Archivio 2010/2011 (Biotecnologie)

Transcript

CORSO DI LAUREA IN BIOTECNOLOGIE (L-2) a.a. 2010/2011
Requisiti di trasparenza
DATI GENERALI
Facoltà
Nome del CdS
Sede didattica
Tasse e contributi
Questionari sulla soddisfazione dei
laureandi
Job placement
Facoltà di Scienze Matematiche Fisiche e Naturali
Corso di Laurea in Biotecnologie
Lecce, strada statale Lecce-Monteroni, complesso Ecotekne
si rimanda al Manifesto generale di Ateneo
(http://www.scienzemfn.unisalento.it/manifesto_studi)
dati non disponibili al momento in quanto il Corso di Laurea ha attivo il 3° anno a partire
dall’a.a. 2010/2011
dati non disponibili al momento in quanto il Corso di Laurea ha attivo il 3° anno a partire
dall’a.a. 2010/2011
dati disponibili presso il Nucleo di Valutazione d’Ateneo.
Questionari sulla soddisfazione degli
studenti
Consiglio didattico CdS (composizione) PROFESSORI I FASCIA
1. DINI LUCIANA
2. PIRO GABRIELLA
3. TROISI LUIGINO
PROFESSORI II FASCIA
4. ALIFANO PIETRO
5. BUCCI CECILIA
6. MAFFIA MICHELE
7. MANNO DANIELA
8. PIRAINO STEFANO
9. SICULELLA LUISA
10. VERRI TIZIANO
RICERCATORI
11. BENEDETTI MICHELE
12. DI SANSEBASTIANO GIAN PIETRO
13. GIUDETTI ANNA
14. GUASCITO MARIA RACHELE
15. GUIDO MARCELLO
16. LOFRUMENTO DARIO
17. NUTRICATI ELIANA
18. MASSARI SERAFINA
19. MONTINARI MARIA ROSA
20. MUSCELLA ANTONELLA
21. QUARTA MAURIZIO
RAPPRESENTANTI
STUDENTI
22. CALCAGNILE MATTEO
23. DURANTE UMBERTO ANTONIO
24. FIORETTI MASSIMILIANO
25. RUZITTU SILVIA
Presidente Consiglio Didattico
Prof. Pietro Alifano
Conoscenze richieste per l’accesso
L’accesso al Corso di Laurea in Biotecnologie è a numero programmato di iscritti,
determinato annualmente dal Consiglio didattico in Biotecnologie. Gli studenti devono
sostenere una prova d’ingresso che ha il significato di verificare il possesso delle
conoscenze richieste per l’accesso. Alla fine del test, ove le domande di ammissione
superino il numero di posti disponibili sarà formulata una graduatoria a fini selettivi. In
caso di verifica delle conoscenze non soddisfacente, saranno assegnati obblighi formativi
aggiuntivi da soddisfare nel I anno di corso.
La prova di ammissione al corso triennale si svolge di norma nella prima decade di
settembre di ciascun anno, e consiste ai sensi dell’Art. 6, comma 1, della Legge 2 agosto
1999, n. 264 in test a risposta multipla e verterà su conoscenze scientifiche di base di
Matematica, Fisica, Chimica e Biologia sulla base dei programmi della scuola secondaria
superiore, e di accertamento della predisposizione per le discipline oggetto dei corsi
medesimi.
Per l’anno accademico 2010/2011, il Consiglio didattico in Biotecnologie, ha deliberato
l’introduzione di un numero programmato di 75 studenti, in modo da rispettare la
numerosità massima indicata nelle disposizioni relative alle “linee guida per l’istituzione e
l’attivazione, da parte delle Università, dei Corsi di Studio”, predisposte dal CNVSU, ed
emanate dal MIUR attraverso il D.M. n. 386 del 26/7/2007.
Modalità di verifica della preparazione
iniziale
Utenza sostenibile
Docenti di riferimento
1. Benedetti Michele
2. Dini Luciana
3. Guascito Maria Rachele
4. Maffia Michele
5. Manno Daniela
6. Massari Serafina
7. Montinari Maria Rosa
8. Nutricali Eliana
9. Piro Gabriella
10. Quarta Maurizio
11. Siculella Luisa
12. Troisi Luigino
PERCORSO FORMATIVO
Tipologia delle forme didattiche
adottate
Modalità di verifica della
preparazione
Data di inizio dell’attività didattica e
calendario delle lezioni
Le attività didattiche saranno svolte attraverso lezioni in aula, esercitazioni in laboratorio e
approfondimenti mediante l’utilizzo degli strumenti informatici a disposizione del corso di
laurea.
La valutazione avviene per mezzo di prove scritte e/o orali, secondo quanto indicato dal
docente all’inizio del corso, e può tenere conto dell’esito di prove sostenute durante tutto il
periodo di attività ed è espressa in trentesimi, con eventuale lode.
I corsi di insegnamento verranno svolti per semestri; nel primo semestre le lezioni
inizieranno il 2/11/2010 e termineranno il 28/01/2011. Nel secondo semestre le lezioni
inizieranno il 14/03/2011 e termineranno il 10/06/2011.
Il calendario delle lezioni è pubblicato sul sito web https://www.scienzemfn.unisalento.it/540
Calendario delle prove d’esame
Gli esami di profitto si svolgeranno nei seguenti periodi:
31/01/2011 - 11/03/2011 (3 appelli)
13/06/2011- 29/07/2011 (3 appelli)
1/09/2011 – 30/09/2011 (1 appello)
Il calendario degli esami è pubblicato sul sito web https://www.scienzemfn.unisalento.it/536
Obblighi di Frequenza: La frequenza delle attività formative è obbligatoria e sarà verificata con modalità definite dal Consiglio
Didattico. Per abilitare lo studente a sostenere il relativo esame è necessaria l'attestazione di frequenza per almeno il 70% alle lezioni
in aula e il 70% alle esercitazioni previste, fatte salve deliberazioni del Consiglio Didattico per motivi particolari.
Per le attività di laboratorio previste dai rispettivi insegnamenti si prevede l’effettuazione di un numero di turnazioni compatibili al
rispetto di una numerosità adeguata alla disponibilità di personale, spazi e strumentazione.
Gli studenti lavoratori, riconosciuti come tali previa presentazione di adeguata documentazione, potranno svolgere delle attività
integrative con modalità suggerite dai singoli docenti.
Propedeuticità: Per gli immatricolati a.a. 2010/2011: L’esame di Chimica generale ed inorganica è propedeutico per gli esami di
Chimica organica, Chimica analitica e Chimica farmaceutica; l’esame di Fisica applicata alle Biotecnologie è propedeutico per gli
esami di Chimica analitica e Chimica farmaceutica. Per gli immatricolati a.a. 2008-2009 e 2009-2010: L’esame di Chimica generale
ed inorganica è propedeutico per gli esami di Chimica organica, Chimica fisica e analitica, l’esame di Fisica applicata alle
biotecnologie è propedeutico per l’esame di Chimica Fisica e Analitica.
Insegnamenti
Citologia, Istologia, Embriologia (SSD BIO/06, 8 CFU)
Anno di corso: I anno, I semestre
Docente: Luciana DINI
Programma:
Biologia della cellula. Forma, dimensioni e metodologie di studio delle cellule. Ultrastruttura e organizzazione molecolare della membrana plasmatica, sistemi di
trasporto, specializzazioni della superficie cellulare. Citoscheletro e sistemi di giunzione. Struttura, ruolo e relazioni fra gli organulì cellulari. Mitosi e meiosi.
Elementi di regolazione della comunicazione cellulare e della trasduzione del segnale. Regolazione del ciclo cellulare e della sopravvivenza cellulare.
Biologia dei tessuti. Organizzazione strutturale e funzionale. Tessuti epiteliali di rivestimento, secernenti e sensoriali. Tessuti connettivi, cartilagineo, osso ed
ossificazione. Il sangue e cenni sull’emopoiesi. Tessuto muscolare liscio, striato, scheletrico e cardiaco. Tessuto nervoso: neurone, fibre nervose e processo di
mielinizzazione, glia. Sinapsi e giunzione mio-neurale.
Embriologia. Embriologia comparata, si fornisce una descrizione della morfogenesi e dell’organogenesi di embrioni di invertebrati e di vertebrati. Studio dei
processi e dei meccanismi per la produzione dei gameti. Studio delle varie fasi dello sviluppo: fecondazione, segmentazione, gastrulazione e neurulazione
nell'anfiosso, negli anfibi, negli uccelli e nei mammiferi. Organogenesi: cenni sulla formazione dei principali organi.
Risultati di apprendimento previsti:
Competenze culturali
Conoscenza di:
• citologia, istologia, biologia cellulare e dello sviluppo e cenni di anatomia comparata
• correlazioni fra i livelli molecolare, cellulare, tissutale e organologico in biologia animale
Competenze metodologiche
Saper fare:
• Uso base del microscopio ottico
• Allestimento di semplici colorazioni istologiche e immunoistochimiche
Propedeuticità: Non è prevista alcuna propedeuticità
Testi di riferimento: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Modalità di erogazione: Tradizionale
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (7 CFU) ed attività di laboratorio (1 CFU)
Modalità di frequenza: Obbligatoria
Metodi di valutazione: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Dati statistici relativi alle votazioni d’esame conseguite dagli studenti: Saranno resi disponibili mediante un opportuno link al sito di Facolta.
Orario di ricevimento del docente: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Curriculum docente:
Prof. Luciana Dini
Professore Ordinario di Anatomia Comparata e Citologia (BIO/06) Università del Salento.
Attualmente docente di Citologia, istologia ed embriologia, di Biotecnologie dello sviluppo del corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Citochimica ed
istochima del corso di laurea triennale in Biologia, e di Microscopia applicata per il corso di laurea triennale in Tecnologie perla conservazione ed il restauro
Direttore del Master di I livello dell’università del Salento in Data manager in oncologia.
Afferente al dottorato di ricerca in Biologia e Biotecnologie, Università del Salento.
Professore di Ruolo del settore scientifico disciplinare dell’insegnamento svolto.
Esperienza scientifica documentata da oltre 140 lavori su riviste a diffusione internazionale. E’ inserita nei volumi “Who’sWho in Science and Engineering”
2003-2007 e “2000 outstanding scientists of the 21st century”.
Nel 1987 premio della " Società Nazionale di Scienze Lettere ed Arti"; due “Gold medal” (2003, 2005) e Laurea ad honorem in Medicina, Medical
State University of Yerevan (Armenia) 2005. E’ referee di riviste scientifiche nazionali ed internazionali. E’ stata numerose volte relatore ad invito, tra cui
GORDON RESEARCH CONFERENCE: Clearance of dying cells by phagocytes: mechanisms and consequences USA 2003.
Gli argomenti di ricerca sono:
• apoptosi e rimozione delle cellule apoptotiche
• bioeffetti dei campi magnetici
• terapie antitumorali: terapia fotodinamica
• principi bioattivi di piante ed invertebrati marini
• biocompatibilità di polimeri sintetici;
• stress nei sistemi di acquacultura
• allevamento di ricci di mare in sistemi di policoltura a mare.
Botanica e Biologia cellulare dei vegetali (SSD BIO/01, 8 CFU)
Docente: Gabriella PIRO
Programma:
Peculiarità delle membrane biologiche vegetali. Reticolo Endoplasmico: proteine residenti, controllo di qualità. Proteine di riserva. Corpi lipidici. Apparato di
Golgi: modificazione delle proteine, sintesi dei polisaccaridi di matrice, peculiarità dei dittiosomi. Via di Secrezione: smistamento delle proteine, trasporto
vescicolare e specificità dei rivestimenti.
Struttura e funzione degli organelli tipici della cellula vegetale. Plastidi: Proplastidi, cloroplasti, cromoplasti, amiloplasti. Pigmenti fotosintetici,
organizzazione delle membrane tilacoidali. Importo delle proteine plastidiali. Interconversione dei plastidi
Parete: Funzioni della parete cellulare, biogenesi della parete. Organizzazione della lamella mediana, parete primaria, parete secondaria. Biosintesi dei
componenti di parete. Crescita e modificazioni della parete. Proteine strutturali ed enzimatiche. Vacuolo: Biogenesi, Peculiarità del tonoplasto. Composizione del
succo vacuolare. Significato dei metaboliti secondari. Vacuolo come organello multifunzionale. Molecole bioattive.
Tessuti. Tessuti meristematici, meristemi primari e secondari. Tessuti parenchimatici, tegumentali, meccanici, conduttori, secretori.
Fusto. Apice del germoglio. Struttura primaria del fusto: eustele e atactostele. Cambio cribro-legnoso. Cambio subero-fellodermico. Struttura secondaria: legno
omoxilo e legno eteroxilo.
Radice. Cuffia. Struttura dell’apice radicale, Struttura primaria: actinostele. Cartteristiche dell’endoderma. Struttura secondaria.
Foglia. Struttura della foglia.
Conoscenze di base sulle caratteristiche morfologiche e funzionali degli organelli della cellula vegetale, sull’istologia e anatomia delle piante superiori. Uso delle
piante come fattorie molecolari per la produzione e utilizzo della biomassa vegetale, per la sintesi di molecole di interesse e il miglioramento delle proteine di
riserva.
Testi di riferimento:
A.A. V.V. A CURA DI F.M. GEROLA– BIOLOGIA E DIVERSITÀ DEI VEGETALI – UTET.
PASQUA; ABBATE; FORNI – BOTANICA GENERALE E DIVERSITA’ VEGETALE – PICCIN
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (7 CFU) ed attività di laboratorio (1 CFU)
Metodi di valutazione: Prova orale.
Orario di ricevimento del docente: Mercoledì e giovedì ore 11:00-13:00
Curriculum docente:
Prof. Gabriella Piro
Professore Ordinario di Botanica Ambientale e Applicata (BIO/03) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Botanica e Biologia cellulare dei vegetali per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Biologia cellulare dei vegetali per la laurea
triennale in Scienze Biologiche e di Biologia Cellulare dei Prodotti agroalimentari per la laurea specialistica in Biologia agroalimentare e della Nutrizione
dell’Università del Salento
Afferente al dottorato di ricerca in Biologia e Biotecnologie dell’Università del Salento
Componente della Giunta del centro Linguistico dell’Università del Salento
Professore di Ruolo di un settore scientifico disciplinare affine dell’insegnamento svolto.
L’attività di ricerca è focalizzata su:
• Biosintesii in vivo dei polisaccaridi di parete e caratterizzazione delle glicosiltransferasi responsabili della biosintesi dei polisaccaridi strutturali durante la
crescita e il differenziamento delle cellule vegetali.
• Caratterizzazione dei componenti polimerici (polisaccaridi e glicoproteine) della parete in alghe e cianobatteri.
• Studio della secrezione del traffico di polisaccaridi e glicoproteine in parete attraverso la costruzione di marker fluorescenti specifici.
• Preparazione di matrici biologiche vegetali come fonte estrattiva di molecole di interesse
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste internazionali provviste di comitato di referees.
Chimica generale e inorganica (SSD CHIM/03, 8 CFU)
Docente: Antonella CICCARESE*
Programma: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Risultati di apprendimento previsti: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Propedeuticità: Per gli immatricolati a.a. 2010/2011: L’esame di Chimica generale ed inorganica è propedeutico per gli esami di Chimica organica, Chimica
analitica e Chimica farmaceutica; Per gli immatricolati a.a. 2008-2009 e 2009-2010: L’esame di Chimica generale ed inorganica è propedeutico per gli esami di
Chimica organica e Chimica fisica e analitica.
Testi di riferimento: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (7 CFU) ed esercitazioni numeriche (1 CFU)
Attività di supporto alla didattica:
Curriculum docente: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
*L’insegnamento è mutuato dal Corso di Laurea in Scienze biologiche.
Matematica, Statistica, Informatica (insegnamento integrato)
– Modulo Matematica, Statistica (SSD MAT/05, 8 CFU)
– Modulo Informatica (SSD INF/01, 6 CFU)
Anno di corso: I anno, II semestre
Docente: Carlo SEMPI (Modulo Matematica, Statistica)
Docente: (Modulo Informatica)
Programma:
Modulo Matematica, Statistica
Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Modulo Informatica
Risultati di apprendimento previsti: Conoscenze teorico-pratiche elencate nel programma.
Modulo Matematica, Statistica
Modulo Informatica
Organizzazione della didattica:
Modulo Matematica, Statistica: Lezioni in aula (7 CFU) ed esercitazioni numeriche (1 CFU)
Modulo Informatica: Lezioni in aula (3 CFU) ed attività di laboratorio (3 CFU)
Orario di ricevimento del docente:
Prof. Carlo Sempi: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Curriculum docente:
Prof. Carlo Sempi
Fisica applicata alle biotecnologie (SSD FIS/01, 6 CFU aula)
Docente: Daniela Erminia MANNO
Programma:
Prerequisiti
Grandezze fisiche: misura ed unità di misura, grandezze fische fondamentali e derivate, grandezze scalari e grandezze vettoriali, Operazioni con i vettori.
Coordinate cartesiane ortogonali. Componenti cartesiane di vettori. Analisi dimensionale. Fattori di scala. Trattamento dei dati sperimentali.
Programma delle lezioni
Meccanica. Velocità media e istantanea. Accelerazione. Accelerazione tangenziale e radiale nel moto curvilineo. Velocità e accelerazioni relative. Le tre leggi di
Newton. Sistemi di riferimento inerziali e non inerziali Alcune applicazioni delle leggi di Newton. Forza peso, forze di attrito, forza elastica. Lavoro, energia
cinetica, forze conservative ed energia potenziale. Energia potenziale gravitazionale ed elastica. Conservazione dell’energia meccanica. Potenza. La legge di
gravitazione universale.
Quantità di moto. Sistemi di particelle e centro di massa. Conservazione della quantità di moto. Cenni sugli Urti. Cenni sulla dinamica del corpo rigido: momenti
delle forze, d’inerzia e angolare. Statica. Le condizioni di equilibrio di un corpo rigido, centro di gravità, stabilità dell’equilibrio. Le leve. Le leve delle
articolazioni scheletriche. Proprietà elastiche dei corpi. Legge di Hooke. Elasticità dei muscoli. Elasticità dei vasi sanguigni.
Statica e dinamica dei fluidi. I fluidi: densità e pressione. Equazione di Stevino. Principi di Archimede, di Pascal e dei vasi comunicanti. Applicazioni. Misure
di pressione: il manometro. I liquidi ideali. Portata ed equazione di continuità. Teorema di Bernoulli. Applicazioni del teorema di Bernoulli a problemi biologici.
Fluidi reali: viscosità. Moto laminare. Legge di Hagen-Poiseuille. Cenni sul moto turbolento. Numero di Reynolds. Legge di Stokes. Velocità di sedimentazione,
centrifugazione. La misurazione della pressione del sangue con lo sfigmomanometro.
Elettricità e Magnetismo. Carica elettrica e legge di Coulomb Campo elettrostatico, energia potenziale, potenziale elettrostatico. Conduttori e isolanti.
Polarizzazione dei dielettrici. Capacità e condensatori. Energia elettrostatica nei condensatori. Corrente elettrica, legge di Ohm, potenza generata da una batteria,
e dissipata da una resistenza. Prima e seconda legge di Kirchoff, resistenze in serie e in parallelo. Campo magnetico. Forza di Lorentz. Forza su un filo percorso
da corrente. Campo generato da fili rettilinei. Proprietà del campo magnetico. Legge d’Ampere. Cenni sul magnetismo nella materia. Legge d’induzione di
Faraday-Lenz. Corrente di spostamento. Le equazione di Maxwell per il campo elettromagnetico.
Moti ondulatori e onde elastiche. Moto vibratorio: molle e moto armonico semplice, energia potenziale elastica e conservazione dell’energia nel moto armonico
semplice. Cenni sulle oscillazioni smorzate e forzate. Onde trasversali e longitudinali. Velocità delle onde in una corda. Onde armoniche. Onde acustiche.
Applicazioni in diagnostica medica: l'ecografia
Ottica. Onde elettromagnetiche: spettro elettromagnetico. Interferenza e diffrazione. Polarizzazione della luce. Ottica geometrica: le leggi della riflessione e
rifrazione. Formazione di immagini: immagini reali e virtuali. Specchi, diottri, lenti sottili. Ingrandimento lineare ed angolare. L’occhio umano. Le ametropie
dell’occhio e loro correzione. Sistemi di lenti: il microscopio ottico.
Propedeuticità: Per gli immatricolati a.a. 2010/2011: L’esame di Fisica applicata alle Biotecnologie è propedeutico per gli esami di Chimica analitica e Chimica
farmaceutica. Per gli immatricolati a.a. 2008-2009 e 2009-2010: L’esame di Fisica applicata alle biotecnologie è propedeutico per l’esame di Chimica Fisica e
Analitica.
WALKER, Fondamenti di Fisica, Zanichelli, Bologna.
SERWAY, Principi di Fisica, EdiSES, Napoli
Appunti del docente sul portale della Facoltà di Scienze
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (6 CFU)
Orario di ricevimento del docente: Martedì e venerdì ore 10:00-12:00.
Curriculum docente:
Prof. Daniela Erminia Manno
Professore Associato di Fisica Sperimentale (FIS/01) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Fisica Applicata alle Biotecnologie per il corso di laurea triennale in Biotecnologie e di Metodologie Fisiche per le Biotecnologie
Farmaco Industriali per la laurea specialistica in Scienze Biotecnologiche dell’Università del Salento.
• Caratterizzazione morfologica e strutturale di materiali di interesse tecnologico e biomedico mediante tecniche di microscopia elettronica in trasmissione e a
scansione e microscopia a sonda.
• Sintesi di nano particelle metalliche per impiego nel campo dei biosensori e del drag-delivery
• Sviluppo di metodologie fisiche per la caratterizzazione alla nanoscala di materiali di interesse bio-medico
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste internazionali provviste di comitato di referees e capitoli di libri a diffusione nazionale ed
internazionale.
Chimica organica (CHIM/06, 8 CFU)
Docente: Luigino TROISI
Programma:
Struttura elettronica dell'atomo: modello di Lewis; regola dell'ottetto; angoli di legame; risonanza. Alcani e cicloalcani: struttura; isomeria; nomenclatura;
reazioni. Acidi e Basi: secondo Bronsted- Lowry; secondo Lewis; scala di acidità degli acidi. Stereochimica: isomeria e chiralità; nomenclatura col sistema R S .
Alcheni; struttura; isomeria; nomenclatura;sintesi; reazioni di sostituzione nucleofila alifatica; reazioni di eliminazione. Alcoli e tioli: struttura, nomenclatura;
acidità e basicità; reazioni; sintesi. Alchini: struttura; nomenclatura; acidità; preparazione; reazioni. Eteri ed epossidi: struttura; nomenclatura;sintesi; reattività.
Aldeidi e chetoni: struttura; nomenclatura; reazioni di addizione nucleofila di nucleofili al C, all'O, all'N; tautomeria; reazione di Wittig, reazioni di ossidazione e
riduzione; condensazione aldolica. Acidi carbossilici: struttura; nomenclatura; acidità; sintesi; derivati funzionali degli acidi (cloruri, ammidi, esteri, anidridi,
lattoni, lattami) e loro reattività; condensazione di Claisen; sintesi acetoacetica e malonica. Aromatici: benzene e suoi derivati; sostituzione elettrofila aromatica;
sostituzione nucleofila aromatica. Ammine: struttura; classificazione; basicità; nomenclatura; sintesi; reattività. Polimeri: i principali polimeri industriali di sintesi
e naturali. Carboidrati: mono , disaccaridi e polisaccaridi; classificazione; struttura; reattività; equilibri. Lipidi: trigliceridi, steroidi. Ammino acidi; struttura e
comportamento. Proteine e acidi nucleici (cenni).
Propedeuticità: L’esame di Chimica generale ed inorganica è propedeutico per l’esame di Chimica organica.
Chimica Organica Brown & Foote ( Edises)
Chimica Organica Solomons (Zanichelli)
Esercizi: Guida alla soluzione dei problemi da chimica organica Brown.
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (7 CFU) ed esercitazioni numeriche (1 CFU)
Attività di supporto alla didattica:
Curriculum docente:
Prof. Luigino Troisi
Professore. Ordinario di Chimica Organica( settore disciplinare CHIM06) dell’Università del Salento. Attualmente ricopre il corso di Chimica Organica ed uno di
Chimica Organica Applicata per la Laurea triennale in Biotecnologie, ed un corso di Chimica Organica per il corso di Laurea in Ottica e Optometria,.
In ogni corso sono sviluppate tecniche di analisi e riconoscimentodi tipo chimico-fisico relativamente ai crediti di laboratorio assegnati ai rispettivi corsi.
Professore di ruolo del settore scientifico disciplinare dell’insegnamento svolto.
L’attività di ricerca è mirata alla sintesi e caratterizzazione di nuovi substrati con interesse farmacologico.
In particolare con metodologie del tutto nuove si realizzano eterocicli a tre termini (ossaziridine, aziridine) a quattro termini (beta-lattami e lattoni), a cinque
termini (isoossazoline,isoossazolidine, pirrolidinoni) a sei e sette termini( lattami e lattoni).
Tali substrati sono stati richiesti da specialisti del settore:
• le aziridine e le ossaziridine dalla Bayer-Crop-science per una sperimentazione su piante;
• i beta-attami e i lattoni da altri gruppi di ricerca che lavorano nel campo medico, ad es. il Policlinico dell’Aquila e l’Università di Modena e Catania.
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste internazionali e capitoli di libri a diffusione nazionale ed internazionale.
Biologia generale (BIO/05, 6 CFU)
Docente: Stefano PIRAINO
Programma:
Concetti generali e principi di base della vita animale. Bioomologia e biodiversità. Bauplan e livelli di organizzazione. Basi del differenziamento cellulare e della
morfogenesi. Evoluzione della pluricellularità. Forme e funzioni: locomozione, alimentazione, respirazione cellulare e respirazione sistemica, escrezione ed
eliminazione, omeostasi e immunità. Sistema nervoso. Strategie riproduttive; cicli vitali, regolazione dello sviluppo animale, evoluzione. Concetto di specie e
speciazione. Cenni di filogenesi animale. Caratteristiche distintive dei principali taxa di Protozoi. Organizzazione strutturale e caratteristiche distintive dei
principali taxa di Metazoi. Evoluzione dei Cordati.
Propedeuticità: Non è prevista alcuna propedeuticità.
Robert J. Brooker, Eric P. Widmaier, Linda E. Graham, Peter D. Stiling. MacGraw Hill. ISBN: 9788838665257.
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (5 CFU) ed esercitazioni di laboratorio (1 CFU)
Orario di ricevimento del docente: Mercoledì ore 14:00-15:00 (su prenotazione via e-mail)
Curriculum docente:
Prof. Stefano Piraino
Professore Associato di Zoologia (BIO/05) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Biologia Generale per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Biologia Sperimentale degli Invertebrati Marini per le lauree
triennali in Scienze Biologiche ed in Scienze Ambientali dell’Università del Salento, titolare del corso internazionale Experimental Developmental Biology of
Marine Invertebrates presso l’Université Pierre et Marie Curie Paris VI.
Afferente al dottorato di ricerca in Ecologia Fondamentale dell’Università del Salento di Lecce, ha svolto numerosi seminari per corsi di dottorati di ricerca
presso numerose Università italiane ed estere.
• biologia, sviluppo ed evoluzione di invertebrati marini, con particolare riferimento agli cnidari;
• analisi dei meccanismi molecolari che regolano la morfogenesi (transdifferenziamento, metamorfosi, rigenerazione)
• evoluzione molecolare e filogenesi dei metazoi
L’attività di ricerca è documentata da oltre 50 pubblicazioni su riviste internazionali provviste di comitato di referees, capitoli di libri a diffusione internazionale,
e dalla responsabilità scientifica di progetti di ricerca nazionali ed internazionali.
Biochimica ed Enzimologia (insegnamento integrato)
– Modulo Biochimica (SSD BIO/10, 6 CFU)
– Modulo Enzimologia (SSD BIO/10, 4 CFU)
Anno di corso: II anno, I semestre
Docente: Gabriele Vincenzo GNONI
Programma:
Modulo I – Biochimica
Amminoacidi: proprietà generali, classificazione e caratteristiche, legami peptidici. Proteine: purificazione, ruolo e vari livelli di organizzazione. Zuccheri e
polisaccaridi. Lipidi neutri e lipidi polari. Lipidi e membrane biologiche.
Glicidi. Glicolisi e bilancio energetico. Fermentazione alcolica. Glicogenolisi e regolazione ormonale. Sistemi navetta. Ciclo dei pentoso-fosfati e significato
metabolico, gluconeogenesi e glicogenosintesi. Decarbossilazione ossidativa degli -chetoacidi. Ciclo citrico. Reazioni anaplerotiche. Ciclo dell’acido
gliossilico. La termodinamica nei sistemi biologici. Bioenergetica. Ossido-riduzioni biologiche. Catena respiratoria. Fosforilazione ossidativa e suo meccanismo
molecolare. Rapporto P/O. Inibitori. Disaccoppianti. Stadi della respirazione. Fotosintesi clorofilliana. Lipidi neutri e lipidi polari. Digestione e assorbimento dei
lipidi. Classificazione degli acidi grassi. -ossidazione. Chetogenesi. Biosintesi degli acidi grassi: biosintesi de novo, sintesi di allungamento microsomiale e
mitocondriale. Sintesi dei trigliceridi e dei fosfolipidi. Metabolismo del colesterolo. Metabolismo delle proteine e degli amminoacidi. Reazioni di
transmetilazione. Reazioni di decarbossilazione, transamminazione e deamminazione degli amminoacidi. Ciclo dell’urea. Nucleotidi. Metabolismo e struttura
degli acidi nucleici. Vitamine idro e liposolubili. Ormoni: meccanismo di azione. Adrenalina, insulina, glucagone ed ormoni tiroidei. Ruolo dell’AMP ciclico
nella regolazione ormonale del metabolismo.
Programma delle esercitazioni
Centrifugazione; Spettrofotometria-Dosaggi proteici; Cromatografia; Elettroforesi; Dosaggi enzimatici.
Modulo II - Enzimologia
Enzimi: natura, proprietà e classificazione. Cinetica enzimatica. Tipi di inibizione enzimatica. Isoenzimi. Enzimi allosterici. Sistemi multienzimatici.
Modificazioni covalenti. Coenzimi e vitamine.
Mathews-van Hold, BIOCHIMICA, Ed. Ambrosiana
Lehninger, PRINCIPI DI BIOCHIMICA, Ed. Zanichelli
S. Papa, Metodi e tecniche in biochimica, Cacucci Editore
Modulo Biochimica: Lezioni in aula (5 CFU) ed esercitazioni di laboratorio (1 CFU)
Modulo Enzimologia: Lezioni in aula (4 CFU)
Orario di ricevimento del docente: Martedì giovedì ore 11:00-13:00
Curriculum docente:
Prof. Gabriele Vincenzo Gnoni
ProfessoreOrdinario di Biochimica(BIO/10) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Biochimica per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Scienza dell’Alimentazione per la laurea specialistica in Biologia AgroAlimentare e della Nutrizione del Corso di Laurea in Scienze Biologiche dell’Università del Salento.
Afferente al dottorato di ricerca in Biologia e Biotecnologie dell’Università del Salento.
L’attività di ricerca riguarda principalmente:
• Regolazione nutrizionale ed ormonale della lipogenesi e della biosintesi del colesterolo
• Regolazione dell’attività e dell’espressione genica di proteine carrier mitocondriali
• Studio di diete addizionate con differenti fonti di sostanze bioattive, con elevato potere antiossidante e ipolipidemizzante in animali modello e in animali da
allevamento.
• Studio del metabolismo lipidico nella steatosi epatica non alcolica
• Isolamento di ceppi batterici produttori di antibiotici migliori in termini qualitativi e/o quantitativi di quelli attualmente utilizzati o disponibili.
• Modifica del metabolismo intermedio e secondario in ceppi produttori antibiotici finalizzata all incremento della produzione di antibiotico.
• Regolazione del metabolismo lipidico in cellule nervose di glioma di ratto
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste internazionali con referees e capitoli di libri a diffusione nazionale ed internazionale.
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Genetica (SSD BIO/18, 9 CFU)
Docente: Serafina MASSARI
Programma:
Le basi fisiche dell'eredità
Le basi cromosomiche dell'eredità
La genetica mendeliana nell¹uomo
Associazione genica e ricombinazione
La natura chimica del gene
Espressione genica: la trascrizione
Espressione genica: la traduzione
Caratteristiche generali delle mutazioni
Basi molecolari delle mutazioni
Analisi funzionale del gene
Meccanismi di trasferimento genico nei batteri
Analisi fine del gene
Organizzazione del cromosoma eucariotico
Alterazioni numeriche e strutturali dei cromosomi
Organizzazione strutturale del genoma
Mappatura genetica e fisica nell’uomo
HARTWELL LH et al GENETICA dall'analisi formale alla genomica. Ed McGraw-Hill
Metodi di valutazione: Prova scritta con un eventuale colloquio integrativo a scelta dello studente.
Orario di ricevimento del docente: Mercoledì ore 15:00-18:00.
Curriculum docente:
Prof. Serafina Massari
Ricercatore confermato di Genetica (BIO18) dell’Università del Salento. Attualmente docente di Genetica per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di
Diagnostica Molecolare delle Malattie Genetiche per la laurea specialistica in Biologia Umana e di Genetica Umana per il corso di Laurea triennale in Scienze
Biologiche dell’Università del Salento. Afferente al Dottorato di Ricerca in Biologia e Biotecnologie dell’Università del Salento. Professore Aggregato del
settore scientifico disciplinare dell’insegnamento svolto.
• studio di polimorfismi dei geni che rappresentano fattori di rischio per malattie cardiovascolari ed immunologiche;
• studio sull’organizzazione genomica dei loci che codificano per i recettori di membrana dei linfociti T nell’uomo e in altre specie di mammifero;
• studi di esperessione di tali loci nel corso di malattie immuno-mediate nell’uomo ed in altre specie di mammifero;
• studio dell’espressione dei loci per le immunoglobuline nelle leucemie linfatiche croniche.
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste internazionali provviste di comitato di referee.
Biologia molecolare (SSD BIO/11, 10 CFU)
Anno di corso: II anno, II semestre
Docente: Luisa SICULELLA
Programma:
La doppia elica di Watson e Crick
La replicazione del DNA
Attività enzimatiche della replicazione del DNA
Enzimi di restrizione
Mappe fini di restrizione.
PCR.
Trascrizione
Sintesi proteica
Vettori di clonaggio
Clonaggio: in plasmidi, in batteriofago lamda, in cosmidi.
Purificazione di DNA ed RNA e dosaggio.
Analisi di RNA
Marcatura radioattiva di DNA
Sintesi di macromolecole in vitro
Marcatura non radioattiva
Analisi di sequenza
Costruzione e screening di genoteche di cDNA
Espressione di proteine in sistemi procariotici
Regolazione dell’espressione di geni nei procarioti
Applicazioni della tecnologia del DNA ricombinante.
Il genoma mitocondriale
Analisi di un genoma
Polimorfismi del DNA
Clonaggio: Ligazione, trasformazione e semina su piastra.
Estrazione di DNA
Analisi di restrizione ed gel elettroforesi.
Biologia Molecolare del gene; J.D.Watson at. al. Ed.Zanichelli V Edizione
Il gene VI. B.Lewin; Ed. Zanichelli
Biotecnologia Molecolare B.R. Glick e J.J.Pasternak
Curriculum docente:
Prof. Luisa Siculella
Professore Associato di Biologia Molecolare (BIO/11) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Biologia Molecolare per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Biologia Molecolare Applicata per la laurea specialistica in
Scienze Biotecnologiche, di Biologia Molecolare, di Metodologie in Biologia Molecolare per il corso di Laurea triennale in Scienze Biologiche, di Biologia
Molecolare degli Eucarioti per la laurea specialistica in Biologia Umana dell’Università del Salento. Afferente al dottorato di ricerca in Biologia e Biotecnologie
dell’Università del Salento.
L’attività di ricerca riguarda principalmente:
• Meccanismi molecolari e analisi dell'espressione di geni per enzimi lipogenici in differenti condizioni nutrizionali e ormonali (iper e ipotiroidismo, diabete,
ecc.).
• Identificazione di componenti della dieta mediterranea capaci di ridurre l’insorgenza e la progressione di malattie cardiovascolari, obesità e dislipidemie. Studio
dei meccanismi molecolari dell'attivazione endoteliale nell'aterosclerosi .
• Effetto di sostanze della dieta bioattive antiossidanti e ipolipidemizzanti in animali modello e da allevamento
Studio del metabolismo lipidico nella steatosi epatica non alcolica
• Modifica del metabolismo intermedio e secondario in ceppi produttori di antibiotici finalizzata all’incremento della produzione Regolazione del metabolismo
lipidico in cellule nervose di glioma di ratto
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste internazionali con referees e capitoli di libri a diffusione nazionale ed internazionale.
Microbiologia (SSD BIO/19, 9 CFU)
Docente: Pietro ALIFANO
Programma:
Il mondo microbico. Composizione del mondo microbico (procarioti, eucarioti, virus).
Struttura ed ultrastruttura della cellula batterica. I batteri gram-positivi e gram-negativi: caratteristiche generali. Struttura e sintesi della parete cellulare.
Struttura e funzione della membrana citoplasmatica. La membrana esterna: il lipopolisaccaride e le porine. Proteine di membrana e sistemi di trasporto. Gli
organelli citoplasmatici. La capsula. I flagelli ed i pili. Il processo di chemiotassi. La spora batterica. Organizzazione del materiale genetico: il nucleoide. Gli
Archea: un altro modello di cellula procariotica.
Nutrizione e metabolismo dei microrganismi. La nutrizione microbica. Le diverse fonti energetiche utilizzabili dai microrganismi e le attività riferibili al
metabolismo energetico. Processi aerobici (respirazione aerobica) e anaerobici (fermantazioni). Le principali vie fermentative microbiche: fermentazione
alcolica, lattica, acido-mista, butandiolica, propionica, butirrica. Fotosintesi nei batteri. Il processo di fissazione dell’azoto e della CO2. Assimilazione di fosforo,
zolfo ed azoto inorganici. La metanogenesi negli Archea. I processi biosintetici nel metabolismo microbico.
Crescita e coltura dei microrganismi. Il processo di divisione cellulare nei batteri. La curva di crescita. La misurazione della crescita microbica. Il controllo
della crescita microbica. I terreni di coltura e lo studio delle proprietà biochimiche dei procarioti in coltura. L’effetto dell’ambiente sulla crescita microbica. Gli
Archea e gli ambienti estremi.
Principi di classificazione e filogenesi microbica. I criteri di base della sistematica microbiologica. Identificazione tassonomica dei microrganismi. I principali
gruppi di eubatteri, actinomiceti, archea, eumiceti e microalghe. Fondamenti di ecologia microbica: i fattori che influenzano la colonizzazione e lo sviluppo
microbico. I microrganismi negli ecosistemi naturali. I principali microrganismi agenti di malattie dell’uomo, degli animali e delle piante. Microrganismi di
interesse industriale.
Genetica microbica e manipolazione dell’espressione genica nei procarioti Struttura e funzione dei genomi procariotici. Gli elementi genetici. Le mutazioni. I
meccanismi di riparazione. La sessualità nei batteri. Il riassortimento del materiale genetico. Variazione di fase ed antigenica. I plasmidi ed il loro significato
biologico. Il processo di coniugazione. La trasformazione e la trasduzione. Operoni e Reguloni. Regolazione dell’espressione genica nei microrganismi:
induzione e repressione. Livelli di regolazione dell’espressione genica: trascrizionale, post-trascrizionale, traduzionale, post-traduzionale. La sporulazione ed i
processi di differenziamento nei batteri. L’era della post-genomica: nuove metodologie per l’analisi funzionale dei genomi procariotici.
La crescita industriale dei microrganismi. Colture microbiche. Messa a punto del terreno e condizioni di crescita. Accrescimento in colture continue e
discontinue. Selezione, miglioramento e conservazione del ceppo. Il problema della limitatezza dell’ossigeno. Il carico metabolico. La fermentazione
discontinua; la fermentazione continua con rifornimento; la fermentazione continua. La massimizzazione del rendimento nel processo fermentativo: fonti di C, N,
P; colture con densità elevata e brodi non newtoniani. I bioreattori e i sistemi di fermentazione su larga scala: fermentazione in due tempi eseguita in reattori ad
aria compressa in tandem; fermentazione eseguita in due tempi in un unico reattore a vasca con agitazione. Raccolta delle cellule microbiche. Demolizione delle
cellule microbiche. Trattamento a valle.
Tecniche microbiologiche. Colorazione ed osservazione dei batteri al microscopio; Preparazione e sterilizzazione dei terreni di coltura; Colture microbiche;
Determinazione quantitativa dei batteri; Identificazione dei batteri con sistemi biochimici; Screening di microrganismi antibiotico-produttori da campioni di
suolo o marini.
Competenze culturali
Conoscenza di:
• struttura, ultrastruttura, nutrizione e metabolismo dei microrganismi
• principi di classificazione e filogenesi microbica
• genetica microbica e tecniche di manipolazione dell’espressione genica nei procarioti
• basi teoriche della crescita su larga scala dei microrganismi
Competenze metodologiche
Saper fare:
• crescita e coltura dei microrganismi in piccola scala
• colorazione ed osservazione dei microrganismi al microscopio ottico
• identificazione dei microrganismi mediante analisi fenotipica
• metodi di screening per la ricerca di ceppi antibiotico-produttori
M. T. MADIGAN, J. M. MARTINKO, J. PARKER. BROCK – BIOLOGIA DEI MICRORGANISMI. Vol. I Ed. CASA EDITRICE AMBROSIANA.
L.M. PRESCOTT, J.P. HARLEY, D.A. KLEIN. MICROBIOLOGIA. Ed. McGraw-Hill.
A. VAUGHAN, P. BUZZINI, F. CLEMENTI. LABORATORIO DIDATTICO DI MICROBIOLOGIA. CASA EDITRICE AMBROSIANA.
J.J. PERRY, J.T. STALEY, S. LORY. MICROBIOLOGIA. Ed. ZANICHELLI.
A.A. SALYERS e D.D. WHITT. MICROBIOLOGIA. Ed. ZANICHELLI.
S. DONADIO, G. MARINO. BIOTECNOLOGIE MICROBICHE. CASA EDITRICE AMBROSIANA.
C. RATLEDGE, B. KRISTIANSEN. BIOTECNOLOGIE DI BASE. Ed. ZANICHELLI.
B.R. GLICK, J.J. PASTERNAK. BIOTECNOLOGIA MOLECOLARE
Metodi di valutazione: Prova orale
Orario di ricevimento del docente: Martedì ore 15-18:30 ed in altri momenti per appuntamento
Curriculum docente:
Prof. Pietro Alifano
Professore Associato del SSD BIO/19 – Microbiologia generale dell’Università del Salento.
Ha avuto la responsabilità didattica di numerosi insegnamenti nell’ambito del proprio SSD per le esigenze dei Corsi di Laurea in Scienze biologiche,
Biotecnologie, Scienze e Tecnologie per l’Ambiente, Tecnologie per la Conservazione ed il Restauro, dei Corsi di Laurea specialistica in Biologia umana,
Biologia agro-alimentare e della Nutrizione, Scienze biotecnologiche, e di Corsi di Master e di Formazione nell’ambito dei settori biotecnologico ed ambientale.
E’ inserito nel Collegio dei Docenti per il Dottorato di Biologia e Biotecnologie dell’Università del Salento. Professore di Ruolo del SSD dell’insegnamento
previsto dal presente regolamento didattico.
• Studio della regolazione dell’espressione genica nei batteri a livello trascrizionale e post-trascrizionale attraverso l’utilizzo dell’operone istidina di Escherichia
coli e di Salmonella enterica come sistema modello;
• Studio della variazione di fase e della variazione antigenica in Neisseria meningitidis;
• Studio della fase intracellulare del ciclo infettivo di Neisseria meningitidis;
• Studio della regolazione del metabolismo secondario negli attinomiceti antibiotico-produttori;
• Studio della filogenesi dei batteri metanotrofi guainati;
• Studio delle interazioni tra batteri e strutture radicali della pianta di Vetiver;
• Studio delle interazioni tra meduse e vibrioni luminescenti.
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni scientifiche su riviste internazionali, capitoli di libri, brevetti, e dalla responsabilità scientifica di
numerosi progetti di ricerca.
Biofisica e Fisiologia (SSD BIO/09, 9 CFU)
Docente: Michele MAFFIA
Programma:
Processi cellulari fondamentali
Organizzazione cellulare e molecolare della materia vivente. Cellule ed organismi: sistemi aperti e ambiente interno. Cellule, tessuti ed organi. Energia ed attività
vitale. Scambi tra cellule ed ambiente. Il concetto di omeostasi.
Biofisica molecolare
Strutture molecolari
Motivi strutturali nelle proteine; Strutture a dominio alfa; strutture alfa/beta; strutture beta antiparallele. Proteine di membrana. Famiglie di recettori.
Determinazione delle strutture proteiche. Cenni sulla Proteomica.
Strutture supermolecolari
Le membrane cellulari: I costituenti; Struttura e Dinamica. Il modello a mosaico fluido; i lipidi di membrana; struttura e funzione delle proteine di membrana;
carboidrati di membrana. Applicazioni biotecnologiche
Fenomeni di trasporto
Fenomeni di trasporto attraverso le membrane ed epiteli. Trasporto passivo: la diffusione. Semplice; Trasporto mediato da proteine di membrana. Diffusione
facilitata; Trasporto attivo primario e secondario. Canali e carrier. Trasporti mediati da vescicole. Distribuzione dell'acqua e dei soluti nell'organismo: equilibrio
elettrico, chimico ed osmotico. Applicazioni biotecnologiche
Biofisica cellulare
Osmosi e potenziale di membrana
Osmosi, canali dell’acqua e regolazione del volume cellulare. Il controllo intra-cellulare del pH e del calcio: meccanismi molecolari, regolazione. Genesi del
potenziale di membrana.
Biofisica della funzione neuronale
Struttura, funzione ed organizzazione del neurone. Segnali elettrici nei neuroni. I canali ionici. Conformazione molecolare delle principali classi di canali ionici.
Variazioni del potenziale di membrana. Ruolo degli ioni nei segnali elettrici. Potenziali graduati. Sommazione di potenziali graduati. Il potenziale d’azione.
Periodi refrattari relativo e assoluto. Codificazione dell’intensità dello stimolo. La propagazione del potenziale d’azione. Fattori che influenzano la velocità di
conduzione.
Comunicazione intercellulare nel sistema nervoso
Trasmissione sinaptica: Sinapsi elettriche e chimiche. Trasmissione sinaptica a livello della giunzione neuromuscolare. Meccanismi di integrazione sinaptica.
Modulazione della trasmissione sinaptica. Meccanismo di liberazione dei neurotrasmettitori. I neurotrasmettitori.
Movimento cellulare
Il muscolo scheletrico. Il meccanismo di contrazione. La regolazione della contrazione. Accoppiamento eccitazione contrazione. Il metabolismo del muscolo
scheletrico Tensione e lunghezza delle fibre. Sommazione delle contrazioni. L’unità motoria. Il muscolo liscio. Il muscolo cardiaco.
Omeostasi e controllo
Sistema endocrino
La comunicazione intercellulare: ormoni e recettori. Segnalazione autocrina e paracrina. Principali vie di trasduzione dei segnali. Identificazione e purificazione
di recettori di superficie. Recettori accoppiati a proteine G e loro effettori. Recettori tirosin-chinasi e proteine Ras. I secondi messaggeri. Interazione e
regolazione delle vie di trasmissione del segnale. Dalla membrana plasmatica al nucleo. Principali ormoni e fattori di crescita e loro azioni.
Sistema nervoso
Funzioni cerebrali. Apprendimento e memoria. Recettori NMDA e potenziamento a lungo termine. I sistemi sensoriali. Recettori. Vie sensoriali. Traduzione
sensoriale. Codificazione ed elaborazione dello stimolo
Funzioni e Meccanismi generali degli apparati
Apparato cardiovascolare. Il circuito. Il cuore come pompa. Potenziali d’azione cardiaci. Conduzione elettrica. Il pacemaker e la frequenza. Il ciclo cardiaco. Il
controllo del cuore. Scambi a livello di capillari. Apparato Respiratorio, Intestinale e Renale: Funzioni e meccanismi generali.
Programma delle esercitazioni di laboratorio
Tecniche di isolamento di particolati sub-cellulari per studio dei fenomeni di trasporto. Tecniche fluorimetriche per lo studio del trasporto di acqua, ioni, e soluti
in organuli sub-cellulari; cellule ed epiteli. Tecniche biomolecolari per lo studio di sistemi di trasporto. Tecniche di base per la proteomica. Tecniche di
simulazione matematica dell’eccitabilità cellulare. Analisi elettroforetica e spettrofotometrica di parametri fisiologici del sangue (emoglobina; globuli rossi;
ematocrito, etc..). Misura dell’osmolarità del plasma.
Testi di riferimento
Silverthorn, Fisiologia, Ed. Ambrosiana;
Berne-Levy Principi di Fisiologia, Ed. Ambrosiana
Testi di consultazione
Branden; Tooze. Introduzione alla struttura delle proteine. Zanichelli
Lodish, Berk, Zipursky, Matsudaira, Baltimore, Darnell. Biologia Molecolare della cellula. Zanichelli.. Kandel, Schwartz, Jessell. Fondamenti delle neuroscienze
e del compo
Curriculum docente:
Prof. Michele Maffia
Professore Associato di Fisiologia (BIO/09) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Biofisica e Fisiologia per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Fisiomica per la laurea specialistica in Scienze Biotecnologiche
e di Tecniche in Fisiologia Cellulare e Molecolare per il corso di Laurea triennale in Scienze Biologiche dell’Università del Salento.
Afferente al dottorato di ricerca in NanoScienze dell’ISUFI di Lecce.
• Studio dei meccanismi di trasporto di macro e micro-nutrienti in membrane plasmatiche, cellule e epiteli e dei loro aspetti fisiopatologici;
• Studio della fisiologia adattativa di teleostei antartici e degli aspetti applicativi di proteine ed enzimi adattati alle basse temperature in ambito biotecnologico;
• Studio degli aspetti applicativi della proteomica nello studio delle patologie cardiovascolari, oncologiche e autoimmunitarie.
internazionale.
Anatomia umana (SSD BIO/16, 6 CFU)
Docente:
Programma:
Metodi di valutazione:
Curriculum docente:
Biologia applicata (SSD BIO/13, 8 CFU aula + 1 CFU lab)
Anno di corso: III anno, I semestre
Docente: Cecilia BUCCI
Programma:
L’obiettivo principale del corso è lo studio integrato della cellula eucariotica animale con particolare riguardo ai meccanismi molecolari di base coinvolti
nel traffico di membrana e nella biogenesi degli organelli. Lo studio dei meccanismi molecolari alla base dei diversi processi cellulari servirà anche ad
introdurre alcune patologie e a spiegare l’insorgenza di patologie ereditarie ed acquisite dovute ad alterazioni di questi processi come, ad esempio, ad
alterazioni nel traffico intracellulare di membrana.
Argomenti del corso
- Regolazione della sintesi e del ripiegamento delle proteine. Modificazioni e processazione delle proteine. Meccanismi di degradazione intracellulare delle
proteine.
-Compartimenti intracellulari e smistamento delle proteine. Biogenesi dei compartimenti intracellulari. Meccanismi molecolari del trasporto di membrana e
mantenimento della diversità dei compartimenti. Endocitosi. Esocitosi. Autofagia.
-Funzione e distribuzione dei lipidi di membrana. Fosfoinositidi e traffico intracellulare.
-Regolazione del citoscheletro di actina e del citoscheletro di tubulina. Ruolo e regolazione dei filamenti intermedi. Il citoscheletro ed il traffico intracellulare.
-Regolazione del ciclo cellulare e punti di controllo.
-Introduzione ai patogeni. Biologia cellulare dell’infezione virale. Biologia cellulare dell’infezione batterica
-Generalità sulle colture cellulari. Campi di applicazione delle colture cellulari. Utilità delle colture cellulari per lo studio della biologia cellulare. Allestimento,
propagazione e conservazione di colture in sospensione e aderenti al substrato. Determinazione e controllo di contaminazioni delle colture cellulari da parte di
microrganismi e virus. Organizzazione del laboratorio di colture cellulari. Tecniche per il mantenimento dell’asepsi e norme di sicurezza.
A. Fantoni, S. Bozzaro, G. Del Sal, S. Ferrari, M. Tripodi. Biologia cellulare e genetica. Parte Prima: Biologia cellulare. Ed. Piccin.
B. Alberts, A. Johnson, J. Lewis, M. Raff, K. Roberts, P. Walter, Biologia molecolare della cellula, IV edizione, Ed. Zanichelli.
Orario di ricevimento del docente: Mercoledì ore 16:00-18:30.
Curriculum docente:
Prof. Cecilia Cecilia
Professore Associato del SSD BIO/13 – Biologia Applicata dell’Università del Salento.
Ha avuto la responsabilità didattica di numerosi insegnamenti nell’ambito del proprio SSD per le esigenze dei Corsi di Studio Triennali e Magistrali in Scienze
Biologiche, Biotecnologie e Scienze Ambientali, ma anche in Corsi di Master e di Formazione in ambito biomedico e biotecnologico. E’ inserito nel Collegio dei
Docenti del Dottorato di Scienze Morfologiche e Molecolari dell’Università Cattolica di Roma, di cui è sede consorziata l’Università del Salento.
Professore di Ruolo del SSD dell’insegnamento previsto dal presente regolamento didattico.
• Studio della regolazione dello smistamento delle proteine e del traffico vescicolare di membrana.
• Studio della regolazione della biogenesi degli organelli intracellulari.
• Studio delle basi molecolari dell’endocitosi e dell’esocitosi con particolare riguardo al ruolo delle GTPasi della famiglia Rab.
• Studio delle basi molecolari della fagocitosi, con particolare riguardo al ruolo delle proteine GTPasi della famiglia Rab nella formazione e maturazione del
fagosomi.
• Studio delle basi molecolari delle patologie infettive con particolare attenzione alle strategie di sopravvivenza intracellulare dei patogeni procariotici che
alterano il normale traffico intracellulare di membrana.
• Studio del ruolo del traffico di membrana in patologie umane ereditarie ed acquisite.
Patologia, Immunologia, Igiene (insegnamento integrato)
– Modulo Patologia, Immunologia (SSD MED/04, 6 CFU)
– Modulo Igiene (SSD MED/42, 4 CFU)
Anno di corso: III anno, I semestre
Docente: Bruno DI JESO (Modulo Patologia, Immunologia)
Docente: Marcello GUIDO (Modulo Igiene)
Programma:
Modulo Patologia, Immunologia
Patologia.
Introduzione alla Patologia Generale: Concetto di Stato di salute, Patologia e Malattia. Cause di Malattia
Infiammazione
Introduzione: Cause endogene ed esogene del processo infiammatorio.
Segni clinici dell’infiammazione e indagini di laboratorio.
I momenti del processo infiammatorio:
- La fase iniziale, la vasodilatazione, la microcircolazione.
- La fase immediata, il riflesso assonico, la fase tardiva.
- L'essudazione: la permeabilità capillare, il ristagno dei liquidi nei tessuti.
- La diapedesi: la chemiotassi, l'adesione alle pareti, l'attraversamento della parete.
- La fagocitosi: reazioni che coinvolgono i metaboliti reattivi dell'ossigeno prodotto dalle cellule fagocitarie, difetti funzionali congeniti delle cellule fagocitarie.ì
- La stasi. Le cellule del processo infiammatorio.
Caratteristiche generali degli essudati. Evoluzione dei focolai flogistici: fenomeni produttivi e riparativi.
Aspetti morfologici del processo infiammatorio.
Le infiammazioni acute: l'infiammazione sierosa, l'infiammazione fibrinosa, l'infiammazione purulenta, l'infiammazione allergica, l'infiammazione catarrale,
l'infiammazione emorragica e necrotica emorragica.
Le infiammazioni croniche: diffuse o interstiziali, granulomatose, le cellule giganti:- fisiologiche, infiammatorie, neoplastiche.
- Granuloma tubercolare, granuloma actinomicotico.
- Granuloma luetico.
- Il granuloma reumatico.
- Granuloma da corpo estraneo (pneumoconiosi): silicosi, asbestosi.
Rigenerazione
1. Generalità e descrizione del processo nei vari tessuti.
2. Anomalie del processo proliferativo e differenziativo: metaplasia, displasiaRiparazione
La matrice extracellulare, il processo di riparazione, guarigione delle ferite.
Immunologia
Immunità naturale e acquisita
Organi linfatici
Caratteristiche della risposta immunitaria.
Cellule e organizzazione del sistema immunitario.
Antigeni
Struttura e funzione degli anticorpi.
Interazione antigene-anticorpo.
Il complesso maggiore di istocompatibilità (MHC).
Il recettore per l'antigene dei linfociti T.
Biogenesi dei recettori per gli antigeni sui linfociti.
Processazione e presentazione dell'antigene.
Cooperazione cellulare e attivazione dei linfociti B.
Meccanismi effettori dell'immunità umorale.
Le citochine e i loro recettori.
Il sistema del complemento.
Immunità cellulo-mediata.
L'immunità verso i microorganismi.
Il controllo della risposta immunitaria.
La sieroprofilassi e le vaccinazioni.
Immunoematologia: (gruppi sanguigni e principi di terapia trasfusionale.
Tecniche immunologiche.
Modulo Igiene
Epidemiologia generale
- Nozioni di base
- Principali misure in epidemiologia
- Studi epidemiologici
- Valutazione del rischio: aspetti generali
Epidemiologia applicata:
- Lo screening
Epidemiologia delle malattie infettive
- Aspetti generali
- Catena infettiva
- Vie di trasmissione
- Ruolo dell’ospite
- Fattori ambientali
- Storia naturale dell’infezione/malattie infettive
- Impatto degli agenti infettivi e manifestazioni delle malattie infettive in seno alle comunità
- Sorveglianza delle infezioni e delle malattie infettive
I vaccini
Epidemiologia molecolare delle malattie infettive
- Aspetti generali dell’epidemiologia molecolare
- Epidemiologia molecolare delle infezioni ad eziologia batterica e virale
Epidemiologia e profilassi delle infezioni veicolate dagli alimenti
Epidemiologia e profilassi delle tossinfezioni alimentari
Risultati di apprendimento previsti: Far acquisire allo studente le basilari nozioni per l'utilizzo degli strumenti propri dell'epidemiologia nell'ambito della
ricerca biotecnologica ai fini della prevenzione e diagnostica delle malattie dell'uomo.
Modulo Patologia, Immunologia
Abbass-Lichtman, Fondamenti di Immunologia, 2003, PICCIN.
Modulo Igiene
Angelillo B., Crovari P., Gullotti A., Meloni C. Manuale di Igiene. Epidemiologia generale ed applicata. Masson Editore 1993.
Barbuti S., Bellelli E., Fara G.M., Giammanco, G. Igiene. Monduzzi Editore 1996.
Comodo N., Maiocco G. Igiene e Sanità Pubblica. Carocci Faber Editore 2002.
Crovari P., Principi N. Le vaccinazioni. Pacini Editore 2000.
Lizza M. La sicurezza negli ambienti sanitari. Manuale d’uso. Centro Scientifico Editore s.r.l. Torino.
Pontecorvo M., Piazza M. Vaccini e immunoglobuline. (VIII edizione).
Materiale didattico fornito dal docente.
Modulo Patologia, Immunologia: Lezioni in aula (5 CFU) ed esercitazioni di laboratorio (1 CFU)
Modulo Igiene: Lezioni in aula (3 CFU) ed esercitazioni di laboratorio (1 CFU)
Metodi di valutazione: Il conseguimento dei crediti è ottenuto mediante prova scritta e/o orale con votazione in trentesimi ed eventuale lode.
Prof. Bruno Di Jeso: Mercoledì ore11:00-15:00
Prof. Marcello Guido: Tutti i giorni previo appuntamento telefonico/e-mail.
Curriculum docente:
Prof. Bruno Di Jeso
Professore Associato di Patologia Generale (MED/04) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Immunologia per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Patologia Generale per il corso di Laurea triennale in Scienze
Biologiche, di Patologia Molecolare per la laurea specialistica in Biologia Umana e di Patologia della Nutrizione per laurea specialistica Agroalimentare e
Nutrizionistica dell’Università del Salento.
Afferente al dottorato di ricerca in Biologia e Biotecnologie dell’Università del Salento.
Professore di Ruolo del settore scientifico disciplinare MED/04 dell’insegnamento svolto.
L’attività di ricerca è focalizzata Le linee di ricerca vertono su due tematiche principali: endocrinologia ed oncologia molecolare. In particolare:
• Studio del folding e maturazione conformazionale della tireoglobulina.
• Studio delle basi molecolari dei gozzi congeniti ipotiroidei.
• Studio della patogenesi del diabete di tipo 2 e delle tiroiditi autoimmuni: ruolo dello stress del reticolo endoplasmico.
• Studio dei meccanismi molecolari alla base della progressione neoplastica dei carcinomi tiroidei. su:
internazionale.
Prof. Marcello Guido
Ricercatore Confermato e Professore Aggregato di Igiene Generale ed Applicata (MED/42) dell’Università del Salento.
Attualmente docente di Igiene Generale ed Applicata per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Igiene (curriculum Biosanitario), Igiene degli Alimenti
(curriculum Agroalimentare e della Nutrizione) per il corso di Laurea triennale in Scienze Biologiche dell’Università del Salento.
Professore Aggregato del settore scientifico disciplinare dell’insegnamento svolto.
• studi di sieroepidemiologia delle malattie infettive prevenibili con la vaccinazione (varicella, morbillo, parotite, rosolia, etc);
• sperimentazione clinica di nuovi vaccini;
• sorveglianza epidemiologica e virologica dell’influenza e di altre virosi respiratorie (Metapneumovirus, Human Bocavirus, etc.);
• valutazione in vitro su colture cellulari di Plasmodium falciparum dell’attività antimalarica di estratti di Artemisia annua;
L’attività di ricerca è documentata da numerose pubblicazioni su riviste nazionali accreditate ed internazionali provviste di comitato di referees.
Chimica fisica e analitica (insegnamento integrato)
– Modulo Chimica fisica (SSD CHIM/02, 3 CFU aula)
– Modulo Chimica analitica (SSD CHIM/01, 3 CFU aula)
Anno di corso: III anno, II semestre
Docente: Ludovico VALLI (Modulo Chimica fisica)
Docente: Cosimino MALITESTA (Modulo Chimica analitica)
Programma:
Modulo Chimica fisica
Il primo principio della termodinamica. La formulazione del primo principio. Le funzioni termodinamiche "Energia interna" ed "Entalpia". Entalpie di
reazione e entalpie di formazione dei composti. La capacità termica, i calori specifici ed i calori molari. Dipendenza dei calori di reazione dalla temperatura. La
calorimetria.
Il secondo principio della termodinamica. La formulazione del secondo principio. Trasformazioni reversibili e irreversibili. La funzione di stato "Entropia".
Scala termodinamica della temperatura. Il "Potenziale chimico". Bilancio entropico nelle trasformazioni reversibili e irreversibili. Le funzioni "Energia libera di
Helmholtz" ed "Energia libera di Gibbs". Variazioni di energia libera e lavoro massimo reversibile. Le relazioni di Maxwell.
Alcune applicazioni del primo e del secondo principio. Espressione delle varie grandezze termodinamiche del gas ideale: energia interna, entalpia, entropia,
energie libere di Helmholtz e di Gibbs. Equilibrio termodinamico tra fasi per sistemi ad un componente. Equilibri liquido-vapore e solido-vapore: la "tensione di
vapore". Equazione di Clausius-Clapeyron.
Modulo Chimica analitica
La Chimica Analitica: scopo e ruolo nelle biotecnologie. Il Processo Analitico. Cenni di trattamento statistico dei dati. Caratteristiche e classificazione delle
metodologie analitiche. La Chimica Analitica Strumentale. Metodi spettroscopici (spettroscopie molecolari uv-vis di assorbimento e fluorescenza), Metodi
elettroanalitici (potenziometria). Metodi spettroscopici (spettroscopie molecolari di assorbimento e fluorescenza uv-vis). Principi di metodi cromatografici
(gascromatografia, cromatografia liquida ad alta efficienza). Cenni di spettrometria di massa e di tecniche ifenate (GC-MS, LC-MS).
Propedeuticità: Gli esami di Chimica generale ed inorganica e di Fisica applicata alle biotecnologie sono propedeutici per l’esame di Chimica fisica e analitica.
Modulo Chimica fisica
Peter W. Atkins, CHIMICA FISICA, Zanichelli
G.K.Vemulapalli, CHIMICA FISICA, EdiSES
Laidler, Meiser, CHIMICA FISICA, Editoriale GRASSO
R.A.Alberty, R.J.Silbey, PHYSICAL CHEMISTRY, John Wiley & Sons
D.A.McQuarrie, J.D.Simon, CHIMICA FISICA - Un approccio molecolare - Zanichelli
Walter J. Moore, CHIMICA FISICA, Piccin
H. Kuhn, H.D. Forsterling, PRINCIPLES OF PHYSICAL CEHMISTRY, John Wiley and Sons
I.M. Klotz, R.M. Rosenberg, CHEMICAL THERMODYNAMICS, John Wiley and Sons
Modulo Chimica analitica
D.C.Harris, "Chimica Analitica Quantitativa", II edizione, Zanichelli, Bologna
Holler, Skoog Crouch, "Chimica Analitica Strumentale", II edizione, EdiSES, Napoli
Skoog, West, Holler, Crouch, "Fondamenti di Chimica Analitica", II edizione, EdiSES, Napoli
Modulo Chimica fisica: Lezioni in aula (3 CFU)
Modulo Chimica analitica: Lezioni in aula (3 CFU)
Prof. Cosimino Malitesta: Martedì, giovedì e venerdì, ore 13:00-15:00 ed in altri momenti per appuntamento
Prof. Ludovico Valli: Si rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Curriculum docente:
Prof. Ludovico Valli
Professore Ordinario di Chimica Fisica (SSD CHIM/02) dell’Università del Salento. Tiene corsi di insegnamento nell’ambito del proprio SSD sia presso la
Facoltà di Scienze MM FF NN che presso quella di Beni Culturali. Afferente al Dottorato di Ricerca in “Ingegneria dei Materiali e Processi Tecnologici” del
Dipartimento di Ingegneria dell’Innovazione. Professore di Ruolo del settore scientifico disciplinare dell’insegnamento svolto.
• deposizione di film sottili di bio-materiali e loro caratterizzazione morfologica, spettroscopica e strutturale;
• applicazione di tali film per la produzione di ossigeno singoletto ed ossido nitrico utili nella terapia fotodinamica associata agli effetti di NO;
• applicazioni di tali film ultrasottili nella riproduzione in laboratorio dei fenomeni fotoindotti alla base della fotosintesi clorofilliana;
• applicazioni di tali film in biosensori.
L’attività di ricerca è documentata da oltre 130 pubblicazioni su riviste internazionali provviste di comitato di referees e capitoli di libri a diffusione
internazionale.
Prof. Cosimino Malitesta
Il Prof. Malitesta vanta una lunga esperienza didattica in Chimica Analitica essendo stato nel settore ricercatore sin dal 1988 e professore (prima associato e poi
ordinario) dal 1992. La particolare competenza nell’insegnamento della disciplina nei corsi di laurea delle biotecnologie è maturata avendo tenuto insegnamenti
di Chimica Analitica, che hanno sempre previsto un notevole numero di esercitazioni in laboratorio, nei corsi di laurea di quelle classi a Lecce sin dalla loro
istituzione.
L’attività di ricerca del Prof. Malitesta si svolge interamente nel settore della Chimica Analitica e si sviluppa secondo diverse linee. Particolarmente significativa
nel presente contesto è quella dedicata allo sviluppo di sensori chimici e biosensori, una linea attiva sin dal 1990 che ha introdotto in maniera originale in questo
campo prima l’immobilizzazione elettrochimica di enzimi mediante film non conduttori permselettivi (Analytical Chemistry Volume: 62 Issue: 24 Pages: 27352740 Published: DEC 15 1990; citazioni 317) e la sintesi elettrochimica di polimeri a stampo molecolare (Analytical Chemistry Volume: 71 Issue: 7 Pages:
1366-1370 Published: APR 1 1999; citazioni 161). Tale attività si avvale di collaborazioni internazionali quale quella con il Prof. Piletsky (Cranfield Health
School, Cranfield University, UK).
Fisiologia e Biotecnologie vegetali (SSD BIO/04, 9 CFU)
Docente:
Programma:
Curriculum docente:
Bioetica e Brevetti (SSD MED/02, 4 CFU)
Docente:
Programma:
Organizzazione della didattica: Lezioni in aula (4 CFU)
Curriculum docente:
In riferimento al singolo CFU: N. 17 ore riservate allo studio individuale / N. 8 ore riservate alle lezioni frontali in aula; N. 9 ore riservate allo studio
individuale / N. 16 ore riservate alle attività di laboratorio.
Altre attività formative
Attività a scelta dello studente (12 CFU)
Anno di corso: III anno
Finalità: Attività finalizzate al completamento della formazione coerentemente con gli obiettivi formativi previsti dal Corso di Laurea.
Lingua Inglese (3 CFU)
Docente: Lettore di madrelingua presso il Centro Linguistico d’Ateneo (CLA) – Polo scientifico.
Finalità e caratteristiche: Approfondimento della conoscenza della lingua inglese letta, parlata e scritta con particolare riferimento ai lessici disciplinari.
Metodi di valutazione: Idoneità (test scritto).
Laboratorio di Bioinformatica (3 CFU)
Docente: Tiziano VERRI
Programma:
Introduzione alla bioinformatica.
Banche dati biologiche.
Allineamento di sequenze di acidi nucleici e proteine.
Allineamento multiplo di sequenze.
Ricerca di pattern e motivi funzionali.
Evoluzione molecolare.
Analisi strutturale delle proteine.
Analisi della struttura secondaria delle molecole di RNA.
Sequenziamento ed analisi di genomi.
Analisi del trascrittoma e del proteoma.
Genomica funzionale.
Esercitazioni di bioinformatica.
Testi consigliati
Introduzione alla Bioinformatica, Valle G., Helmer Citterich M., Attimonelli M., Pesole G., Zanichelli.
Testi di consultazione
Bioinformatica, Tramontano A., Zanichelli.
Metodi di valutazione: Idoneità. Per le modalità rimanda alla scheda personale (http://www.unisalento.it/web/guest/phonebook1)
Curriculum docente:
Prof. Tiziano Verri
Professore Associato di Fisiologia (BIO/09) dell’Università del Salento. Attualmente docente di Laboratorio di Bioinformatica e di Fisiologia dei Modelli
Animali per il corso di laurea triennale in Biotecnologie, di Fisiologia II per il corso di laurea specialistica in Scienze Biotecnologiche, di Fisiologia Umana per il
corso di laurea specialistica in Biologia Umana dell’Università del Salento. Afferente al dottorato di ricerca in Biologia e Biotecnologie dell’Università del
Salento. Professore di ruolo del settore scientifico disciplinare BIO/09.
Studia i processi di trasporto dei soluti attraverso le barriere epiteliali, con particolare riferimento alla funzione e alla regolazione dei trasportatori di
amminoacidi, piccoli peptidi, peptido-mimetici e farmaci peptido-simili in cellule intestinali, renali e tiroidee. Usa i metodi della fisiologia, della biochimica,
della biologia molecolare e della bioinformatica e utilizza sistemi in vitro (linee cellulari, oociti di Xenopus laevis) e modelli animali, convenzionali (mammiferi)
ed alternativi (pesci e crostacei). Tra questi ultimi, il teleosteo Danio rerio (zebrafish). Parte della sua ricerca ha riguardato lo sviluppo di strategie per il
miglioramento della tecnologia per il trasferimento genico nei pesci. Questa ricerca ha esaminato l’espressione somatica di geni eterologhi in pesci d’interesse
commerciale e l’analisi in vivo dei relativi processi di attivazione trascrizionale ed è stata condotta usando vettori adenovirali destinati alla terapia genica e vettori
basati su elementi trasponibili. Un altro aspetto di questa ricerca ha riguardato la messa a punto di protocolli di vaccinazione a DNA in pesci di interesse
commerciale.
Stage/tirocini (6 CFU)
Finalità e caratteristiche: Stage volto alla acquisizione di conoscenze utili per l’inserimento nel mondo del lavoro, nonché ad agevolare le scelte professionali,
mediante la conoscenza diretta dei settori lavorativi e di ricerca cui il titolo di studio può dare accesso. Il periodo di stage può essere svolto presso le strutture
dell’Università del Salento, o presso aziende convenzionate (strutture della pubblica amministrazione, laboratori universitari ed extrauniversitari, aziende
private). Alla fine del periodo di stage lo studente redige una relazione sull’attività svolta che viene valutata dalla Commissione didattica paritetica.
Prova finale (4 CFU)
Caratteristiche: La prova finale per il conseguimento della Laurea in Biotecnologie consiste nella presentazione e nella discussione di una Tesi elaborata dallo
studente su un argomento scientifico di interesse biotecnologico, sotto la guida di un relatore. I criteri per la definizione del voto di Laurea sono definiti da un
apposito Regolamento stabilito dal Consiglio didattico, previo parere della Commissione didattica paritetica. Il voto di Laurea è espresso in cento-decimi con
eventuale lode, e tiene conto dell’esito della prova finale, del percorso complessivo dello studente, e della maturità culturale e professionale complessivamente
raggiunta.

Archivio 2010/2011 (Biotecnologie)

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