattati, fissati in formalina tamponati neutri, inclusi in paraffina sono adatti all’uso con questo anticorpo primario. Il fissativo consigliato per i tessuti è formalina neutra tamponata al 10%. È possibile che si ottengano risultati variabili dovuti a processi di fissaggio prolungati o speciali come la decalcificazione di preparati di midollo osseo. L’utente deve convalidare la diluizione operativa del prodotto concentrato. Differenze nelle procedure tecniche e nel trattamento del tessuto in laboratorio possono produrre importanti variabilità nei risultati e richiedere di conseguenza l’uso regolare di controlli (fare riferimento alla sezione Procedure di controllo della qualità). Ogni sezione va tagliata per garantire uno spessore adeguato (circa 3 μm) e posizionata su un vetrino con carica positiva. I vetrini contenenti la 2 MEN Template #0.2 PAX-8 (MRQ-50) Mouse Monoclonal Antibody sezione di tessuto possono essere cotti per almeno 2 ore (ma non oltre le 24 ore) in un forno a una temperatura di 58-60 °C ± 5 °C. reidratazione e il recupero dell’epitopo. Al termine, sciacquare 5 volte con acqua distillata o deionizzata. 2. Se si utilizza un sistema di rilevamento HRP, collocare i vetrini in un bloccante perossido per 10 minuti, quindi sciacquare. Se si utilizza un sistema di rilevamento AP, saltare questo passaggio. 3. Applicare l’anticorpo e incubare per 10 - 30 minuti, quindi sciacquare. Avvertenze E Precauzioni 1. Manipolando i reagenti adottare ragionevoli precauzioni. Quando si manipolano materiali sospetti carcinogeni o tossici (ad esempio xilene) servirsi di guanti monouso e di grembiuli di laboratorio. 4. Per la rivelazione del polimero in 2 fasi, il sistema applica l’amplificatore in base alle istruzioni del produttore 5. Applicare il reagente di rivelazione per il numero di minuti raccomandato dal produttore, quindi sciacquare. 2. Evitare il contatto di reagenti con occhi e membrane di mucose. Se i reagenti vengono a contatto con aree sensibili, lavare con abbondante acqua corrente. 3. I campioni dei pazienti e tutti i materiali che entrano a contatto con loro devono essere manipolati come materiali a rischio biologico e smaltiti con adeguate precauzioni. Non pipettare mai con la bocca. 6. Applicare una quantità generosa di cromogeno e incubare per 1 - 10 minuti, quindi sciacquare. 7. Disidratare e applicare il vetrino coprioggetto. 4. Evitare la contaminazione microbica di reagenti, per non causare risultati scorretti. Procedure Di Controllo Della Qualità 5. L’utente è tenuto a convalidare i tempi di incubazione e le temperature. Controllo Positivo Del Tessuto 6. I reagenti prediluiti, pronti all’uso sono stati diluiti in modo ottimale e un’ulteriore diluizione può causare una perdita di colorazione antigenica. 7. I reagenti concentrati possono essere diluiti in modo ottimale in base alla convalida dell’utente. Qualsiasi diluente utilizzato non specificatamente raccomandato da questo documento deve essere quindi convalidato dall’utente sia per la compatibilità sia per l’effetto sulla stabilità. 8. Se utilizzato secondo le istruzioni il prodotto non è classificato come sostanza pericolosa. Il conservante nel reagente è azoturo di sodio in misura inferiore allo 0,1% e alle concentrazioni dichiarate non soddisfa i criteri UE REACH (registrazione, valutazione, autorizzazione e restrizione delle sostanze chimiche) per le sostanze pericolose. È necessario effettuare un controllo positivo del tessuto per ciascuna procedura di colorazione eseguita. Il tessuto può contenere sia cellule che componenti con colorazione positiva e negativa e serve sia come tessuto di controllo positivo che negativo. I tessuti di controllo devono provenire da un’autopsia recente, da una biopsia o da campioni chirurgici preparati o fissati prima possibile, in modo identico alle sezioni da esaminare. L’uso di una sezione di tessuto fissata o trattata diversamente dai campioni da esaminare, servirà per fornire un controllo di tutti i reagenti e le fasi del metodo, eccetto il fissaggio e il trattamento del tessuto. Un tessuto con una colorazione positiva debole è più indicato per effettuare un controllo ottimale della qualità e per rilevare livelli minori di degradazione del reagente. Il controllo tissutale positivo per l’anticorpo primario citato, può comprendere quanto segue: 9. L’utente deve convalidare qualunque condizione di conservazione diversa da quelle specificate nel foglietto illustrativo. Controllo Positivo Del Tessuto 10. Il diluente può contenere albumina di siero bovino e il supernatante può contenere siero bovino. I prodotti contenenti siero bovino fetale e i prodotti contenenti albumina di siero bovino vengono acquistati presso fornitori commerciali. I certificati di origine della sorgente animale utilizzata in questi prodotti sono nell’archivio di Cell Marque. I certificati sostengono che le origini bovine provengono da Paesi che presentano un rischio trascurabile di BSE e dichiarano che le origini bovine sono statunitensi e canadesi. Istruzioni Per L’uso Carcinoma ovarico (carcinoma non mucinoso) Nucleare Carcinoma tiroideo Nucleare Carcinoma delle cellule renali Nucleare Controllo Negativo Del Tessuto Procedura Passo-Passo Per il controllo negativo del tessuto, è possibile impiegare lo stesso tessuto utilizzato per il controllo positivo del tessuto. La varietà di tipi di cellule presenti nella maggior parte delle sezioni dei tessuti forniscono siti di controllo negativi, che devono essere tuttavia verificati dall’utente. I componenti che non si colorano devono dimostrare l’assenza di colorazione specifica e fornire un’indicazione sulla colorazione di fondo non specifica. Se è presente una colorazione specifica nei siti di controllo negativi del tessuto, i risultati con i campioni del paziente devono essere considerati non validi. Protocollo di colorazione raccomandato per l’anticorpo primario citato: Colorazione Manuale Deparaffinizzazione, reidratazione e recupero dell’epitopo; il metodo preferito è l’utilizzo delle tecniche di smascheramento termoindotto dell’epitopo (HIER, Heat Induced Epitope Retrieval). Il metodo preferito consente nello stesso tempo la deparaffinizzazione, la 3 MEN Template #0.2 Visualizzazione Utilizzare i controlli positivi noti solo per monitorare le adeguate prestazioni dei tessuti trattati e dei reagenti del test, non come aiuto per formulare una diagnosi specifica dei campioni del paziente. Se i controlli positivi del tessuto non si colorano positivamente in modo adeguato, i risultati con i campioni da esaminare devono essere considerati non validi. 11. Come per qualsiasi prodotto derivato da sorgenti biologiche, è necessario seguire procedure corrette di manipolazione. 1. Tessuto PAX-8 (MRQ-50) Mouse Monoclonal Antibody Discrepanze Inspiegabili Tessuto Del Paziente Segnalare immediatamente all’assistenza clienti di A.Menarini Diagnostics tutte le discrepanze inspiegabili rilevate nei controlli. Se i risultati del controllo di qualità non soddisfano le specifiche, i risultati del paziente non sono validi. Vedere la sezione Risoluzione dei problemi di questo inserto. In tal caso, è necessario identificare e correggere il problema e ripetere l’intera procedura con i campioni del paziente. I campioni del paziente devono essere esaminati per ultimi. L’intensità della colorazione positiva dovrà essere valutata nel contesto di qualsiasi colorazione di fondo del controllo negativo del reagente. Come in qualsiasi altro test immunoistochimico, un risultato negativo indica che l’antigene in questione non è stato rilevato, non che l’antigene è assente nelle cellule o nei tessuti esaminati. Un pannello di anticorpi può aiutare nell’identificazione di false reazioni negative (vedere la sezione Sintesi dei risultati previsti). È necessario anche esaminare la morfologia di ciascun campione del tessuto utilizzando una sezione colorata con ematossilina ed eosina durante l’interpretazione dei risultati immunoistochimici. I risultati morfologici del paziente e i dati clinici pertinenti devono essere interpretati da un patologo qualificato. Reagente Di Controllo Negativo È necessario eseguire un controllo negativo del reagente per ciascun campione per riuscire a interpretare meglio i risultati. Per valutare colorazioni non specifiche viene utilizzato un controllo negativo del reagente invece dell’anticorpo primario. Il vetrino dovrà essere trattato con controllo negativo del reagente, abbinandosi alle specie ospiti dell’anticorpo primario e avendo idealmente la stessa concentrazione di IgG. Il periodo di incubazione del reagente di controllo negativo deve essere uguale a quello dell’anticorpo primario. Limitazioni 1. Questo reagente è esclusivamente per uso professionale dal momento che l’immunoistochimica è un processo a fasi multiple che richiede una formazione specialistica per la scelta adeguata di reagenti, tessuti, fissaggio, trattamenti; della preparazione del vetrino per immunoistochimica e dell’interpretazione dei risultati di colorazione. Interpretazione Dei Risultati La procedura di immunostaining causa la precipitazione di un prodotto di reazione colorato ai siti antigenici localizzati dall’anticorpo primario. Fare riferimento al foglietto illustrativo del sistema di rilevamento per reazioni del colore previsto. È opportuno che un patologo qualificato esperto in procedure immunoistochimiche valuti i controlli su tessuti positivi e negativi prima di interpretare i risultati. Ad uso esclusivo di laboratorio. 3. Esclusivamente per uso diagnostico in vitro. 4. La colorazione del tessuto dipende dalla manipolazione e dal trattamento precedenti del tessuto. Fissaggio inadeguato, congelamento, scongelamento, lavaggio, asciugatura, riscaldamento, sezionamento o contaminazione con altri tessuti o fluidi possono produrre artefatti, l’intrappolamento dell’anticorpo o risultati falsonegativi. Variazioni nel fissaggio e nei metodi di inclusione, come anche le irregolarità intrinseche del tessuto possono provocare risultati non uniformi. Controllo Positivo Del Tessuto Esaminare prima il controllo positivo del tessuto colorato per determinare se tutti i reagenti funzionano correttamente. La presenza di un prodotto di reazione con colorazione appropriata nelle cellule target indica una reattività positiva. Fare riferimento al foglietto illustrativo del sistema di rilevamento per reazioni del colore previsto. A seconda della durata del periodo di incubazione e della potenza dell’ematossilina utilizzata, la contro colorazione darà luogo ad una colorazione da azzurro chiaro a blu scuro nei nuclei delle cellule. Una contro colorazione eccessiva o incompleta può compromettere l’interpretazione corretta dei risultati. Se il controllo positivo del tessuto non si colora positivamente, i risultati con i campioni da esaminare sono considerati non validi. 5. Una contro colorazione eccessiva o incompleta può compromettere l’interpretazione corretta dei risultati. 6. L’interpretazione clinica di ogni colorazione positiva, o della sua assenza, deve essere valutata in un contesto anamnestico, morfologico e di altri criteri istopatologici, oltre che di altri test diagnostici. Questo anticorpo è destinato a essere utilizzato in un pannello di anticorpi, secondo il caso. Spetta al patologo qualificato assicurarsi di conoscere adeguatamente gli anticorpi, i reagenti, i pannelli diagnostici e i metodi utilizzati per produrre la preparazione colorata. È necessario eseguire la colorazione in un laboratorio certificato e autorizzato sotto la supervisione di un patologo responsabile della revisione dei vetrini colorati che garantisca l’adeguatezza dei controlli positivi e negativi. Controllo Negativo Del Tessuto Dopo il controllo positivo del tessuto, è necessario esaminare quello negativo per verificare la marcatura specifica dell’antigene target dall’anticorpo primario. L’assenza di colorazione specifica nel controllo negativo del tessuto conferma l’assenza di reattività crociata tra l’anticorpo e le cellule o i componenti cellulari. Se si nota una colorazione specifica nel controllo negativo del tessuto, i risultati con i campioni del paziente sono considerati non validi. La colorazione non specifica, se presente, sarà diffusa. Nelle sezioni di tessuto che non sono fissate in maniera ottimale, il tessuto connettivo potrebbe presentare una lieve colorazione sporadica. In questo caso è necessario utilizzare le cellule intatte per interpretare i risultati della colorazione. Le cellule necrotiche o degenerate mostrano una colorazione non specifica. 7. Anticorpi e reagenti pronti all’uso sono forniti in diluizione ottimale per un utilizzo conforme a quanto specificato nelle istruzioni. Qualsiasi deviazione dalle procedure di analisi raccomandate può inficiare i risultati. È indispensabile utilizzare e documentare controlli appropriati. Gli utenti che comunque modificano le procedure di analisi consigliate si assumono ogni responsabilità per l’interpretazione dei risultati. 8. Si forniscono prodotti concentrati in modo che l’utente possa successivamente diluirli in maniera ottimale per l’uso previsto nel rispetto di tecniche di validazione adeguate. Gli utenti sono tenuti a convalidare l’utilizzo di eventuali diluenti diversi da quelli qui raccomandati. Dopo la convalida degli anticorpi primari per l’uso, 4 MEN Template #0.2 2. PAX-8 (MRQ-50) Mouse Monoclonal Antibody qualsiasi deviazione dalle procedure di analisi raccomandate può inficiare i risultati previsti. È indispensabile utilizzare e documentare controlli appropriati. Gli utenti che comunque modificano le procedure di analisi consigliate si assumono ogni responsabilità per l’interpretazione dei risultati. Studio Normale (continuato) Casi Positivi Totale di Casi Testato Pancreas 1 1 Paratiroide 1 1 Pituitaria 0 1 Testicolo 0 1 Tiroide 1 1 Seno 0 1 Milza 1 1 Tonsilla 1 1 11. I tessuti di persone infette dal virus di epatite B e contenenti antigene di superficie dell’epatite B (HBsAg) possono evidenziare una colorazione non specifica con perossidasi di rafano. Timo 0 1 Midollo osseo 1 1 Polmone 0 1 12. Se utilizzati in fasi di bloccaggio, i normali sieri della stessa origine animale, come l’antisiero secondario, possono causare risultati positivi o negativi falsi a causa dell’effetto degli autoanticorpi o degli anticorpi naturali. Cuore 0 1 Esofago 0 1 Stomaco 0 1 Intestino tenue 0 1 Colon 0 1 Fegato 0 1 Ghiandola salivare 0 1 Cistifellea 0 1 Rene 1 1 Vescica 0 1 Prostata 0 1 Utero 1 1 Tuba di Falloppio 1 1 Uretere 1 1 Cervice 1 1 Muscolo scheletrico 0 1 Muscolo liscio 0 1 Cute 1 1 Nervo periferico 0 1 Mesotelio 0 1 Adipe 0 1 Placenta 0 1 9. Tessuto Questo prodotto non è destinato all’uso nella citometria a flusso. 10. I reagenti possono presentare reazioni inattese in tessuti non precedentemente testati. La possibilità di reazioni inattese anche in gruppi di tessuti già testati non può essere eliminata completamente a causa della variabilità biologica dell’espressione dell’antigene in neoplasie o in altri tessuti patologici. In caso di reazioni sospette, inattese documentate, contattare l’assistenza clienti di A.Menarini Diagnostics. 13. È possibile che si ottengano falsi risultati positivi a causa di legami non immunologici di proteine o di prodotti di reazione al substrato. Essi possono anche essere causati dall’attività di pseudoperossidasi (eritrociti), attività di perossidasi endogena (citocromo C) o di biotina endogena (ad esempio: fegato, cervello, seno, rene) in base al tipo di tecnica di immunostaining utilizzata. 14. Come in qualsiasi altro test immunoistochimico, un risultato negativo indica che l’antigene in questione non è stato rilevato, non che l’antigene è assente nelle cellule o nei tessuti esaminati. Limitazioni Specifiche 1. 2. I prodotti di anticorpi prediluiti sono ottimizzati come prodotti pronti all’uso. A causa della possibilità di variazione nella fissazione e nel trattamento dei tessuti, potrebbe essere necessario aumentare o diminuire il tempo di incubazione dell’anticorpo primario su campioni singoli. L’anticorpo, se utilizzato in combinazione con sistemi di rilevazione e relativi accessori, rileva antigeni che sopravvivono al normale fissaggio in formalina, al trattamento del tessuto e al sezionamento. Gli utenti che si discostano delle procedure di analisi consigliate sono responsabili per l’interpretazione e la convalida dei risultati, esattamente come in qualsiasi altra circostanza. Note Questo anticorpo colora le piccole cellule linfoidi come indicato nella documentazione pubblicata. Dimostra inoltre elevata sensibilità rivelando il carcinoma a cellule renali RCC, il carcinoma papillare della tiroide PTC e il carcinoma uroteliale TCC con elevata specificità per altri tumori, quali il carcinoma del colon-retto CRC, l’adenocarcinoma del polmone e il cancro della mammella come illustrato nella documentazione pubblicata. Sintesi Dei Risultati Previsti Consultare le seguenti tabelle di reattività: Studio Su Tessuto Malato Casi Positivi Totale di Casi Testato Carcinoma delle cellule renali 27 27 Carcinoma papillare della tiroide 6 6 Carcinoma colorettale 0 28 Studio Normale Tessuto Casi Positivi Totale di Casi Testato Cervello 0 1 Corteccia surrenale 0 1 Ovaia 1 1 Tessuto Note 5 MEN Template #0.2 Note PAX-8 (MRQ-50) Mouse Monoclonal Antibody Bibliografia Studio Su Tessuto Malato (continuato) Casi Positivi Totale di Casi Testato Adenocarcinoma dei polmoni 0 9 Carcinoma del seno 0 5 Carcinoma del pancreas 0 2 Carcinoma epatocellulare 0 4 Melanoma 0 5 Mesotelioma 0 9 Carcinoma delle cellule transizionali 3 4 Tumore stromale gastrointestinale 0 2 Tessuto 1 Note 2 3 4 5 Questo anticorpo colora le piccole cellule linfoidi come indicato nella documentazione pubblicata. Dimostra inoltre elevata sensibilità rivelando il carcinoma a cellule renali (Renal Cell Carcinoma, RCC), il carcinoma papillare della tiroide (Papillary thyroid carcinoma, PTC) e il carcinoma uroteliale (Transitional cell carcinoma, TCC) con elevata specificità per altri tumori, quali il carcinoma del colon-retto (Colorectal cancer, CRC), l’adenocarcinoma del polmone e il cancro della mammella come illustrato nella documentazione pubblicata. 6 7 8 9 Risoluzione Dei Problemi 1. Se il controllo positivo mostra una colorazione più debole del previsto, controllare altri controlli positivi eseguiti durante la stessa colorazione per determinare se il problema dipende dall’anticorpo primario o da uno dei reagenti secondari comuni. 2. Se il controllo positivo è negativo, è necessario controllare altri controlli positivi esaminati durante la stessa analisi per determinare se la causa dipende dall’anticorpo primario o da uno dei reagenti secondari comuni. È possibile che i tessuti siano stati prelevati, fissati o deparaffinizzati in modo inappropriato. Seguire la procedura appropriata per prelevare, conservare e fissare i campioni. 3. Se si presenta un’eccessiva colorazione di fondo, possono essere presenti livelli elevati di biotina endogena. Una fase bloccante di biotina dovrà essere inclusa a meno che non sia utilizzato un sistema di rilevamento privo di biotina; in questo caso la presenza di biotina non rappresenterebbe un fattore che contribuisce alla colorazione di fondo. 4. Se non è stata rimossa tutta la paraffina, è necessario ripetere l’operazione di deparaffinazione. 5. Se le sezioni di tessuto ripuliscono il vetrino, controllare i vetrini per accertarsi che siano caricati positivamente. Tra le altre possibilità che potrebbero pregiudicare l’adesione del tessuto vi sono un insufficiente essiccamento della sezione di tessuto sul vetrino prima della colorazione o un fissaggio in formalina neutra non adeguatamente tamponato. Anche lo spessore del tessuto potrebbe essere un fattore che contribuisce. Per azioni correttive, fare riferimento alla sezione Procedura passo-passo, o contattare il servizio clienti A.Menarini Diagnostics. 6 MEN Template #0.2 Tamara, L et al. Immunohistochemical panel to identify the primary site of invasive micropapillary carcinoma. Am J SurgPathol 2009. Daisuke, N et al. Diagnostic utility of thyroid transcription factors PAX-8 and TTF-2 (Fox E1) in thyroid epithelial neoplasms. Mod Pathol 2008; 21:192-200. Nikiforova, MN et al. PAX-8-PPARgamma rearrangement in thyroid tumors: RT-PCR and immunohistochemical analyses. Am J SurgPathol 2002 Aug;26(8):1016-23. Marques, AR et al. Expression of PAX-8-PPAR gamma1 rearrangements in both follicular thyroid carcinoma and adenomas. J ClinEndocrinolMetab 2002 Aug; 87(8):3947-52. Tina, DP et al. The paired Domain-containing factor PAX-8 and the homeodomain-containing factor TTF-1 directly interact and synergistically activate transcription. J Bio Chem 2003 Jan;278(5):3395-3402. Zhang, P et al. Immunohistochemical analysis of thyroid-specific transcription factors in thyroid tumors. PatholInt 2006; 56:240245. Bowen, NJ et al. Emerging roles for PAX-8 in ovarian cancer and endosalpingeal development. Gynecol Oncol 2007 Feb; 104(2):331-7. Epub 2006 Oct 24. Nonaka, D et al. Expression of PAX-8 as a useful marker in distinguishing ovarian carcinomas from mammary carcinomas. Am J SurgPathol 2008 Oct; 32(10):1566-71. Guo-Xia, Tong et al. Expression of PAX-8 in normal and neoplastic renal tissues: an immunohistochemical study. Modern Pathology 2009; 22:1218-1227.