TGS TA EBV VCA IgG

TGS TA EBV VCA IgG
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TGS TA EBV VCA IgG
ISTRUZIONI
PER L’USO
100
FINALITA’ D’USO
Il test TGS TA EBV VCA IgG è un test immunologico chemiluminescente (CLIA) per la determinazione
quantitativa, con strumentazione dedicata TGS TA Analyser, degli anticorpi specifici di classe IgG diretti
contro l’antigene capsidico del virus Epstein-Barr (VCA) in campioni di siero o plasma umano (EDTA, Sodio
Citrato).
Questo dosaggio viene impiegato come ausilio diagnostico nella valutazione della mononucleosi infettiva
(IM).
ATTENZIONE: Qualunque decisione medica non può essere basata sul risultato di questo solo test, ma va
fondata sulla valutazione dell’insieme di tutti i dati clinici e di laboratorio disponibili.
SIGNIFICATO CLINICO
Il virus di Epstein Barr (EBV) o Human herpesvirus 4 (HHV-4)
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è un virus che si insedia stabilmente
nell’organismo e, in funzione delle modalità infettive e delle condizioni fisiologiche dell’ospite, può andare
incontro a due tipi di ciclo vitale: un ciclo litico in cui l’attiva replicazione virale e produzione di nuovi virioni
porta a lisi delle cellule ed ulteriore propagazione ed un ciclo di latenza che corrisponde ad uno stato di
apparente quiescenza in quanto sotto stretto controllo del sistema immunitario.
L’infezione da EBV riconosce un ruolo eziologico accertato nella Mononucleosi infettiva (MI)
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la cui
manifestazione tipica acuta è più frequentemente riscontrabile nell’adolescente e nel giovane adulto, e nella
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Malattia Linfoproliferativa X-recessiva (XLP) . La Mononucleosi infettiva generalmente ha un periodo di
incubazione di circa 4-6 settimane, mentre la durata della fase acuta è di 2-3 settimane e la convalescenza
(caratterizzata da forte astenia), può durare da circa sei settimane a sei mesi. Oltre alla MI, è stata
ampiamente documentata una forte associazione patogenetica tra l’infezione da EBV ed il Linfoma di Burkitt,
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il Linfoma di Hodgkin, la Malattia linfoproliferativa (PTLD) e il Carcinoma nasofaringeo . Un ruolo causale
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5
controverso viene riferito in corso di LES , Sclerosi multipla e Carcinoma mammario.
Dal punto di vista epidemiologico il 90-95% della popolazione adulta risulta sieropositiva ed in particolare,
nei paesi industrializzati il 50% circa dei bambini risulta essere sieropositivo all’età di 5 anni (la MI ha un
massimo di incidenza tra i 15 e i 24 anni ma può verificarsi fin dall’età di 4 anni).
Le maggiori difficoltà nella diagnosi clinica di infezione da EBV sono legate all’inizio subdolo e a volte
misconosciuto e all’ampia variabilità sintomatologica. I sintomi associati ad infezione da EBV sono
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sovrapponibili a quelli di infezioni provocate da altri patogeni o di patologie non infettive come: febbre per 1015 giorni (80-90%), astenia, angina (80%), adenopatia cervicale e/o ascellare (80-90%), splenomegalia,
epatomegalia (raramente con ittero), rash esantematico, debolezza muscolare, artralgie, edema palpebrale
e raramente può essere presente un interessamento del Sistema Nervoso Centrale, pericardite, miocardite,
infiltrato polmonare. Peraltro è possibile rilevare alterazioni biochimiche e/o ematologiche associate ad
infezione da EBV quali: linfocitosi assoluta con presenza di linfociti atipici, trombocitopenia, neutropenia,
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transaminasi 2-3 volte aumentate , presenza di autoanticorpi.
In presenza di tali generici segni e sintomi si impone una diagnosi differenziale con un’infezione da
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Citomegalovirus, Toxoplasma, Rosolia, Epatite in fase acuta (A, B, C), HIV e con Leucemie ed altre
emopatie.
L’EBV è ubiquitario nelle secrezioni orofaringee ed il contagio avviene tramite la saliva. Il contagio può
verificarsi anche tramite trasfusione di sangue o trapianto di organo.
A seguito dell’infezione primaria da Epstein-Barr virus, si ha una prima fase di infezione produttiva delle
cellule epiteliali dell’orofaringe con le particelle virali infettanti che vengono eliminate attraverso la saliva e
possono essere trasmesse ad altri individui.
Contemporaneamente vengono espresse in modo cronologico proteine e complessi proteici virali.
Nella fase successiva nei linfociti B il virus instaura una condizione di latenza, senza o con scarsa
produzione di progenie virale (Infezione non produttiva).
Nella fase di latenza, vengono espresse almeno 9 proteine virali responsabili dell’attivazione, della
proliferazione e dell’immortalizzazione dei linfociti B infettati.
Nei soggetti immunocompetenti la proliferazione dei linfociti B infettati ed immortalizzati è controllata dai
meccanismi della risposta cellulo-mediata.
In seguito ad un’infezione primaria il virus persiste per tutta la vita dell’individuo in uno stato di latenza non
produttivo all’interno dei linfociti B della memoria.
I linfociti B latentemente infettati da EBV esprimono solo l’antigene EBNA-1, corrispondente al 10% del
genoma virale.
In rare occasioni, in funzione delle condizioni ambientali e di quelle immunologiche e genetiche dell’ospite, il
virus può rientrare in una nuova fase litica, in cui l’attiva replicazione virale e la produzione di nuovi virioni
porta a lisi dei linfociti B e ad ulteriore propagazione dei virioni infettanti alle cellule epiteliali instaurando una
vera e propria riacutizzazione di infezione.
In corso di sospetta infezione da EBV la diagnosi sierologica è lo strumento principe per la valutazione dello
stato immune del soggetto. Classicamente si riconoscono soggetti suscettibili all’infezione (markers
anticorpali sierologici non rilevabili) o soggetti infettati ed in fase acuta o pregressa di infezione oppure
soggetti in cui una infezione pregressa risulta in riattivazione.
La diagnosi sierologica per EBV è alquanto complessa ed è andata evolvendosi nel tempo, puntando al
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dosaggio delle immunoglobuline IgM ed IgG dirette verso i diversi antigeni .
L’indagine sierologica di routine misura la risposta anticorpale alle proteine virali espresse durante il ciclo
litico e/o durante la latenza; consente, quasi sempre, di distinguere tra infezione acuta e pregressa, infine,
permette di monitorare la storia dell’infezione nel tempo e di evidenziare eventuali riattivazioni. Tale indagine
consiste nel dosaggio delle immunoglobuline IgM verso gli antigeni EA(D) e VCA, e nel dosaggio delle
immunoglobuline IgG verso EA(D) , VCA ed EBNA-1
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Le risposte anticorpali verso gli antigeni EA( D ) , VCA ed EBNA-1 mostrano differenti significati clinici
quando utilizzate come marker sierologici :
Early Antigen (EA)
Le EA(D) sono proteine espresse nelle fasi precoci del ciclo litico (p54 e p138). La loro funzione è per ora
ignota ma si suppone legata ad attività enzimatiche e/o di transregolazione. Durante le fasi iniziali
dell’infezione, circa l’80% dei pazienti produce IgM anti-EA(D) che raggiungono un picco per poi scomparire.
Dopo qualche settimana dall’infezione compaiono nell’80% dei pazienti IgG verso l’EA(D). Le IgG anti-EA(D)
scompaiono in convalescenza anche se circa il 20-30% dei pazienti mantengono un basso livello di IgG antiEA(D) nel tempo.
Viral Capside Antigen (VCA)
Le VCA sono proteine strutturali che costituiscono il capside virale. Durante le fasi iniziali dell’infezione, i
primi anticorpi che compaiono nel siero della maggior parte dei pazienti sono di tipo IgM anti-VCA che
raggiungono un picco e poi scompaiono dopo qualche settimana (eccezionalmente possono permanere per
settimane o addirittura per anni). A seguire compaiono anticorpi IgG verso il VCA, che permangono
indefinitamente e stabilmente nel tempo.
Epstein-Barr Nuclear Antigen (EBNA)
Il complesso EBNA è costituito da almeno 6 proteine (EBNA 1-6) la cui funzione è ancora da comprendere a
pieno. La proteina EBNA-1 è ritenuta fondamentale per il mantenimento del virus allo stato episomale
all’interno della cellula ospite. L’espressione di EBNA-1 avviene in tutte le cellule contenenti virus ma può
cessare con il ciclo litico. Dopo qualche settimana/mese dall’esordio, compaiono anticorpi IgG anti EBNA-1,
considerati come marcatore di convalescenza. Gli anticorpi anti-EBNA-1 sono quindi generalmente assenti
nella fase acuta dell’infezione primaria ed a seguire sono relazionati alla memoria immunologica
dell’individuo.
A distanza di tempo, il paziente con immunodepressione o immunocompromissione può andare incontro ad
un fenomeno di riattivazione dell’infezione da EBV. Durante la riattivazione è costante la presenza del
marcatore IgG EBNA-1(anche se in casi cronici o di forte immunosoppressione, la risposta EBNA può venire
a mancare).
PRINCIPIO DEL METODO
Il kit TGS TA EBV VCA IgG per la determinazione quantitativa delle IgG specifiche anti-VCA utilizza un
metodo immunologico indiretto a due step basato sul principio della chemiluminescenza.
L’antigene specifico è utilizzato per rivestire le particelle magnetiche (fase solida) ed un anticorpo anti-IgG
umane è marcato con un derivato dell’estere di acridinio (coniugato).
Durante la prima incubazione gli anticorpi specifici presenti nel campione, nei calibratori o nei controlli si
legano alla fase solida.
Durante la seconda incubazione il coniugato reagisce con gli anticorpi anti-VCA IgG sequestrati dalla fase
solida.
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Dopo ciascuna incubazione il materiale non legato alla fase solida è rimosso mediante aspirazione e
susseguente lavaggio.
La quantità di coniugato marcato rimasto legato alla fase solida viene valutata mediante attivazione della
reazione di chemiluminescenza e misura del segnale luminoso. Il segnale generato, espresso in unità
relative di luce (RLU, Relative Light Unit), è indicativo della concentrazione degli anticorpi specifici presenti
nel campione, nei calibratori e nei controlli.
AUTOMAZIONE
Lo strumento TGS TA Analyser esegue in automatico tutte le operazioni previste dal protocollo di dosaggio:
aggiunta nel contenitore di reazione dei campioni, calibratori, controlli, particelle magnetiche, coniugato e
soluzioni di attivazione della chemiluminescenza; separazione magnetica e lavaggio delle particelle; misura
della luce emessa.
Il sistema calcola i risultati del dosaggio per i campioni ed i controlli mediante curva di calibrazione
memorizzata e stampa un rapporto che include tutte le informazioni relative al dosaggio ed al paziente.
MATERIALI E REAGENTI
Materiali e reagenti forniti
REAG
1
MP
2.5 mL
Particelle magnetiche rivestite con antigene capsidico ricombinante VCA in Tampone Fosfato contenente
proteine stabilizzanti, tensioattivo, Pro-Clin 300 e sodio azide (< 0.1 %) come conservanti.
REAG
2
CONJ
25 mL
Anticorpo monoclonale di topo anti-IgG umane marcato con un derivato dell’estere di acridinio (coniugato), in
Tampone Fosfato contenente proteine stabilizzanti e sodio azide (< 0.1 %) come conservante.
REAG
3
DIL
25 mL
Soluzione Diluente Campioni: Tampone Fosfato contenente sieroalbumina bovina, un tensioattivo, un
colorante blu inerte, Pro-Clin 300 e Gentamicina SO4 come conservanti.
REAG
4
CAL A
1.6 mL
Siero umano con bassa concentrazione di anticorpi anti-VCA IgG in Tampone Fosfato contenente
sieroalbumina bovina, un tensioattivo, un colorante blu inerte, Pro-Clin 300 e Gentamicina SO4 come
conservanti.
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REAG
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CAL B
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1.6 mL
Siero umano con elevata concentrazione di anticorpi anti-VCA IgG in Tampone Fosfato contenente
sieroalbumina bovina, un tensioattivo, un colorante blu inerte, Pro-Clin 300 e Gentamicina SO4 come
conservanti.
Tutti i reagenti sono pronti per l’uso.
I reagenti 1, 2 e 3 sono assemblati in un unico insieme che costituisce la cartuccia reagenti.
Le concentrazioni dei Calibratori sono espresse in UA/mL (Unità Arbitrarie) e tarate contro uno standard di
riferimento interno. I valori delle concentrazioni, specifici per lotto di prodotto, sono registrati nel DATA DISK
inserito nel kit.
DATA DISK
Mini-CD contenente le informazioni riguardanti tutti i prodotti della Linea TGS TA (Reagenti, Calibratori, Sieri
di controllo) aggiornati all’ultimo lotto produttivo con l’esclusione dei prodotti scaduti alla data di compilazione
del nuovo DATA DISK.
E’ sufficiente conservare il DATA DISK con il numero di lotto più elevato per mantenere aggiornate le
informazioni richieste per il corretto funzionamento del sistema.
Materiali e reagenti richiesti ma non forniti nel kit
-
TGS TA Analyzer 120
Cod. No. TGS00001
-
IDS-iSYS Cuvette Cube *
Cod. No. IS-CC1000
Confezione da 960 cuvette.
-
IDS-iSYS System Liquid *
Cod. No. IS-CS1000
1 bottiglia da 5 litri di soluzione, pronta all’uso.
-
IDS-iSYS Wash Solution *
Cod. No. IS-CW1000
1 bottiglia da 10 litri di soluzione, pronta all’uso.
-
IDS-iSYS Trigger Set *
Cod. No. IS-CT1000
1 flacone da 250 mL di Trigger A (soluzione di preattivazione)
1 flacone da 250 mL di Trigger B (soluzione di attivazione)
-
TGS TA D-SORB Solution
Cod. No. YC500009
Confezione da 2 bottiglie da 1 litro di soluzione pronta per l’uso.
-
IDS-iSYS Cartridge Checking System *
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Cod. No. IS-601000
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-
TGS TA ImmunoCleaner
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Cod. No. YC500012
6 flaconi da 27 mL ciascuno
-
TGS TA Top Cap Set
Cod. No. YC500010
300 tappi superiori rossi per la chiusura dei contenitori dei calibratori dopo il primo utilizzo.
(*) Lo strumento TGS TA Analyzer e gli accessori identificati dall’asterisco sono fabbricati da
Immunodiagnostic Systems S.A., Rue E. Solvay, 101, B-4000 Liège, Belgium e distribuiti da Technogenetics
Srl.
Altri Reagenti Raccomandati
TGS TA EBV CONTROL SET
Cod. No. YB500030
3 fiale da 1.5 mL di siero umano negativo e 3 fiale da 1.5 mL di siero umano positivo per anticorpi anti-VCA.
AVVERTENZE E PRECAUZIONI
I reagenti forniti nel kit TGS TA EBV VCA IgG sono solo per uso diagnostico in vitro e non per uso in vivo in
uomini o animali.
Questo prodotto deve essere utilizzato in stretta osservanza alle istruzioni riportate nel presente documento
da utilizzatori professionali.
Technogenetics non può essere ritenuta responsabile di perdite o danni generati da un uso non conforme
alle istruzioni fornite.
Precauzioni di sicurezza
Questo prodotto contiene materiale di origine animale e pertanto deve essere manipolato come se
contenesse agenti infettanti.
Questo prodotto contiene componenti di origine umana. Tutte le unità di siero o plasma utilizzate per la
fabbricazione dei reagenti di questo kit sono state analizzate con metodi FDA approvati e trovate non
reattive per la presenza di HBsAg, anti-HCV, anti-HIV1 ed anti-HIV2.
Tuttavia, poiché nessun metodo di analisi è in grado di garantire l’assenza di agenti patogeni, tutto il
materiale di origine umana deve essere considerato potenzialmente infetto e manipolato come tale.
In caso di imballaggio danneggiato con fuoriuscita dei reagenti provvedere alla decontaminazione dell’area
interessata con una soluzione diluita di Ipoclorito di Sodio dopo essersi protetti con idonei dispositivi di
protezione individuale (camice, guanti, occhiali).
Provvedere allo smaltimento del materiale utilizzato per la pulizia e dei rifiuti di imballaggio coinvolti nella
fuoriuscita, in base alle norme nazionali per lo smaltimento dei rifiuti potenzialmente infetti.
Alcuni reagenti contengono sodio azide come conservante. Poiché la sodio azide può reagire con piombo,
rame e ottone piombato formando azidi esplosive nelle tubature, si raccomanda di non eliminare reagenti o
rifiuti negli scarichi ma di seguire le norme nazionali in materia di smaltimento rifiuti potenzialmente
pericolosi.
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Precauzioni operative
Per ottenere risultati affidabili è necessario attenersi strettamente alle presenti Istruzioni per l’uso e seguire
scrupolosamente quanto indicato nel manuale operativo dello strumento.
I reagenti forniti nel kit devono essere utilizzati esclusivamente con il sistema TGS TA Analyzer.
I componenti della cartuccia reagenti non possono essere rimossi dalla cartuccia e riassemblati.
Non usare il kit oltre la data di scadenza.
PREPARAZIONE DEI REAGENTI
I reagenti forniti nel kit sono tutti pronti per l’uso.
CONSERVAZIONE E STABILITA’ DEI REAGENTI
Conservare i reagenti forniti nel kit a 2-8 °C in posizione verticale ed al buio.
In queste condizioni la cartuccia reagenti ed i calibratori non aperti sono stabili sino alla data di scadenza.
La cartuccia reagenti dopo apertura può essere utilizzata per 60 giorni se conservata in frigorifero a 2-8 °C
oppure a bordo macchina.
I calibratori dopo apertura possono essere utilizzati per 60 giorni se conservati in frigorifero a 2-8 °C e se la
permanenza a bordo non supera le 6 ore per seduta.
Non congelare i reagenti ed i calibratori.
PREPARAZIONE E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI
Il dosaggio deve essere eseguito su campioni umani di siero e plasma (EDTA – Sodio Citrato).
Si sconsiglia l’uso di campioni lipemici, emolizzati e torbidi.
Se il dosaggio viene eseguito dopo più di 8 ore, separare il siero o il plasma dal coagulo, dai globuli rossi e
dalle provette di separazione con gel.
Prima di essere analizzati i campioni possono essere conservati in frigorifero a 2-8 °C per 7 giorni al
massimo.
Se il dosaggio viene eseguito dopo più di 7 giorni, conservare i campioni congelati (< - 20 °C).
Evitare congelamenti e scongelamenti ripetuti.
PROCEDIMENTO OPERATIVO
Per ottenere prestazioni analitiche affidabili attenersi scrupolosamente alle istruzioni riportate nel manuale
operativo dello strumento.
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Caricamento dei reagenti
Tutti i reagenti forniti nel kit sono pronti per l’uso.
Prima di inserire la cartuccia reagenti nel sistema, il contenitore delle particelle magnetiche deve essere
agitato per rotazione orizzontalmente in modo da favorire la risospensione delle particelle. Eseguire
l’operazione evitando la formazione di schiuma.
Posizionare la cartuccia reagenti nell’area reagenti dello strumento utilizzando l’apposita guida e lasciare in
agitazione per almeno 40 minuti prima dell’uso.
Il posizionamento della cartuccia reagenti determina contemporaneamente la lettura del codice a barre
identificativo. In caso di danneggiamento dell’etichetta della cartuccia o in caso di mancata lettura, i dati
identificativi della cartuccia reagenti possono essere inseriti manualmente.
Lo strumento mantiene automaticamente in agitazione continua le particelle magnetiche.
Se la cartuccia reagenti viene rimossa dallo strumento, conservarla verticalmente al buio a 2-8 °C.
Caricamento dei calibratori
I calibratori TGS TA sono pronti per l’uso. Lasciare i calibratori a temperatura ambiente per 10 minuti ed
agitare delicatamente il contenuto, manualmente o mediante vortex, evitando la formazione di schiuma.
Nel caso i calibratori fossero utilizzati per la prima volta, eliminare il sigillo di garanzia ed il tappo bianco di
chiusura prima del loro inserimento sullo strumento.
Nel caso i calibratori fossero già stati utilizzati, il contenitore sarà provvisto del tappo superiore (tappo rosso)
senza il sigillo di garanzia. Eliminare il tappo di chiusura rosso prima del loro inserimento sullo strumento.
Inserire nello strumento i calibratori nell’area campioni; per la loro identificazione sullo strumento consultare il
manuale d’uso dello strumento. I dati del bar code devono essere inseriti manualmente in caso di
danneggiamento dell’etichetta o in caso di mancata lettura.
I valori della concentrazione degli anticorpi IgG anti-VCA presente nei calibratori sono registrati nel DATA
DISK ed automaticamente trasferiti nell’analizzatore.
Al termine della seduta i contenitori dei calibratori devono essere chiusi con gli appositi tappi superiori (tappi
rossi) e trasferiti a 2-8 °C sino al loro successivo impiego.
I calibratori possono essere utilizzati per un massimo di quattro volte.
Caricamento dei controlli
Inserire i controlli nell’area campioni dello strumento. Per la loro identificazione sullo strumento consultare il
manuale d’uso dello strumento. In caso di mancanza del bar code sul controllo o in caso di mancata lettura, i
dati identificativi del controllo possono essere inseriti manualmente. Qualora siano utilizzati i Controlli TGS
TA, consultare le relative istruzioni d’uso. I valori della concentrazione degli anticorpi IgG anti-VCA presente
nei controlli TGS TA sono registrati nel DATA DISK ed automaticamente trasferiti nell’analizzatore.
Selezionare per ogni controllo i parametri richiesti.
Caricamento dei campioni
Inserire i campioni nello strumento, nell’area campioni; per la loro identificazione sullo strumento consultare il
manuale d’uso dello strumento. In caso di mancanza del bar code sul campione o in caso di mancata lettura,
i dati identificativi del campione possono essere inseriti manualmente.
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Selezionare per ogni campione i parametri richiesti.
Calibrazione
Lo strumento TGS TA Analyzer utilizza una curva di calibrazione memorizzata (master curve), generata dal
produttore per ogni lotto di cartuccia reagenti.
I parametri delle “master curve”, unitamente ai valori delle concentrazioni dei calibratori, sono memorizzati
nel DATA DISK e trasferiti nel database dello strumento.
I calibratori A e B sono utilizzati per ricalibrare la “master curve” in funzione sia dello strumento utilizzato che
dei reagenti a bordo.
Per eseguire la ricalibrazione analizzare in triplicato i due calibratori A e B ed in singolo i controlli. I valori di
concentrazione ottenuti con i controlli permettono di validare la nuova calibrazione.
Una volta che la ricalibrazione della “master curve” sia stata accettata e memorizzata, tutti i campioni
successivi possono essere analizzati senza ulteriore calibrazione, tranne nei seguenti casi:
-
quando è caricata a bordo dello strumento una cartuccia reagenti con un nuovo lotto;
-
quando i valori dei controlli non rientrano nell’intervallo di accettabilità;
-
quando è eseguita la procedura di manutenzione dello strumento;
-
quando è scaduta la validità della “master curve” ricalibrata.
La validità della “master curve” ricalibrata per il kit TGS TA EBV VCA IgG è di 21 giorni.
La gestione della ricalibrazione è attuata in automatico dallo strumento.
Dosaggio
Premere il tasto di avvio.
1. Il sistema aspira 100 µL di Diluente Campioni, 20 µL di Particelle Magnetiche, 100 µL di Diluente
Campioni e 10 µL di campione o controllo (per i calibratori il siero positivo è fornito prediluito con il
Diluente Campioni ed il volume prelevato è di 110 µL). Le soluzioni e la sospensione aspirate sono
dispensate nella cuvetta di reazione.
2. La cuvetta di reazione è incubata nel rotore a 37 °C per 10 minuti.
3. Dopo questa fase di incubazione, le particelle magnetiche sono separate e lavate.
4. Nella cuvetta vengono dispensati 200 µL di coniugato.
5. La cuvetta di reazione è incubata nel rotore a 37 °C per 10 minuti.
6. Dopo questa ultima fase di incubazione, le particelle magnetiche sono separate e lavate e la cuvetta
viene trasferita nella camera di lettura.
7. La quantità di coniugato legato alla fase solida, espressa in RLU, è direttamente proporzionale alla
concentrazione di IgG anti-VCA presente nel campione.
8. Le risposte ottenute sono interpolate sulla curva di taratura e trasformate in concentrazioni.
Campioni con valori di concentrazione più elevati del limite superiore dell’intervallo di misurabilità possono
essere diluiti e ritestati. Il nuovo valore ottenuto viene moltiplicato, per ottenere il risultato finale, per il fattore
di diluizione utilizzato.
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CONTROLLO QUALITA’
Per assicurare la validità del dosaggio, sieri di controllo a differenti livelli di concentrazione (almeno un siero
negativo ed un siero positivo) devono essere misurati ogni giorno in cui si esegue il dosaggio.
Se il proprio laboratorio richiede, per la verifica dei risultati del dosaggio, un uso più frequente o un numero
più elevato di controlli, seguire le procedure del controllo qualità ivi stabilite.
Se vengono utilizzati i sieri di controllo TGS TA, i valori medi attesi ed i limiti di accettabilità sono quelli
riportati nel DATA DISK presente anche nella confezione dei controlli.
Qualora venissero utilizzati sieri di controllo diversi, è necessario, prima del loro impiego, definire i valori
attesi con reagenti e sistema TGS TA.
Qualora il valore dei controlli non rientri nel range di accettabilità specificato, i relativi risultati del dosaggio
non sono validi ed i rispettivi campioni devono essere rianalizzati.
In questo caso è necessario eseguire prima della ripetizione del dosaggio una procedura di ricalibrazione.
CALCOLO ED INTERPRETAZIONE DEI RISULTATI
Calcolo dei risultati
La concentrazione degli anticorpi IgG anti-VCA presente nei campioni in esame è calcolata
automaticamente dal sistema. I valori possono essere visualizzati mediante lettura sul video o attraverso
stampa.
Le concentrazioni sono espresse in UA/mL.
Il calcolo della concentrazione di analita nel campione avviene attraverso lettura della risposta ottenuta per
ogni campione su una curva di calibrazione elaborata mediante un sistema di “fitting” logistico a quattro
parametri (4PL, Y ponderato), corretta periodicamente in funzione delle risposte ottenute nel dosaggio dei
calibratori.
Per informazioni dettagliate su come il sistema calcola i risultati, consultare il manuale operativo del sistema.
Interpretazione dei risultati
Il range di misurabilità del dosaggio TGS TA EBV VCA IgG è: 0.0 – 750 UA/mL.
I valori inferiori a 0.0 UA/mL sono valori estrapolati ,compare il messaggio “OMR-“e/o ORA e sono riportati
con valore “uguale a 0.0 UA/mL”.
I valori superiori a 750 UA/mL hanno il messaggio “OMR+” e/o ORA e possono essere ritestati dopo
opportuna diluizione.
I risultati dei campioni possono essere interpretati nel seguente modo:
(UA/mL)
Interpretazione
< 10
Il campione è da considerare Negativo per la presenza di IgG anti-VCA
≥ 10
Il campione è da considerare Positivo per la presenza di IgG anti-VCA
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I valori sopra riportati sono da considerare solo valori suggeriti. Ciascun laboratorio deve stabilire i propri
intervalli di riferimento.
LIMITI DEL DOSAGGIO
Per scopi diagnostici, i risultati ottenuti con il kit TGS TA EBV VCA IgG ed il sistema TGS TA Analyzer
devono essere utilizzati unitamente agli altri dati clinici e di laboratorio a disposizione del medico.
La contaminazione batterica dei campioni e l’inattivazione al calore possono influenzare il risultato del
dosaggio.
Gli anticorpi eterofili presenti nei campioni di siero umano possono reagire con i reagenti a base di
immunoglobuline, causando interferenze nei dosaggi immunologici in vitro. Questi campioni possono dar
luogo a valori anomali se analizzati con il kit TGS TA EBV VCA IgG.
VALORI ATTESI
Sono stati analizzati i campioni di 83 donatori selezionati casualmente per verificare la presenza di anticorpi
IgG anti-VCA.
Tutti i campioni analizzati sono risultati negativi, con un valore medio di 0.6 UA/mL ed una deviazione
standard di 1.23 UA/mL.
Con i risultati ottenuti è stato calcolato il “Limit of Blank” (LoB = il più alto valore che possiamo attenderci in
una serie di campioni che non contengono l’analita). Il “Limit of Blank”, determinato come 95° percentile della
popolazione negativa, è risultato pari a 3.0 UA/mL con il Lotto di reagenti n. 1.
SPECIFICITÀ E SENSIBILITÀ DIAGNOSTICA
Utilizzando i test TGS TA EBV VCA IgG, TGS TA EBV VCA IgM e TGS TA EBV EBNA-1 IgG è possibile
diagnosticare l’infezione da EBV e contemporaneamente definire lo stadio dell’infezione.
Nella seguente tabella vengono riportati i profili sierologici dei tre test VCA IgG, VCA IgM, EBNA-1 IgG che
più frequentemente possono essere rilevati durante la fase infettiva e/o post-infettiva ed il significato clinico
associato:
IgG anti-VCA
IgM anti-VCA
IgG anti-EBNA-1
Interpretazione
Soggetto suscettibile all’infezione
negativo
negativo
negativo
(Negativo per EBV) / Soggetto all’esordio
dell’infezione (Periodo finestra).
negativo
positivo
negativo
Sospetta infezione primaria acuta
positivo
positivo
negativo
Infezione primaria recente
positivo
positivo
positivo
Infezione primaria transiente/Riattivazione
positivo
negativo
positivo
Infezione pregressa
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Inoltre è possibile osservare nella routine di laboratorio i seguenti profili di non univoca interpretazione:
IgG anti-VCA
IgM anti-VCA
IgG anti-EBNA-1
positivo
negativo
negativo
negativo
negativo
positivo
Non associabile a stadiazione infezione
Possibile fase primaria in paziente non
producente IgM anti-VCA / fase pregressa
in paziente con “perdita” di IgG antiEBNA-1
Possibile reattività crociata per EBV / Utile
rilevazione del genoma virale
Utilizzando i test TGS TA EBV VCA IgG, TGS TA EBV VCA IgM e TGS TA EBV EBNA-1 IgG è stata
valutata la specificità e sensibilità diagnostica nella seguente popolazione di campioni selezionati, esaminati
con diversi metodi e classificati in base alla regola del consenso generale:
113 pazienti non immuni
66 pazienti con mononucleosi in atto ( infezione primaria )
107 pazienti con infezione pregressa
Seguendo l’interpretazione sopra riportata è stato possibile calcolare la specificità e sensibilità diagnostica.
Dei 113 campioni di pazienti non immuni per EBV, 108 hanno mostrato il profilo sierologico di negatività per
EBV con i test TGS TA. La specificità diagnostica risulta quindi essere del 95,6 % ( intervallo di confidenza
al 95% : 89,5-98,4 % ).
Dei 66 campioni di pazienti con infezione primaria, 60 hanno mostrato uno dei profili sierologici di infezione
primaria da EBV con i test TGS TA. La sensibilità diagnostica risulta quindi essere del 90,9 % ( intervallo di
confidenza al 95% : 80,6-96,3 % ).
Dei 107 campioni di paziente con infezione pregressa, 94 hanno mostrato il profilo sierologico di infezione
pregressa da EBV con i test TGS TA. La sensibilità diagnostica risulta quindi essere del 87,9% ( intervallo di
confidenza al 95 % : 79,8-93,1 % ).
Inoltre è stata valutata con il test TGS TA EBV EA IgG la reattività IgG anti-EA-D nei tre gruppi di pazienti
con questi risultati :
nei 113 pazienti non immuni 112 sono risultati negativi ed 1 positivo
nei 66 pazienti con infezione primaria 26 sono risultati negativi e 40 positivi
nei 107 pazienti con infezione pregressa 98 sono risultati negativi e 9 positivi
PRESTAZIONI
Avvertenza: i dati presentati non rappresentano le specifiche di funzionamento del kit, ma costituiscono
evidenza sperimentale di come il kit funzioni entro tali specifiche nel modo previsto dal produttore.
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Precisione e Riproducibilità
La precisione e riproducibilità del kit TGS TA EBV VCA IgG sono state valutate impiegando un protocollo
basato sulle linee guida del documento EP5-A2 del Clinical and Laboratory Standards (CLSI).
La precisione è stata calcolata analizzando i risultati di 20 replicati di sei sieri (uno negativo e cinque positivi
con diverse concentrazioni di anti-VCA IgG) eseguiti con due diversi lotti di reagenti nella stessa seduta
sperimentale.
La concentrazione del siero anti-VCA IgG negativo (EBV-N1) è risultata compresa nell’intervallo da 3.0 a 4.2
UA/mL e da 3.0 a 3.7 UA/mL rispettivamente con il Lotto di reagenti n. 1 e n. 2.
In Tabella si riportano i risultati ottenuti con i 5 sieri positivi.
Campione
VCG-P1
VCG-P2
VCG-P3
VCG-P4
VCG-P5
Reagenti
Lot. no.
Concentrazione
media (UA/mL)
SD
(UA/mL)
CV %
1
2
1
2
1
2
1
2
1
2
36,7
0,88
2,4
35,2
87,2
84,9
149,9
155,3
276,8
286,6
537,8
573,2
1,37
2,16
3,37
3,95
4,24
10,08
8,82
20,56
23,31
3,9
2,5
4,0
2,6
2,7
3,6
3,1
3,8
4,1
La riproducibilità è stata calcolata analizzando i risultati della determinazione di sei sieri (uno negativo e
cinque positivi con diverse concentrazioni di anti-VCA IgG) eseguita in singolo, in 14 sedute diverse, con un
lotto di reagenti.
La concentrazione del siero anti-VCA IgG negativo (EBV-N1) è risultata compresa nell’intervallo da 3.2 a 5.2
UA/mL.
In Tabella si riportano i risultati ottenuti con i 5 sieri positivi.
Campione
Concentrazione
media (UA/mL)
SD
(UA/mL)
CV %
VCG-P1
35,8
2,83
7,9
VCG-P2
78,6
7,11
9,0
VCG-P3
140,3
11,78
8,4
VCG-P4
248,7
20,38
8,2
VCG-P5
499,7
40,64
8,1
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Linearità delle Diluizioni
La linearità delle diluizioni del kit TGS TA EBV VCA è stata valutata impiegando un protocollo basato sulle
linee guida del documento EP6-A del Clinical and Laboratory Standards (CLSI).
Sono state dosate diluizioni scalari di 3 sieri a concentrazione elevata di IgG anti-VCA, eseguite con il
Liquido di Sistema.
I risultati di questo studio sono riassunti nella seguente tabella.
Campione
1
2
3
Fattore di
diluizione
Concentrazione
misurata
(UA/mL)
Concentrazione
attesa
(UA/mL)
Recovery
%
1
2
4
8
16
1
2
4
8
16
1
2
4
8
16
32
611,3
296,3
141,1
58,8
25,6
305,6
133,9
66,8
32,3
15,0
523,2
322,9
151,5
66,7
29,6
13,7
305,7
152,8
76,4
38,2
152,8
76,4
38,2
19,1
261,6
130,8
65,4
32,7
16,4
(100)
96,9
92,3
77,0
67,0
(100)
87,6
87,4
84,6
78,5
(100)
123,4
115,8
102,0
90,5
83,5
In ogni caso si rende necessario sottolineare che non tutti i sieri, quando misurati a diluizioni diverse,
possono fornire risultati lineari all’interno dell’intervallo di misurabilità essendo il risultato dipendente non solo
dalla concentrazione ma anche dall’affinità degli anticorpi presenti nel campione.
Sensibilità Analitica
La sensibilità analitica del kit TGS TA EBV VCA IgM, è stata valutata utilizzando due protocolli basati sulle
linee guida del documento EP17-A del Clinical and Laboratory Standards (CLSI).
In un caso espressa come limite di rilevazione (Limit of Detection – LoD: ossia la più piccola quantità di
analita che il metodo è in grado di misurare) si è applicata la formula per il calcolo LoD = LoB + C β SDs (dove
LoB rappresenta il valore del “Limit of Blank”, SDs la deviazione standard stimata della distribuzione del
campione a bassa concentrazione e Cβ è derivato dal 95 ° percentile della distribuzione standard
gaussiana).
Sono stati utilizzati 5 campioni a bassa concentrazione di analita, determinati in singolo con un Lotto di
reagenti in 14 esperimenti diversi.
Il Limite di rilevazione del kit TGS TA EBV VCA è risultato pari a 5.6 UA/mL.
Nell’altro protocollo è previsto il calcolo della Minima Concentrazione misurabile o MDC (Minimum
Detectable Concentration): sono stati utilizzati 20 replicati della soluzione dello Standard 0 UA/mL della
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curva Master. Si sono elaborate la media e la deviazione standard (DS) su un lotto di kit. Il valore di RLU
relativo alla media + 2.6 DS è stato interpolato sulla curva e se ne è ricavata la relativa concentrazione.
La sensibilità analitica espressa come Minima Concentrazione misurabile è 0,2 UA/mL.
I valori del limite di rilevazione, unitamente a considerazioni di carattere clinico ed ai risultati di comparazione
con metodi di riferimento hanno contribuito alla definizione del valore cut-off.
Specificità Analitica: Interferenze
Uno studio basato sulle linee guida del documento EP7-A2 del CLSI ha dimostrato che le prestazioni del
dosaggio non sono influenzate dalla presenza nel campione delle sostanze potenzialmente interferenti
elencate nella seguente tabella, sino alla concentrazione sperimentata.
Sostanze Potenzialmente
Interferenti
Bilirubina libera
Bilirubina coniugata
Emoglobina
Trigliceridi
Massima concentrazione sperimentata
20
20
1000
3000
mg/dL
mg/dL
mg/dL
mg/dL
L’uso di campioni lipemici, emolizzati o torbidi viene comunque sconsigliato.
Specificità Analitica: Reazioni crociate
Per valutare le potenziali reazioni crociate dell’antigene utilizzato per sensibilizzare le microparticelle, è stato
condotto uno studio con 35 campioni, tutti con anticorpi IgG positivi per antigeni erpetici ed antigeni del
complesso TORCH ed IgG negativi per VCA.
I campioni utilizzati erano così suddivisi: 13 VZV, 7 CMV, 7 Rubella, 5 HSV-1, 3 HSV-2.
Lo studio non ha mostrato alcuna significativa reazione crociata dell’antigene in fase solida con gli altri
anticorpi.
Effetto saturazione ad alte dosi
Alcuni metodi immunologici impiegati per la determinazione di campioni contenenti l’analita a concentrazioni
estremamente elevate possono fornire livelli apparenti di analita sottostimati (Effetto hook).
Il metodo utilizzato nel kit TGS TA EBV VCA, essendo un metodo a due incubazioni, non risente di tale
effetto.
Un campione con concentrazione estremamente elevata (al di sopra dell’intervallo di misura) di IgG anti-VCA
ha confermato l’assenza di effetto “hook” sino alla concentrazione di 5500 UA/mL.
Sensibilità e Specificità Relative
La presenza di anticorpi anti-VCA IgG è stata determinata utilizzando il kit TGS TA EBV VCA ed un metodo
di dosaggio immunochemiluminescente disponibile in commercio in 222 campioni.
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4 campioni hanno dato luogo a risultati discordanti tra il dosaggio TGS TA ed il dosaggio disponibile in
commercio.
La concordanza relativa è risultata pertanto essere pari al 98,2 % (Intervallo di Confidenza al 95%: 95,1 –
99,4%) (218/222).
La sensibilità relativa è risultata pari al 97,3 % (Intervallo di Confidenza al 95%: 91,6 – 99,3%) (107/110).
La specificità relativa è risultata pari al 99,1 % (Intervallo di Confidenza al 95%: 94,4 – 100,0%) (111/112).
BIBLIOGRAFIA
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Toussirot E, Roudier J ( October 2008 ). “ Epstein-Barr virus in autoimmune diseases “. Best
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after 35 years. J. Clin Microbiol. 2004; 42:3381-3387
TECHNOGENETICS S.r.l.
Via Vanvitelli, 4
20129 – Milano – Italia
Sito operativo: Via della Filanda, 26
26900 – Lodi – Italia
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