scarica

Transcript

scarica

Progetto regionale di Farmacovigilanza
Profilassi Antibiotica in Chirurgia (PAC)
Linee Guida per la
Profilassi Antibiotica
in Chirurgia
Rev. 00: Novembre 2008
1
GRUPPO DI LAVORO:
A.O. Ospedale di Lecco (Centro Coordinatore):
Dott. Giuseppe Genduso: Direttore Sanitario Aziendale (Responsabile
Scientifico del progetto)
Dott.ssa Maria Rosaria Pecoraro: Borsista Farmacista Sc Qualità e Controllo
Strategico
Dott.ssa Maria Fiorenza Folsi: Dirigente Medico di Presidio
Dott. Paolo Corti: Direttore S.C. Farmacia
Dott.ssa Elena Spreafico: Farmacista S.C. Farmacia
Dott. Vaiani Roberto: ex Direttore Sc Microbiologia e Virologia
Dott. Marco Bosio: ex Direttore Sc Qualità e Controllo Strategico
A.O. Ospedale Niguarda Ca' Granda, Milano:
Dott.ssa Luciana Bevilacqua: Direttore S.C.Servizio Qualità M.C.Q.
Dott.ssa Elisa De Pasqual: Borsista Farmacista S.C. Farmacia
Dott. Carloandrea Orcese: Dirigente Medico S.C. Malattie Infettive
Dott.ssa Gabriela Paola Venturelli: Direttore S.C. Farmacia
Dott.Giuseppe Vighi: Responsabile di Struttura Semplice di Farmacovigilanza
e Farmacologia Clinica (SC Servizio qualità, MCQ)
A.O. Ospedali Riuniti di Bergamo:
Dott. Antonio Piccichè: Dirigente Medico Direzione Medica di Presidio
Dott. Enrico Bombana: Dirigente Medico USC Malattie Infettive
Dott. Giancarlo Taddei: Direttore Dipartimento Farmacologia Clinica
Dott. Giacomo Del Vecchio: Dirigente Medico Dipartimento Prevenzione e
Sorveglianza Infezioni
Dott. Antonio Goglio: Microbiologo Direttore Dipartimento Prevenzione e
Sorveglianza Infezioni.
Dott. Francesco Locati: ex Responsabile Unità di Igiene
IRCCS S. Raffaele, Milano:
Dott. Paolo Scarpellini: Dirigente Medico Infettivologo
Dott.ssa Chiara Tassan Din: Borsista Medico Infettivologo
Dott. Roberto Novati: Dirigente medico Direzione Sanitaria
Dott.ssa Maria Mazzotti: Dirigente Farmacista Servizio di Farmacia
Dott.ssa Leila Tosi: Borsista Farmacista Servizio di Farmacia
A.O. Fatebenefratelli,Milano:
Dott. Roberto Cosentina: Direttore Medico di Presidio
Dott.ssa Gaetana Muserra: Direttore Servizio di Farmacia
Dott.ssa Elena Galfrascoli: Borsista Farmacista Servizio di Farmacia
2
Dott. Carlo Pagani: Dirigente Medico Anestesista
A.O. S.Anna, Como:
Dott.ssa Laura Chiappa: Direttore Sanitario Aziendale
Dott. Domenico Santoro: Direttore Malattie Infettive
Dott.ssa Anna Cappelletti: Dirigente Medico Malattie Infettive
Marina Busnelli: IP epidemiologa presidio Cantù
Loredana Bovini: IP epidemiologa presidio Menaggio
A.O. Ospedale civile di Legnano
Prof. Silvano Gabriele Cella: Farmacologo: Dipartimento di Farmacologia
Medica, Università degli Studi di Milano e Ospedale Civile di Legnano
Prof. Mauro Bianchi: Farmacologo Dipartimento di Farmacologia Medica,
Università degli Studi di Milano e Ospedale Civile di Legnano
Dott. Luca Paraboni: Borsista Medico Farmacologo, Ospedale Civile di
Legnano
3
“Le Linee Guida sono raccomandazioni elaborate a partire da una
interpretazione multidisciplinare e condivisa dalle informazioni disponibili,
per assistere medici e pazienti nelle decisioni che riguardano le modalità
di assistenza appropriate in specifiche circostanze cliniche”
(PIANO NAZIONALE LINEE GUIDA - www.sanità.it)
4
INDICE:
1
Premessa
pag. 6
2
Introduzione
pag. 9
3
Fattori
di
rischio nelle
infezioni del
sito pag. 14
chirurgico
4
Criteri
generali
della
profilassi
antibiotica pag. 17
perioperatoria
5
Modalità operative
pag. 18
6
Scelta del farmaco
pag. 22
7
Evidenze
microbiologiche:
patogeni
più pag. 24
frequentamente responsabili della contaminazione
del campo operatorio e delle ISC
8
Caratteristiche
principali
degli
antibiotici pag. 29
utilizzati in profilassi
9
Implementazione della linea guida
pag. 44
10
Aspetti medico legali nella profilassi antibiotica pag. 45
in chirurgia
11
Indicazioni alla profilassi antibiotica
pag. 47
12
Bibliografia
pag. 64
5
1. PREMESSA
La profilassi antibiotica in chirurgia, quando correttamente applicata, è una
pratica
di
dimostrata
efficacia,
nella
riduzione
delle
infezioni
postoperatorie, dei tempi di degenza e dei costi di ospedalizzazione [117].
Data la rilevanza dell’argomento e l’evidenza di una grande variabilità di
comportamenti, sono stati condotti numerosi studi e prodotti documenti al
fine di fornire agli operatori raccomandazioni basate sull’evidenza
scientifica.
Nel 2003 l’Istituto Superiore della Sanità, nell’ambito del Piano Nazionale
Linee
Guida,
ha
predisposto
una
linea
guida
nazionale
“Antibioticoprofilassi perioperatoria nell’adulto”, adottando come schema di
riferimento il documento messo a punto nel 2000 (ed aggiornato nel luglio
2008) dallo Scottish Intercollegiate Guidelines Network. Di recente
(settembre 2008) anche il documento nazionale è stato di conseguenza
aggiornato all’interno del Sistema Nazionale Linee Guida.
L’antibioticoprofilassi preoperatoria è stata oggetto di grande attenzione
ed occasione di esperienza sia a livello di singole strutture ospedaliere, sia
a livello regionale (ricordiamo il lavoro prodotto dalla Regione FriuliVenezia-Giulia nel 2000 [18] e dalla Regione Emilia Romagna nel 2002
[19]).
La Regione Lombardia, al fine di validare e rendere patrimonio comune
tali esperienze, in riferimento alla DGR no VII/8501 del 22 marzo 2002
“Determinazioni in materia di utilizzo dei fondi stanziati dal Ministero della
Sanità per le iniziative di farmacovigilanza e di informazioni sull’impiego e
sugli effetti indesiderati dei medicinali, ai sensi dell’art. 36 comma 14 della
legge del 23.12.1997 n. 449”, ha approvato, nel marzo del 2006, il
Progetto sulla Profilassi Antibiotica in Chirurgia (P.A.C.) presentato
dall’Azienda Ospedaliera (A.O.) di Lecco.
6
Tale progetto regionale ha consentito di redigere questo documento
aggiornato sulla Profilassi Antibiotica in Chirurgia da utilizzare come
mezzo di consultazione e futuro riferimento per l’implementazione locale e
la valutazione della riduzione delle infezioni postoperatorie: sarà possibile
così intervenire con metodo scientifico in una delle aree più critiche sotto il
profilo dell’appropriatezza terapeutica e del contenimento dei costi di
ospedalizzazione.
Il progetto regionale utilizza come metodologia di lavoro l’approccio
multidisciplinare,
coinvolgendo
nello
studio
di
farmacovigilanza
e
farmacoutilizzazione diverse componenti professionali (chirurghi, internisti,
medici di Direzione Sanitaria, farmacologi, farmacisti, infettivologi,
anestesisti, microbiologi) provenienti da diverse realtà sanitarie.
Le strutture che hanno aderito allo sviluppo di tale progetto sono:
A.O. Ospedale di Lecco, Centro Coordinatore del Progetto
A.O. Ospedale Niguarda Ca' Granda, Milano
A.O. Ospedali Riuniti di Bergamo
IRCCS S. Raffaele, Milano
A.O. Fatebenefratelli, Milano
A.O. S. Anna, Como
A.O. Ospedale Civile di Legnano
Il Gruppo di lavoro individuato ha effettuato dapprima una rilevazione
dell'attività prescrittiva in ciascuna Azienda Ospedaliera ed ha operato un
successivo raffronto con le più auterovoli linee guida pubblicate in
letteratura (American Society of Health-System Pharmacist, Centers for
Disease Control and Prevention, Scottish Intercollegiate Guidelines
Network, SNLG, Medical Letter, National Surgical Infection Prevention
Project, Institute for Clinical Systems Improvement) [20-26]. Sono state
altresì analizzate esperienze precedenti inerenti rilevazioni sul grado di
adesione ai protocolli di antibioticoprofilassi preoperatoria ed alle sue
modalità di esecuzione, effettuate anche da altri ospedali non lombardi.
7
L’obiettivo
principale
del
progetto
è
infatti
il
miglioramento
dell’appropriatezza della profilassi antibiotica all’interno delle A.O.
partecipanti al progetto, attraverso la definizione, la condivisione e
l’adesione alle nuove Linee Guida comuni.
Queste
Linee
Guida
sono
intese
quindi
come
strumento
di
razionalizzazione del comportamento clinico-organizzativo e vogliono
assicurare il massimo grado di appropriatezza al fine di prevenire
l’insorgenza delle Infezioni del Sito Chirurgico (ISC) [21, 27] e di garantire
la qualità della terapia stessa.
La loro applicazione prospetta di raggiungere anche i seguenti obiettivi:
applicare le Linee Guide anche dopo il termine del progetto ed
estenderle ad altre Aziende Ospedaliere regionali;
sensibilizzare e formare gli operatori sanitari coinvolti nella corretta
prescrizione e somministrazione della profilassi antibiotica in
chirurgia, attraverso la diffusione e l'implementazione delle linee
guida elaborate e condivise da tutte le A.O. partecipanti;
rilevare al tempo zero (T0) la situazione già esistente in ciascuna
azienda sulla profilassi antibiotica in chirurgia;
facilitare il monitoraggio da parte delle farmacie aziendali
dell’utilizzo degli antibiotici in ambito chirurgico: valutazione dell’uso
sulla base delle evidenze scientifiche e secondo quanto dimostrato
dalle prove di efficacia (rilevare indicazioni riguardo alla scelta del
farmaco, alla dose da somministrare ed all’intervallo tra profilassi e
intervento);
effettuare un audit, basato sull’analisi della documentazione clinica,
al
fine
di
verificare
l’adozione
e
la
corretta
esecuzione
dell’antibiotico profilassi;
migliorare il rapporto costo/beneficio nella profilassi antibiotica
È stato inoltre condotto un’aggiornamento bibliografico, mediante una
revisione sistematica della letteratura presente sul tema del corretto
utilizzo degli antibiotici nella profilassi chirurgica.
8
2. INTRODUZIONE
Per Profilassi Antibiotica Preoperatoria in Chirurgia si intende “…il
ricorso alla somministrazione di un antibiotico secondo modalità ben
definite, in assenza di infezioni in atto, collocato temporalmente prima
dell’inizio dell’intervento. L’uso dell’antibiotico non ha finalità terapeutiche
ma solo preventive: mira a ridurre quanto più possibile la carica microbica
nella zona di intervento, affinché non siano superate le difese dell’ospite”.
Nell’ambito delle infezioni nosocomiali, le ISC rappresentano una causa
frequente di morbilità dei pazienti ospedalizzati e la loro insorgenza
comporta inevitabilmente pesanti ripercussioni di ordine socioeconomico e
sanitario, sia per la struttura erogatrice della prestazione sia per il paziente
stesso (aumento della durata della degenza, incremento dei costi per
accertamenti aggiuntivi e terapie farmacologiche, sofferenza e disabilità,
perdita di giornate lavorative, ecc.) [28-39].
L’antibioticoprofilassi preoperatoria pur rivestendo un ruolo importante, è
solo uno tra gli interventi da eseguire per prevenire le ISC e si affianca ad
altri fattori tecnici organizzativi che devono essere attuati secondo precisi
standard; dovrebbe pertanto essere vista come una delle componenti di
una politica efficace per il controllo delle infezioni acquisite in ospedale. Il
mancato rispetto delle misure di prevenzione può annullare l’efficacia della
profilassi antibiotica.
La politica di ciascuna azienda ospedaliera, nei confronti del contenimento
delle infezioni acquisite in ospedale, ha stimolato il lavoro di gruppi
multidisciplinari di professionisti, che hanno condiviso e codificato in
precise procedure protocolli comportamentali e misure di prevenzione in
uso presso le aziende ospedaliere partecipanti.
In tabella 1 sono riportate le attuali misure di prevenzione che dovrebbero
essere adottate in area chirurgica al fine di minimizzare le infezioni del sito
chirurgico [21, 23].
9
Tabella 1 - Misure* di prevenzione delle infezioni della ferita chirurgica secondo la linea guida dei
Centers for Disease Control and Prevention [21, 23].
MISURE PREOPERATORIE
1. Preparazione del paziente
• identificare e trattare tutte le infezioni prima degli interventi elettivi e posticipare
l’intervento fino alla risoluzione dell’infezione
• evitare la tricotomia a meno che i peli nell’area di incisione non interferiscano con
l’intervento
• se la tricotomia è necessaria eseguirla immediatamente prima dell’intervento e
preferibilmente utilizzando rasoi elettrici
• controllare la glicemia in tutti i pazienti diabetici ed evitare l’iperglicemia nel periodo
perioperatorio
• incoraggiare la cessazione del fumo o almeno l’astinenza nei 30 giorni precedenti
l’intervento
• non negare gli emoderivati ai pazienti chirurgici con lo scopo di prevenire le ISC
• far eseguire al paziente una doccia o un bagno con antisettico almeno la notte prima
dell’intervento
•
lavare
e
pulire
accuratamente
l’area
dell’incisione
per
rimuovere
le
macrocontaminazioni prima della disinfezione del campo operatorio
• utilizzare un appropriata preparazione antisettica per la cute
2. Preparazione dell’équipe chirurgica
• tenere le unghie corte ed evitare l’uso di unghie artificiali
• effettuare il lavaggio chirurgico con antisettico per 2-5 minuti e lavare mani e
avambracci fino ai gomiti
• dopo essersi lavati tenere braccia e mani in alto e lontane dal corpo in modo da far
scolare l’acqua dalle dita verso i gomiti, asciugare con un telo sterile e indossare guanti e
camice sterili.
3. Gestione del personale sanitario colonizzato o infetto
• istruire e incoraggiare il personale della sala operatoria che presenti segni/sintomi di
malattie trasmissibili a segnalarlo prontamente
• mettere a punto protocolli specifici per l’allontanamento o la riammissione dal lavoro in
caso di infezioni trasmissibili del personale di sala operatoria
• a scopo precauzionale, allontanare dal lavoro il personale con lesioni cutanee
essudative e ottenere colture appropriate della lesione
• non escludere dal lavoro personale colonizzato con Staphylococcus aureus o
Streptococco di gruppo A, a meno che non sia stata dimostrata una relazione epidemiologica
con casi di infezione nei pazienti
10
MISURE INTRAOPERATORIE
1. Sistemi di ventilazione
• nella sala operatoria mantenere aria a pressione positiva rispetto ai locali adiacenti,
• garantire almeno 15 ricambi l’ora di cui 3 di aria fresca
• filtrare tutta l’aria, ricircolante e fresca, con filtri appropriati
• far entrare l’aria dal soffitto e farla uscire dal pavimento
• non usare raggi UV in sala operatoria per prevenire le ISC
• tenere le porte della sala operatoria chiuse
2 Pulizia e disinfezione dell’ambiente
• in caso di contaminazione visibile del pavimento, di superfici o attrezzature con sangue o
altri liquidi biologici pulire prima del successivo intervento utilizzando un disinfettante
approvato dall’apposita commissione locale
• non effettuare interventi speciali di pulizia o chiusura della sala dopo interventi contaminati
o sporchi
• non usare tappetini adesivi all’ingresso dell’area operatoria
3. Campionamento microbiologico ambientale
• non effettuare campionamento di routine, ma ottenere campioni ambientali dell’aria e
delle superfici della sala operatoria solo nel contesto di specifiche indagini epidemiologiche
4. Sterilizzazione degli strumenti chirurgici
• sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici secondo protocolli approvati
• ricorrere alla sterilizzazione «flash» solo per gli strumenti da riutilizzare immediatamente
5. Indumenti e teli chirurgici
• all’ingresso della sala operatoria indossare una mascherina che copra adeguatamente
bocca e naso, una cuffia o copricapo per coprire capelli e barba
• non indossare soprascarpe allo scopo di prevenire le ISC
• indossare i guanti sterili e farlo dopo aver indossato un camice sterile
• usare camici e teli che mantengano efficacia di barriera anche quando bagnati
• cambiare l’abbigliamento chirurgico se visibilmente sporco o contaminato con sangue o
altro materiale
6. Asepsi e tecniche chirurgiche
• rispettare le norme di asepsi quando si posizionano un catetere vascolare, cateteri da
anestesia spinale o epidurale o quando si somministrano farmaci per via endovenosa
• manipolare i tessuti con cura, eseguire una buona emostasi, rimuovere i tessuti
devitalizzati e i corpi estranei dal sito chirurgico
11
• posticipare la chiusura della ferita o lasciare l’incisione aperta, per portarla a
guarigione «per seconda intenzione» quando il sito chirurgico è pesantemente
contaminato
• laddove sia necessario un drenaggio, utilizzare un drenaggio chiuso, posizionarlo
attraverso una incisione separata e distante dalla incisione chirurgica e rimuovere il
drenaggio appena possibile.
7. Medicazione della ferita
• proteggere le ferite chirurgiche per 24-48 ore con medicazioni sterili
• lavarsi le mani prima e dopo aver effettuato la medicazione o aver toccato il sito chirurgico
* Sono state riportate solo le misure che nello schema di grading dei CDC sono classificate come categorie IA
e IB (IA: misura fortemente raccomandata perché supportata da studi sperimentali clinici o epidemiologici ben
disegnati; IB: misura fortemente raccomandata perché supportata da alcuni studi sperimentali clinici o
epidemiologici e sottesa a un forte razionale teorico.
L’antibioticoprofilassi preoperatoria si situa all’interno di tali misure e
può, in alcuni casi, ridurre l’incidenza di tali infezioni, ma è indubbio che
questo beneficio deve essere attentamente soppesato nei confronti del
rischio di:
Reazioni tossiche e/o allergiche: I pazienti con una storia di
anafilassi, orticaria o esantema insorti immediatamente dopo una
terapia con penicillina sono a maggior rischio di presentare un
fenomeno di ipersensibilità immediata e non devono essere
sottoposti a profilassi con antibiotici beta-lattamici: in questo caso
occorre seguire le indicazioni specifiche per una profilassi
alternativa. La scelta definitiva deve sempre basarsi sull’anamnesi
per escludere una potenziale allergia.
Emergenza di patogeni resistenti: l’utilizzo indiscriminato degli
antibiotici favorisce l’insorgenza di resistenze nella flora microbica
di ciascun paziente e, di conseguenza, in quella residente
ospedaliera [40-44]; è infatti in progressivo aumento la circolazione
di agenti microbici multiresistenti agli antibiotici, sia tra i batteri
Gram-positivi che tra quelli Gram-negativi [45-47].
12
Dismicrobismi: possono determinare diarrea, in particolar modo
da Clostridium. difficile e/o superinfezioni della ferita [48-54]
Da queste considerazioni nasce l’esigenza di un orientamento che possa
fungere da guida per il chirurgo e l’anestesista, senza tralasciare le
considerazioni di ordine economico (farmacoutilizzazione) e farmacologico
(in particolare le interazioni tra farmaci).
13
3. FATTORI DI RISCHIO NELLE INFEZIONI DEL SITO
CHIRURGICO
I fattori che influenzano il rischio infettivo nelle strutture ospedaliere sono
principalmente legati a fattori intrinseci, che coinvolgono le caratteristiche
e lo stato di salute del paziente, ma anche a fattori estrinseci che
riguardano l’intervento eseguito e la sua tempistica [21, 22, 55-73]. Nello
specifico, i fattori di rischio intrinseci riguardanti le caratteristiche del
paziente sono: l’età avanzata, l’eventuale stato di malnutrizione, l’obesità,
il
diabete,
il
fumo,
l’immunodepressione,
la
lo
coesistenza
stato
cutaneo
di
infezioni
del
sito
in
altri
chirurgico
siti,
prima
dell’intervento, la presenza di comorbilità e diverse affezioni metaboliche.
La presenza di tali fattori e/o di malattie concomitanti all’atto dell’intervento
chirurgico possono essere riassunti nella valutazione dello stato di salute
del paziente con un punteggio di rischio preoperatorio, come definito
dall’“American Society of Anesthesiologists”, il cosiddetto “ASA score”
(tabella 2) [74, 75].
Tabella 2 - Codice stato fisico del paziente prima dell’intervento chirurgico
Punteggio Condizione fisica
ASA
1
Paziente in buona salute
2
Paziente con patologia sistemica non grave
3
Paziente con patologia sistemica grave, ma non disabilitante
4
Paziente con patologia sistemica disabilitante a rischio di vita
5
Paziente moribondo che si ritiene non sopravviverà più di 24
ore, con o senza l’intervento chirurgico
14
I fattori estrinseci che influenzano il rischio di ISC sono molteplici e di
importanza differente; comprendono l’antisepsi cutanea, il lavaggio delle
mani, la ventilazione della sala operatoria, la profilassi antibiotica, la
sterilizzazione degli strumenti, la cura della ferita dopo l’intervento, il tipo
di procedure eseguite (preoperatorie e postoperatorie), la durata della
degenza preoperatoria (la cute del paziente viene progressivamente
colonizzata da ceppi batterici di origine nosocomiale) e l’eventuale
impianto di materiale protesico. Tra i diversi fattori estrinseci i più
importanti nella valutazione del rischio di ISC vanno considerati: la durata
dell’operazione (quando la durata dell’intervento è superiore a quella
definita dal 75º percentile per la procedura in oggetto [47], il rischio di ISC
aumenta) ed il livello di contaminazione batterica della ferita. In base al
grado di contaminazione batterica il National Research Council ha
proposto una classificazione degli interventi chirurgici (tabella 3) [59].
Tabella 3 - Classificazione degli interventi in base al grado di
contaminazione batterica
Classe I:
Interventi
puliti
Interventi nel corso dei quali non si riscontra alcun
processo flogistico, in cui la continuità della mucosa
respiratoria, intestinale o genito-urinaria non viene
violata e in cui non si verifica alcuna violazione delle
regole di asepsi in sala operatoria
Classe II
Interventi
pulitocontaminati
Interventi nei quali la continuità della mucosa
respiratoria, intestinale o genito-urinaria viene violata,
ma senza perdite di materiale verso l’esterno
Classe III
Interventi
contaminati
Interventi in cui sono presenti segni di flogosi acuta
(senza pus), o dove vi sia una visibile contaminazione
della ferita, come per esempio perdite copiose di
materiale da un viscere cavo durante l’intervento o
ferite composte/aperte (verificatesi meno di 4 ore
prima dell’intervento)
Classe IV
Interventi
sporchi
Interventi effettuati in presenza di pus o su un viscere
cavo precedentemente perforato o su ferite
composte/aperte (verificatesi oltre 4 ore prima
dell’intervento)
15
La durata dell’intervento e le malattie concomitanti (secondo il codice
ASA) hanno un impatto sul rischio di infezione della ferita pari alla classe
di intervento. Sulla base di quanto affermato, per la definizione del rischio
di ISC, oltre alla classe di intervento devono essere considerati due
ulteriori fattori principali:
la presenza di malattie concomitanti (con punteggio ASA > 2 il
rischio di ISC aumenta [59])
la durata dell’intervento (quando superiore a quella definita dal 75°
percentile il rischio di ISC aumenta)
Tali fattori permettono di definire il cosiddetto indice di rischio, che risulta:
pari a 0 quando nessuno dei due fattori di rischio è presente
pari a 1 quando uno dei due fattori di rischio è presente
pari a 2 quando entrambi i fattori di rischio sono presenti
La tabella 4, ripresa delle Linee Guida nazionali e ricavata da un’ampia
casistica validata [57, 59], riporta la probabilità di ISC sulla base di
valutazioni che considerano la classe di intervento e l’indice di rischio. Dai
dati riportati si evince che il rischio di ISC di un intervento pulito con
entrambi i fattori di rischio aggiunti (indice di rischio pari a 2) è superiore al
rischio di un intervento contaminato senza alcun fattore di rischio aggiunto
(5,4% vs 3,4%).
Tabella 4 - Probabilità di infezione della ferita per classe di intervento e
indice di rischio [22]
Indice di rischio
Classe di intervento
0
1
2
Pulito
1,0%
2,3%
5,4%
Pulito-contaminato
2,1%
4,0%
9,5%
Contaminato
3,4%
6,8%
13,2%
16
4. CRITERI GENERALI DELLA PROFILASSI ANTIBIOTICA
PERIOPERATORIA
Il primo criterio da considerare per effettuare una corretta profilassi
antibiotica è che i benefici risultino superiori ai rischi, essendo questi ultimi
correlati soprattutto alle conseguenze di un’eventuale infezione del sito
chirurgico.
Per gli interventi in elezione la profilassi antibiotica è raccomandata:
nella chirurgia pulita-contaminata dove vi sia un rischio notevole di
contaminazione batterica
nella chirurgia pulita in cui le conseguenze di un’eventuale
infezione postoperatoria siano particolarmente gravi
In caso di chirurgia contaminata, la scelta di eseguire una profilassi
piuttosto che una terapia dovrà essere valutata separatamente per ogni
tipologia di intervento/situazione sulla base delle condizioni cliniche del
paziente.
Un esempio che dimostra come la profilassi riduca sia la frequenza di ISC
che la mortalità post-operatoria è dato dalla chirurgia colon-rettale; altro
esempio sono gli interventi di artroprotesi d’anca e di ginocchio, nei quali
la profilassi è in grado di ridurre le complicanze post-operatorie.
Tutti gli interventi delle diverse aree chirurgiche elencate nelle tabelle
finali, rappresentano quelli in cui l’efficacia della profilassi è dimostrata.
17
5. MODALITÀ OPERATIVE
a) Prescrizione
La prescrizione dell’antibioticoprofilassi preoperatoria compete al medico
specialista chirurgo e/o anestesista che provvederà a registrare in cartella
clinica il farmaco, il dosaggio e la modalità di somministrazione; ulteriori
somministrazioni
intraoperatorie,
se
necessarie,
dovranno
essere
prescritte dall’anestesista e segnate nella cartella anestesiologica.
b) Tempo della somministrazione
La profilassi antibiotica, salvo i casi di seguito indicati, deve essere
conclusa non più di 30 minuti prima dell’incisione cutanea [7, 8, 20-22,
24, 25, 76-87]. Nella prassi clinica è comunque opportuno che venga
terminata prima delle manovre anestesiologiche al fine di evitare possibili
interazioni con altri farmaci prescritti (principalmente anestetici).
È opportuno che il momento della somministrazione sia modificato:
-
in occasione del taglio cesareo la profilassi può essere ritardata fino al
momento del clampaggio del cordone ombelicale, per impedire che il
farmaco raggiunga il neonato. I dati esistenti attualmente in letteratura
non permettono peraltro di chiarire in modo definitivo rischi e benefici
di tale pratica [88].
-
quando si applica un tourniquet a pressione, come in chirurgia
ortopedica, la necessaria concentrazione tessutale deve essere
raggiunta prima della sua applicazione
c) Dosaggio
L’antibiotico deve essere somministrato a dosaggio pieno per permettere
una concentrazione adeguata del farmaco nei tessuti.
d) Via di somministrazione
La somministrazione per via endovenosa dell’antibiotico risulta essere il
metodo più affidabile ai fini del raggiungimento e mantenimento di una
concentrazione efficace del farmaco sia a livello ematico sia a livello dei
tessuti sede di intervento (salvo nei casi in cui è diversamente indicato)
18
[20-22]. Ricordiamo inoltre che alcuni parametri farmacocinetici, quali la
biodisponibilità, la velocità di assorbimento del farmaco e la sua clearance
possono variare da individuo a individuo, in particolare in seguito ad una
somministrazione orale o intramuscolare.
L’uso di antibiotici per via locale (lavaggi) non è giustificato dai dati di
letteratura, con l’unica eccezione della profilassi in chirurgia oculistica.
e) Durata
La profilassi antibiotica deve essere limitata al periodo peri-operatorio.
Non esistono prove a supporto di un prolungamento della profilassi: nella
maggior parte dei casi è sufficiente la somministrazione di un’unica dose
preoperatoria di antibiotico [4, 7, 84, 89-113] ed eventualmente di
un’ulteriore somministrazione intraoperatoria se la durata dell’intervento
supera il doppio dell’emivita del farmaco (si veda quanto riportato nel
paragrafo successivo). Il razionale di quanto sopra riportato è da attribuirsi
all’evidenza che il 95% delle infezioni della ferita chirurgica avvengono
durante l’atto operatorio; pertanto, la scelta di continuare la profilassi oltre
le prime 24 ore del periodo postoperatorio non è, in genere, giustificata.
f) Ripetizione della dose durante l'intervento
La somministrazione di una dose aggiuntiva intra-operatoria di antibiotico
(da eseguire successivamente alla reintegrazione di liquidi), è indicata
nell’adulto se nel corso dell’intervento si verifica una perdita di sangue
superiore ai 1.500 millilitri o se è stata eseguita una emodiluizione oltre i
15 millilitri per chilogrammo. Inoltre, la maggior parte delle linee guida
suggeriscono, in caso di interventi di durata superiore alle 3 ore, di
somministrare una seconda dose intraoperatoria se l’operazione è ancora
in corso dopo un tempo dall’inizio dell’intervento pari al doppio dell’emivita
del farmaco impiegato (si veda la Tabella 9) [3, 99, 114-122].
g) Luogo di somministrazione
È opportuno che la somministrazione dell’antibiotico, praticata per via
endovenosa lenta, sia effettuata direttamente dagli operatori sanitari di
sala operatoria prima dell’induzione dell’anestesia e comunque non più di
19
30 minuti prima dell’incisione cutanea, salvo casi in cui tale via richieda
una tempistica di somministrazione superiore ai 30 minuti (ad esempio
vancomicina). Ad ogni modo, ciascuna Azienda Ospedaliera dovrebbe
contestualizzare il luogo dove verrà eseguita la somministrazione in base
all’organizzazione strutturale interna ed alla collocazione delle sale
operatorie, al fine di rispettare la corretta tempistica di somministrazione.
Qualora la durata dell’intervento determinasse la necessità di ulteriori
somministrazioni, la prescrizione verrà effettuata dal medico anestesista e
verrà annotata sulla cartella anestesiologica.
h) Fornitura dei farmaci
Gli antibiotici indicati per la profilassi preoperatoria dovrebbero essere
forniti dalla Farmacia direttamente a chi effettua la profilassi (di norma al
Blocco Operatorio e non ai reparti di degenza), al fine di verificare il tipo di
antibiotico richiesto e di procedere all’approvvigionamento di chi effettua
realmente
la
profilassi.
Ovviamente
anche
in
questo
caso
la
contestualizzazione viene lasciata a ciascuna realtà organizzativa
ospedaliera.
i) Profilassi dell’endocardite batterica
I pazienti affetti da talune condizioni morbose cardiache presentano un
rischo
elevato
di
sviluppare
un’endocardite
batterica
in
seguito
all’esecuzione di procedure diagnostiche o chirurgiche in grado di
determinare una transitoria batteriemia, in particolar modo quelle a carico
del cavo orale e del tratto respiratorio, genitourinario, gastrointestinale, di
cute e tessuto muscolare scheletrico [23, 123, 124]. Tale popolazione è
costituita da:
 Pazienti con protesi valvolari
 Pazienti con anamnesi positiva per un pregresso episodio di
endocardite batterica (anche in assenza di lesioni valvolari)
 Pazienti affetti da cardiopatie congenite cianogene mai corrette
chirurgicamente o sottoposte solo ad interventi palliativi, pazienti
affetti da cardiopatie congenite corrette completamente ma con
20
impianto di protesi valvolari od altro materiale protesico (per i primi
6 mesi dopo l’intervento) e pazienti affetti da cardiopatie congenite
corrette solo parzialmente e con permanenza del difetto adiacente
ad una protesi o ad altro materiale protesico
 Trapiantati cardiaci che sviluppano valvulopatie
Va peraltro tenuto presente che l’insorgenza dell’endocardite batterica
costituisce molto più probabilmente il risultato dell’esposizione ad episodi
batteriemici legati alla vita quotidiana piuttosto che a quelli correlati a
manovre diagnostiche o chirurgiche. Oltre a ciò, è ormai assoldato che in
tali circostanze la profilassi antibiotica è in grado di prevenire un numero
estremamente basso di casi di endocardite batterica.
Fatti salvi questi presupposti, la profilassi dell’endocardite batterica andrà
riservata solo ai soggetti a rischio elevato (vedi sopra) sottoposti a:
1) Tutte le manovre odontostomatologiche con manipolazione del
tessuto gengivale o che riguardano la regione periapicale del dente
o perforano la mucosa orale. È peraltro tassativo che tali pazienti
mantengano il loro apparato dentario in buone condizioni attraverso
una regolare igiene dentale e controlli odontoiatrici periodici
2) Tutte le manovre invasive sulle vie respiratorie che implicano una
incisione o una biopsia mucosa (ad esempio tonsillectomia e/o
adenoidectomia
Nel caso di manovre che interessano il tratto gastrointestinale, genitourinario, la cute o il tessuto muscolare scheletrico la profilassi va
considerata solo in presenza di infezione/colonizzazione.
La profilassi specifica per l’endocardite batterica non è raccomandata nei
pazienti che già eseguono un’antibiotico-profilassi pre-operatoria con betalattamine (es. cefazolina, amoxicillina+acido clavulanico) od altri antibiotici
attivi sui batteri che si reputa possano essere più frequentemente causa di
endocardite in quella specifica manovra chirurgica/diagnostica.
21
6. SCELTA DEL FARMACO
Per quanto concerne la scelta del farmaco da utilizzare in profilassi, le
evidenze
scientifiche
suggeriscono
che
essa
venga
condotta
in
osservanza a questi principi:
l’antibiotico sia attivo contro i più probabili microrganismi causa di
infezione postoperatoria e, preferibilmente, non appartenga alla
categoria dei farmaci ad “ampio spettro”;
il farmaco non rientri tra quelli di regola utilizzati in terapia, affinché non
si sviluppino antibiotico resistenze;
il farmaco assicuri adeguate concentrazioni sieriche e tissutali (> MIC
dei patogeni bersaglio) in breve tempo e per tutta la durata
dell’intervento (anche ricorrendo a somministrazioni aggiuntive di dosi
se la durata dell’intervento è superiore al doppio dell’emivita del
farmaco utilizzato);
a parità di efficacia abbia minori costi ed effetti collaterali relativamente
al singolo paziente (reazioni allergiche e infezioni) ed all’ecologia
batterica dell’ospedale (selezione di ceppi resistenti);
una valutazione globale del rischio dovrebbe essere parte del processo
di scelta dell’antibiotico appropriato.
Le cefalosporine di I e II generazione, sono gli antibiotici che
maggiormente rispondono a questi requisiti, e pertanto il loro impiego è
fortemente raccomandato in tutti gli studi clinici controllati condotti nel
settore [5-7, 20, 21, 23, 24, 83, 84; 92, 125-129].
Fattori che condizionano la scelta dell'antibiotico a scopo profilattico
[23]
i batteri responsabili dell'infezione del sito chirurgico
la sede dell'intervento
le caratteristiche farmacocinetiche dell'antibiotico
la presenza di eventuali allergie ad antibiotici
22
la tossicità intrinseca del farmaco e le sue possibili interazioni
l'efficacia dimostrata in studi clinici controllati randomizzati
gli effetti sull'ecosistema
il costo.
23
7.
EVIDENZE
MICROBIOLOGICHE:
patogeni
più
frequentamente responsabili della contaminazione del
campo operatorio e delle ISC
I tessuti esposti al momento dell’incisione chirurgica sono a rischio di
contaminazione con la flora endogena ed esogena [21, 47, 119].
La contaminazione endogena è causata dai microrganismi saprofiti che
colonizzano la cute e/o le mucose sede dell’intervento: si tratta quindi di
microrganismi prevedibili per ogni tipo di intervento. La contaminazione
esogena (soprattutto aerobi Gram +) è causata da microrganismi
provenienti dal personale e dall’ambiente della sala operatoria, dallo
strumentario e dai materiali portati in campo sterile nel corso
dell’intervento. La contaminazione non proviene quindi dalla flora batterica
del paziente ma da microrganismi venuti a contatto col paziente in
maniera accidentale e pertanto non prevedibili a priori; tale fenomeno è in
parte controllabile con l’applicazione di rigorose misure di igiene e di
asepsi.
Da quanto dette emerge che, per una scelta appropriata dell’antibiotico, è
importante conoscere i più probabili microrganismi infettanti in base al tipo
di intervento. Secondo i dati forniti dal NNIS (sistema di sorveglianza
nazionale statunitense delle infezioni nosocomiali) e dal SSI, si può
affermare che la distribuizione dei microrganismi isolati in corso di ISC,
non è sostanzialmente mutata negli ultimi venti anni [47]. In accordo con
gli studi epidemiologici riportati in letteratura, anche le A.O. partecipanti a
questo progetto confermano che gli agenti eziologici più frequenti risultano
essere
lo
Stafilococco
aureo,
Stafilococchi
coagulasi
negativi,
Enterococco spp ed Escherichia coli. (vedi tabelle 5 e 6).
A fronte di queste considerazioni di carattere generale, si vuole
sottolineare come l’individuazione dell’antibiotico da impiegare nelle
diverse situazioni debba emergere anche da valutazioni epidemiologiche
24
locali. Per tale motivo, il gruppo di lavoro che ha redatto il presente
documento ha tenuto conto, nella scelta delle molecole da utilizzare in
profilassi, non solo delle indicazioni della letteratura ma anche delle
percentuali di sensibilità dei ceppi isolati nel reale contesto operativo, in
base ad una indagine epidemiologica effettuata nel corso dell’anno 2006
nelle sette aziende ospedaliere aderenti allo studio.
Vengono pertanto riportati rispettivamente in Tabella 7 lo spettro d’azione
dei principi attivi come riportato da “The Sanford Guide to antimicrobial
therapy” [86], e in Tabella 8 i dati relativi alla sensibilità dei ceppi
identificati dai sette laboratori di microbiologia delle aziende coinvolte nello
studio.
Tabella 5 - Distribuzione dei patogeni responsabili* di ISC (NNIS dal 1986 al 1996) [130,
131]
Patogeni
Stafilococco aureo
Stafilococchi coagulasi negativi
Enterococco spp.
Escherichia coli
Pseudomonas aeruginosa
Enterobacter spp.
Proteus mirabilis
Klebsiella pneumoniae
Streptococco (altre specie)
Candida albicans
Streptococco gruppo D (non enterococco)
Altri aerobi gram positivi
Bacteroides fragilis
Percentuale di isolamenti
1986-1989
1990-1996
(N=16.727)
(N=17.671)
17
20
12
14
13
12
10
8
8
8
8
7
4
3
3
3
3
3
2
3
2
2
2
* Sono esclusi i patogeni con percentuale di isolamento inferiore al 2%
25
Tabella 6 - Interventi, probabili agenti patogeni di ISC (modificata da [131])
Interventi
Patogeni probabili °^
Posizionamento di ogni tipo di impianti, protesi, S. aureo; Staf. coagulasi negativi
trapianti
Cardiochirurgia
S. aureo; Staf. coagulasi negativi
Neurochirurgia
Ch. della mammella
Oculistica
S. aureo; Stafilococchi coagulasi
negativi, Streptococchi, Bacilli gram
negativi
Ortopedia
S. aureo; Staf. coagulasi negativi;
Riposizionamento di protesi articolari fratture Bacilli gram negativi
chiuse/uso di chiodi, placche e altri presidi per la
fissazione interna
Riparazione funzionale senza impianto/presidi
Traumi
Ch. toracica non cardiaca
S. aureo; Staf. coagulasi negat.;
(lobectomia, pneumectomia, resezioni minori, Streptococcus pneumoniae; Bacilli
altre procedure mediastiniche non cardiache)
gram negativi
Toracostomia con drenaggio
Ch. Vascolare
Appendicectomia
Bacilli gram negativi; Anaerobi
Ch. del tratto biliare
Ch. colorettale
Ch. gastro-duodenale
Bacilli gram negativi; Streptococchi;
anaerobi orofaringei (es. Peptostreptococco)
Ch. di testa e collo (procedure maggiori con S. aureo; Streptococchi; anaerobi
incisione attraverso la mucosa orofaringea)
orofaringei (es. Peptostreptococco)
Ostetricia e Ginecologia
Bacilli gram negativi; enterococchi,
streptococchi B; Anaerobi
Urologia
Bacilli gram negativi
° Possibili patogeni da sorgenti sia endogene che esogene
^ Ogni tipo di intervento può essere associato a ISC sostenute da Stafilococchi
26
Tabella 7 – Spettro d’azione dei principi attivi (da The Sanford Guide to antimicrobial therapy” [86]).
Gram positivi aerobi
Stafilo
cocchi
Meticill
ino S
Gram negativi aerobi
Altri aerobi
Stafilo Enteroc Enteroc Strepto Enterob Enterob Pseudo Acineto Legione
cocchi occus
occus
cocchi atteri
atteri
monas bacter lla
Meticill faecalis faecium
Gr 1 *
Gr 2 **
ino R
Haemop Chlamy Micopla
hilus
dia
smi
influenz
ae
Cefazolina
Cefoxitina
++
++
-
-
-
++
++
++
++
-/++
-
-
-
+
++
-
-
Amoxi+Clavulanico
Ciprofloxacina
Metronidazolo
Vancomicina
++
++
++
++
++
+
++
++
++
-/++
++
++
++
-
-/++
++
-
++
-
+
-
++
-
++
++
-
++
-
++
-
Clindamicina
Doxiciclina
Gentamicina
++
+
++
+
-
-
-
++
+
-
+/++
++
++
+
-
+
++
+
++
++
+
++
-
+
++
-
Cotrimoxazolo
++
++
++
++
-/++
-
+
++
+
++
+
a
++
-
a
Legenda: -, antibiotico inattivo; +, scarsa o incostante attività ; ++, buona attività
* Gruppo 1: E.coli, P.mirabilis, Salmonella spp., Shigella spp, Klebsiella spp., Citrobacter koseri
** Gruppo 2: Enterobacter spp, Serratia spp, Providencia spp, C.freundii, P.vulgaris, Morganella spp
a) attivo solo se in associazione con betalattamici eo glicopeptidi
b) non attiva su C. difficile
c) attiva sugli anaerobi Gram positivi
27
Anaero
bi
b
++
++
-/+
++
c
-/++
++
+/++
-
BGN NON
FERMENTANTI
ANAEROBI
165
4122
376
0
Bacteroides
Prevotella
133
33
100
100
66-73
69-100
18
14
521
100
100
83
Clostridium (non C. difficile)
Peptostreptococcus/Peptococcus
ALTRI GRAM NEGATIVI Haemophilus sp
64-100
97-100
28
24-80
0
90-100
71-100
63-73
99100
100
91-99
100
100
100
METRONIDAZOLO
CEFAZOLINA
Acinetobacter sp
Pseud. aeruginosa
Stenotrophomonas sp
98-100
85-96
67-76
79-100
90-97
58-83
34-61
78-100
83-100
VANCOMICINA
23-77
53-73
46-62
60-82
18-34
51-71
68-91
100
100
100
27-61
78-86
0-1
80-95
0
47-83
61-95
0
GENTAMICINA HR
0-1
0
GENTAMICINA
0
0
42-84
63-88
0-2
69
89-91
73-91
4.363
4.664
4.985
411
1.392
1.047
614
17.141
1.388
2.570
537
2.171
314
454
CoNS
S.aureus
Enterococchi
Pneumococchi
Str. pyogenes
Str. agalactiae
Citrobacter sp
Escherichia coli
Enterobacter sp
Klebsiella sp
Morganella sp
Proteus
Salmonella
Serratia
18-57
51-71
CLINDAMICINA
24-64
88-92
0-1
86-97
21-56
57-81
95-100
0-18
CEFOXITINA
COTRIMOXAZOLO
ENTEROBATTERI
58-81
96-100
0-7
75-83
24-71
48-93
0
72-86
0
40-66
0
0
28-55
55-75
53-71
88
94
84-100
73-100
68-80
74-90
82-96
67-85
43-57
96-100
72-92
AMPIC/SULBACT
n. ceppi
saggiati
GRAM POSITIVI
CIPROFLOXACINA
Tabella 8 - Antibiogramma cumulativo: % ceppi sensibili (range). Dati dei 7 Laboratori di Microbiologia degli Ospedali aderenti al progetto
81-99
87-94
81-98
79-99
72-90
65-73
83-100
24-80
57-79
99100
100
83100
67-94
8. CARATTERISTICHE PRINCIPALI DEGLI ANTIBIOTICI
UTILIZZATI IN PROFILASSI
Di seguito vengono esposte le principali caratteristiche degli antibiotici
utilizzati
abitualmente
in
profilassi
chirurgica.
Per
comodità
di
consultazione, le modalità di preparazione, i tempi di infusione, i dosaggi e
l’eventuale necessità di ulteriori somministrazioni nel corso dell’ intervento
vengono riassunti nelle tabelle 9 e 10.
I dosaggi standard sono riferiti al paziente adulto di 70 kg con funzionalità
renale normale e che non presenta allergia ai beta lattamici. In presenza
di pazienti con alterazioni della funzionalità renale, i dosaggi dovranno
essere modificati in base al grado di compromissione.
Per quanto riguarda i pazienti in età pediatrica, la letteratura non individua
sostanziali differenze rispetto agli adulti per quanto riguarda la scelta delle
molecole; tuttavia, ai fini del loro utilizzo e della corretta posologia, è
opportuno che si consulti lo specialista pediatra.
NB: è bene ricordare che l’utilizzo in profilassi perioperatoria di alcune
molecole antibiotiche elencate nel presente lavoro, così come la via di
somministrazione intracamerale, sono da considerarsi off label in quanto
non autorizzati nel “Riassunto delle Caratteristiche del Prodotto” (“RCP”, il
documento che riassume le caratteristiche del farmaco sulla base delle
quali è stata rilasciata l’Autorizzazione all’Immissione in Commercio).
L’uso del farmaco, pertanto, è soggetto all’assunzione della responsabilità
da parte del medico e alla firma del consenso informato da parte del
paziente.
Nello specifico, le molecole che non hanno indicazione alla profilassi
antibiotica perioperatoria in RCP sono: vancomicina, clindamicina,
doxiciclina, cefoxitina, gentamicina, cotrimossazolo, ciprofloxacina,
cefazolina per somministrazione intracamerale.
29
Le Cefalosporine di IIIa e IVa generazione, i monobattami, i carbapenemi e
talune penicilline associate ad un inibitore delle beta-lattamasi NON
SONO INDICATI in profilassi chirurgica in quanto [23]:
Hanno un ruolo fondamentale in terapia e quindi il rapporto
rischio/beneficio in profilassi è sfavorevole per l’induzione delle
resistenze e l’impossibilità del successivo uso in terapia.
Hanno scarsa attività contro quei microrganismi che rivestono un
ruolo fondamentale nell’eziopatogenesi delle infezioni della ferita
chirurgica quali Stafilococchi ed anaerobi. L’attività di monobattami e
cefalosporine di 3ª e 4ª generazione è nulla sugli Enterococchi.
Lo spettro d’azione più ampio sui gram negativi non determina
maggiore attività in profilassi.
Hanno un costo maggiore.
NB: Nel caso in cui si renda necessario prescrivere farmaci diversi da
quelli elencati nelle linee guida dovranno essere riportate le motivazioni in
cartella clinica.
La decisione finale sul singolo paziente è esclusiva competenza della
valutazione clinica da parte del chirurgo o dell’anestesista.
30
Sono di seguito riportate le caratteristiche principali dei farmaci descritti in
questo documento per l’utilizzo in profilassi.
Classe
Spettro d’azione
Emivita
CEFAZOLINA
Cefalosporina di 1a generazione
La sua azione, di tipo battericida, si esplica su
numerosi batteri Gram positivi (S. aureus e
Stafilococchi coagulasi negativi meticillino sensibili,
Streptococcus viridans, Sterptococcus pyogenes,
Sterptococcus pneumoniae) e Gram negativi (Klebsiella
pneumoniae, E. coli, Proteus mirabilis, N.gonorrhoeae).
Non è invece attiva su altri Gram positivi (Stafilococchi
meticillino resistenti, Enterococchi) e Gram negativi
(Enterobacter,
Proteus
vulgaris,
Providencia,
Morganella, Serratia, Pseudomonas e Acinetobacter)
Non è attiva su Bacteroides ; può essere attiva su altri
anaerobi
Poco attiva su Haemophilus influenzae
1,8-2 ore
Legame alle proteine plasmatiche: 60-80%
Raggiunge livelli terapeutici in diversi tessuti come
polmoni, tonsille, parete colecistica, appendice e livelli
Farmacocinetica
elevati nella bile e nel liquido sinoviale. Diffonde
scarsamente nel liquor.
Escrezione urinaria in forma immodificata
Adulti: 2 g.
Soggetti di peso < 50Kg: 1 g.
Posologia per
Bambini: 25 mg/Kg (valutare con specialista pediatra)
profilassi
In caso di insufficienza renale la dose deve essere
ridotta ad 1 g
Intracamerale: 1 mg/0,1 ml
Modalità
e.v. lenta: diluire in 20-100 ml di soluzione fisiologica e
somministrazione infondere alla velocità di 10 ml ogni 3-5 minuti
Controidicazioni Allergia a cefalosporine
Precauzioni
Allergia ad altri lattamici
d’uso
Insufficienza renale grave
Fenomeni di ipersensibilità, rash cutanei, artralgie,
Effetti
glossite, nausea, vomito, diarrea, pirosi gastrica, dolori
indesiderati
addominali, disordini della coagulazione
Incompatibilità
FANS derivati dell’acido fenilpropionico
Indicazione alla profilassi chirurgica registrata
Note
Indicazione alla somministrazione intracamerale non
registrata (utilizzo off label)
31
Classe
Spettro d’azione
Emivita
Farmacocinetica
Posologia per
profilassi
CEFOXITINA
Cefalosporina di 2a generazione
Stessi microrganismi delle cefalosporine di 1^
generazione (cefazolina) ma con maggiore attività su
Gram negativi (può essere attiva su Proteus vulgaris,
Morganella, Providencia) e su alcuni anaerobi
(Bacterioides, Peptococcus, Peptostreptococcus
Non ha attività su P. aeruginosa, Enterococchi,
Enterobacter, Stafilococchi meticillino-resistenti, Listeria
monocytogenes e Clostridium difficile
Adulto: 60 minuti (aumenta in caso di insufficienza
renale)
Bambino: 40 minuti
Si distribuisce bene nei diversi tessuti e nel liquido
pleurico, ascitico e nella bile, ma il passaggio nel liquor
risulta scarso a meningi integre.
Escrezione urinaria in forma immodificata
Adulti: 2 g.
Soggetti di peso < 50Kg: 1 g
In caso di insufficienza renale la dose deve essere
ridotta
Modalità
e.v. lenta: 2 g in 20 ml di H2O p.p.i. in 5 minuti
somministrazione
Controidicazioni Allergia a cefalosporine
Allergia ad altri
lattamici; pz con storia di malattie
Precauzioni
gastrointestinali; e con storia di allergie, gravi problemi
d’uso
renali
Fenomeni di ipersensibilità, nausea, vomito, diarrea,
Effetti
dolori addominali, disordini della coagulazione,
indesiderati
leucopenia, neutropenia, ipotensione
Interazioni
Penicilline, aminoglicosidi, FANS, probenecid
Indicazione alla profilassi non registrata (utilizzo off
Note
label)
32
Classe
Spettro d’azione
Emivita
Farmacocinetica
CIPROFLOXACINA
Fluorochinolone
Gram positivi: è attiva nei confronti di Stafilococchi
meticillino sensibili, Listeria; non è attiva o è poco attiva
nei confronti di Enterococchi e streptococchi. Gram
negativi: è attiva nei confronti di: E. coli, Shigella,
Salmonella, Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter,
Serratia, Proteus (indolo-positivo e indolo-negativo),
Providencia,
Morganella,
Yersinia,
Aeromonas,
Haemophilus, Pseudomonas, Legionella, Neisseria,
Moraxella, Chlamydia, è poco attivo su Acinetobacter e
non è attivo su Burkholderia e Stenotrophomonas
Adulto: 3-6 ore
Bambino: 4-5 ore
Passa la barriera ematoencefalica e si ritrova in buone
concentrazioni in tutti i tessuti; solo nei liquidi oculari le
concentrazioni non raggiungono i livelli terapeutici
Escrezione renale per filtrazione glomerulare e
secrezione tubulare
Posologia per
Adulti: 400mg ev o 500 mg os
profilassi
Modalità
e.v. lenta: infondere possibilmente in vena di medio/
somministrazione grosso calibro in 60 minuti
Ipersensibilità ai chinoloni
Controindicazioni
Somministrazione concomitante di tizanidina
Disordini del SNC; neuropatie; ipersensibilità;
Precauzioni
deficienza di G6P deidrogenasi; urine alcalinizzate; nei
d’uso
bambini e adolescenti in crescita; in caso di danni
renali, esposizione diretta alla luce, miastenia
Teofillina, caffeina, warfarin, tizanidina, clozapina,
ropinirolo, metotrexate, ciclosporina, glibenclamide,
Interazioni
barbiturici, FANS (tranne acido acetilsalicilico),
probenecid
Indicazione alla profilassi registrata solo in pazienti con
Note
ridotte difese immunitarie
33
METRONIDAZOLO
Classe
Derivato imidazolico
Attivo solo su batteri anaerobi obbligati (in particolare
Spettro d’azione
Bacteroides e cocchi gram positivi anaerobi)
Emivita
8 ore
Legame alle proteine plasmatiche: 20%
Farmacocinetica
Escrezione prevalentemente urinaria in circa 12 ore
Posologia per
Adulti e bambini >12 anni: 500 mg
profilassi
Bambini<12 anni: 7,5 mg/kg di peso
Modalità
e.v. lenta: 500 mg in 100 ml di soluzione in 20 minuti
somministrazione (infondere 5ml/minuto)
Ipersensibilità verso il farmaco; discrasie ematiche;
Controindicazioni
malattie del SNC; gravidanza ed allattamento
Precauzioni
Ridurre la dose in caso di grave insufficienza renale
Interazioni
Alcool, anticoagulanti orali
Sensazione di gusto metallico, lingua saburrale,
Effetti
eruzioni cutanee; anoressia, nausea, vomito,
indesiderati
neuropatie perferiche.
Possibili reazioni tipo Disulfiram
Note
Indicazione alla profilassi registrata
34
AMOXICILLINA + ACIDO CLAVULANICO
Classe
Pennicillina+ inibitore delle beta-lattamasi
È attivo su:
Gram
positivi
aerobi:
Enterococcus faecalis,
Staphylococcus
aureus
meticillino
sensibile,
Staphylococchi coagulasi negativi meticillino sensibili,
Streptococcus agalactiae, Streptococcus pneumoniae,
Streptococcus pyogenes, Streptococcus spp, meno
attivo su Streptococcus viridans
Gram negativi aerobi: Escherichia coli, Haemophilus
influentiae, Klebsiella spp, Moraxella catarrhalis,
Spettro d’azione
Neisseria
gonorrhoeae,
Neisseria
meningitidis,
Proteus mirabilis, Proteus vulgaris, Salmonella spp,
Shigella spp, Yersinia enterocolitica. Non è attivo su
Enterobacter, Serratia, Citrobacter, Acinetobacter,
Pseudomonas, Burkhol-deria, Stenotrophomonas,
Legionella
Batteri anaerobi: Clostridium spp (non Cl. difficile),
Peptococcus spp, Peptostreptococcus spp. e
Bacteroides fragilis
Non è attivo su Chlamydie e Mycoplasmi
Emivita
1 ora circa
Diffusione ubiquitaria, ma non supera la barriera
Farmacocinetica
emato-encefalica; escrezione immodificata per via
urinaria in circa 6 ore
Posologia per
Adulti: 2,2 g
profilassi
Bambini: 30 mg/kg di peso
Modalità
Infusione e.v.: 2,2 g in 100 ml di soluzione fisiologica o
somministrazione di H2O ppi in 30 minuti
Ipersensibilità verso i beta-lattamici; ittero/disfunzione
Controindicazioni
epatica; sospetta mononucleosi
Ridurre la dose in caso di importante insufficienza
Precauzioni
renale e disfunzioni epatiche
Reazioni
di
ipersensibilità,
eruzioni
cutanee,
candidiasi, aumento del tempo di protrombina,
Effetti indesiderati leucopenia, nausea, vomito, diarrea vertigini, cefalea,
incremento dei livelli di transaminasi, edema
angioneurotico, anafilassi, cristalluria
Note
Indicazione alla profilassi registrata
35
VANCOMICINA
Classe
Glicopeptide
È attiva sui batteri Gram positivi aerobi ed anaerobi
(parzialmente sull’Enterococcus faecium). Non è attiva
Spettro d’azione
sui batteri Gram negativi aerobi ed anaerobi
Emivita
4-6 h in caso di funzionalità renale normale.
Diffusione ubiquitaria ma non supera la barriera ematoFarmacocinetica encefalica (una piccola quantità può penetrare in caso di
meningite)
Escrezione renale (Clearance 1,37 mL/kg/min)
Endovena: Adulti: 1 g e.v.
Posologia per
Bambini: 20 mg/kg e.v.
profilassi
Intracamerale: 1 mg/0,1 ml
Ricostituire in acqua per preparazioni iniettabili o
Modalità
soluzione fisiologica. Somministrare in infusione lenta
somministrazione
nell’arco di 1 h
Uso concomitante di farmaci immunosoppressori,
Controindicazioni nefrotossici od ototossici, ipersensibilità ai glicopeptidi,
anamnesi di sordità, gravidanza ed allattamento
L’uso contemporaneo di anestetici può essere associato
Interazioni
ad eritema o reazioni di ipersensibilità
Immunosoppressori, farmaci nefrotossici ed ototossici
Tromboflebiti, febbre, brividi, sordità (preceduta da tinnito
Effetti
ed ipoacusia per le alte frequenze) nausea, vomito,
indesiderati
trombocitopenia, eritema cutaneo
Indicazione alla profilassi chirurgica registrata solo per la
prevenzione dell’endocardite batterica (utilizzo off-label)
Note
Indicazione alla somministrazione intracamerale non
registrata (utilizzo off-label)
36
CLINDAMICINA
Classe
Lincosamide
È attiva su Streptococchi e Stafilococchi meticillino
Spettro d’azione sensibili. Non è attiva su enterococchi e batteri Gram
negativi. Attiva su batteri anaerobi (non su Cl. difficile)
Emivita
3 h in caso di funzione renale normale
Distribuzione: ubiquitaria (anche nel tessuto osseo) ma
non supera la barriera emato-encefalica nemmeno in
Farmacocinetica
caso di meningite.
Escrezione renale; ampiamente metabolizzata a livello
epatico
e.v.: Adulti: 900 mg
Posologia per
Soggetti di peso < 50Kg: 600 mg
profilassi
Bambini sopra i 2 anni: 20 mg/kg
e.v. lenta: 900 mg in 50-100 ml di soluzione fisiologica
Modalità
infusi in 30 minuti
somministrazione
600 mg in 50 ml in 20 minuti
Ipersensibilità alla clindamicina, diarrea o colite,
Controindicazioni insufficienza renale od epatica, gravidanza ed
allattamento
Precauzioni per
Non somministrare per via endovenosa sottoforma di
l’uso
bolo non diluito
Reazioni allergiche, diarrea, dolori addominali, nausea,
Effetti indesiderati vomito,
tromboflebiti,
grave
ipotensione
dopo
somministrazione e.v. rapida
Ampicillina, difenilidantoina, barbiturici, aminofillina,
Incompatibilità
solfato di magnesio, gluconato di calcio
Bloccanti neuromuscolari, eritromicina
Interazioni
La gentamicina può avere effetto sinergico
Indicazione alla profilassi chirurgica non registrata
Note
(utilizzo off-label)
37
DOXICICLINA
Classe
Tetraciclina
Parzialmente attiva su Stafilococchi e streptococchi, non
Spettro d’azione attivo su Enterococchi. Parzialmente attiva su batteri
Gram negativi ed anaerobi
Emivita
16-22 ore
100 mg per os 1 ora prima dell’intervento e 200 mg dopo
l’intervento, assunti con abbondante acqua ed evitando di
Posologia per
coricarsi per alcuni minuti dopo la deglutizione, per
profilassi
favorirne l’assorbimento e limitarne la tossicità a livello
esofageo
Disturbi ostruttivi dell’esofago; ipersensibilità alle
Controindicazioni
tetracicline
Reazioni di fotosensibilizzazione per esposizione alla luce
solare; nei bambini chela il calcio nel tessuto osseo in
Precauzioni
formazione e nei denti; aggiustare la posologia in caso di
insufficienza renale
Preparati antiacido contenenti alluminio, calcio e
magnesio; alimenti a base di latte, sali di ferro. Barbiturici,
Interazioni
carbamazepina, fenitoina, anticoagulanti, penicilline, litio,
metotressato, digossina e derivati dell’ergot
Nausea, epigastralgia, diarrea, anoressia, mucositi,
enterocolite, candidiasi ano-genitale, disfagia, esofagite,
Effetti indesiderati
ulcere esofagee, manifestazioni cutanee, reazioni di
ipersensibilità, alterazioni ematologiche
Indicazione alla profilassi chirurgica non registrata (utilizzo
Note
off label)
38
GENTAMICINA
Classe
Aminoglicoside
Non attiva su streptococchi, sinergica su Enterococchi
attiva su Stafilococchi meticillino sensibili. Attiva su
bacilli Gram negativi enterobatteri e Pseudomonas
Spettro d’azione
aeruginosa. Non attiva su Acinetobacter, Burkholderia e
Stenotrophomonas
Non attiva contro gli anaerobi
Emivita
1-2 h
Distribuzione: ubiquitaria ma non supera la barriera
Farmacocinetica
ematoencefalica
Escrezione: 70-100% renale in forma immodificata
Posologia per
Adulti: 1,5 mg/kg
profilassi
Bambini: 2- 2,5 mg/kg
Modalità
e.v. lenta: 1,5 mg/kg in 100-200 ml soluzione fisiologica
somministrazione in 60 minuti
Ipersensibilità alla gentamicina o ad altri aminoglicosidi;
Controindicazioni generalmente controindicata in gravidanza, allattamento
ed anche in età pediatrica
Nefrotossicità, ototossicità vestibolare ed uditiva, neuriti
periferiche,
torpore,
parestesie,
fascicolazioni,
convulsioni, sindrome tipo miastenia gravis, rare
reazioni di ipersensibilità
Allergenicità crociata tra aminoglicosidi, cisplatino,
polimixina B, colistina, streptomicina, carbenicillina,
Interazioni
vancomicina, alcune cefalosporine, diuretici potenti; altri
antibiotici nefrotossici ed ototossici
Incompatibilità
Non mescolare nella stessa siringa con altri farmaci
Note
39
Classe
Spettro d’azione
Emivita
Farmacocinetica
COTRIMOXAZOLO
sulfametoxazolo+trimetoprim
Attivo sui Gram positivi, tra cui Streptococchi e
Stafilococchi; non attivo sugli Enterococchi. Attivo
parzialmente sulla maggior parte dei bacilli Gram
negativi enterobatteri, su Stenotrophomonas e
Burkholderia; non attivo sullo Pseudomonas e sugli
anaerobi
12 ore
Legame alle proteine plasmatiche: 50%-70%
Buona distribuzione nei tessuti, nell’espettorato, nelle
secrezioni e nel liquido cerebrospinale
Escrezione: 30-50% renale; ampiamente metabolizzato
a livello epatico
Posologia per
Adulti: 800 mg sulfametoxazolo + 160 mg trimetoprim
profilassi
Modalità
Infusione lenta: 800 mg sulfametoxazolo + 160 mg
somministrazione trimetoprim in 250 ml di soluzione fisiologica in 60 minuti
Ipersensibilità verso i sulfamidici o il trimetoprim,
insufficienza renale con iperazotemia, gravi lesioni del
Controindicazioni parenchima epatico, infezioni da Streptococco betaemolitico di gruppo A, paziente con possibile carenza di
G6P deidorgenasi , gravidanza ed allattamento
Reazioni allergiche, reazioni gastrointestinali, cefalea,
neuropatie periferiche, depressione, convulsioni,
discrasie ematiche, reazioni uropoietiche, possibile
ipersensibilità crociata con sulfamidici
Precauzioni per
Non utilizzare in caso di infezioni sostenute da
l’uso
streptococco beta-emolitico di gruppo A
Warfarin,
fenitoina,
metotressato,
ciclosporina,
Incompatibilità
indometacina
Note
40
Classe
Spettro d’azione
Emivita
Farmacocinetica
Modalità
somministrazione
Controindicazioni
Precauzioni per
l’uso
Incompatibilità
IODOPOVIDONE 5%
Antisettico ad ampio spettro
Azione biocida su batteri, virus, miceti, spore e protozoi
Attività microbicida immediata, che perdura almeno 45
minuti
Lo iodio presente nello iodopovidone può attraversare la
barriera congiuntivale
Eliminazione principalmente per via urinaria
Topica su cute e fornice. Saturare l’ovatta sterile del
liquido contenuto nel flacone e iniziare a preparare ciglia,
margini palpebrali, palpebre, guance e fronte. Irrigare con
il prodotto cornea, congiuntiva e fornici palpebrali.
Aspettare 2 minuti, quindi rimuovere irrigando cornea,
congiuntiva e fornici con soluzione polisalina sterile
Ipersensibilità a iodopovidone o ad altre sostanze
strettamente correlate dal punto di vista chimico, evitare
l’uso abituale in corso di gravidanza ed allattamento;
controindicato l’uso abituale in pazienti con turbe della
tiroide; evitare l’uso abituale in pazienti in trattamento
contemporaneo con litio
Reazioni cutanee locali
L’uso prolungato di prodotti per uso topico può dare
origine a fenomeni di sensibilizzazione; l’assorbimento
sistemico di iodio dallo iodopovidone può interferire con i
test di funzionalità tiroidea.
Non somministrare per irrigazione e via iniettiva
intraoculare o perioculare. Non somministrare contemporaneamente a colliri contenenti conservanti mercuriali ed
al tiosolfato di sodio
Derivati mercuriali e tiosolfato di sodio
Le informazioni contenute nelle tabelle sono tratte da:
Riassunto delle Caratteristiche del Prodotto (R.C.P) dei singoli medicinali dalla banca
dati nazionale aggiornata alla data di febbraio 2008
Banca dati Micromedex per quanto riguarda la posologia dei farmaci che non hanno
l’indicazione registrata in RCP per la profilassi
“The Sanford Guide to antimicrobial therapy” 2007 per lo spettro d’azione [86]
41
Tabella 9 - Dosi adulto, pediatriche e ripetizione durante l’intervento
Farmaco
Dose Adulto°
Dose Pediatrica* Emivita
Cefazolina
> 50 Kg: 2g ev
< 50 Kg: 1g ev
Intracamerale:
1 mg/0,1 ml
> 50 Kg: 900 mg ev
< 50 Kg: 600 mg ev
1,5 mg/kg ev
25 mg/Kg ev
1,8-2 ore
20 mg/Kg ev
3 ore
2-2.5 mg/kg ev
1-2 ore
500 mg ev
1 g ev
Intracamerale:
1 mg/0,1 ml
400 mg ev
500 mg os
800 mg
sulfametoxazolo + 160
mg trimetoprim ev
100 mg os un’ora
prima intervento,
200 mg dopo
intervento
2,2 g ev
7.5 mg/Kg ev
20 mg/kg ev
8 ore
4-6 ore
non prevista
3-6 ore
non prevista
12 ore
non prevista
6-12 ore
30 mg/Kg ev
1 ora
40 mg/Kg ev
Adulto:1 ora
Bambini: 40
minuti
Clindamicina
Gentamicina
Metronidazolo
Vancomicina
Ciprofloxacina
Cotrimoxazolo
Doxiciclina
Amoxicillina +
acido clavulanico
Cefoxitina
> 50 Kg: 2 g ev
< 50 Kg: 1 g ev
° Indicazioni riferite a pazienti con normale funzionalità renale.
* Bambini di età compresa fra i 3 mesi ed i 12 anni
42
Tabella 10 - Modalità di preparazione e di infusione degli antibiotici
Farmaco
Preparazione
Tempi di Infusione
Cefazolina
Diluire in 20-100 ml di Sol.
Fisiologica
Fisiologica
Fisiologica
Flacone da 100 ml già pronto
Diluire in 250 ml di Sol.
Fisiologica
Flacone da 200 ml già pronto
Diluire in 250 ml di Sol.
Fisiologica
Diluire 2.2 g in 100 ml di Sol.
Fisiologica o di H2O ppi
Diluire in 20 ml di H2O ppi
10 ml ogni 3-5
minuti
30 minuti
Clindamicina
Gentamicina
Metronidazolo
Vancomicina
Ciprofloxacina
Cotrimoxazolo
Amoxicillina + acido
clavulanico
Cefoxitina
43
60 minuti
20 minuti
60 minuti
60 minuti
60 minuti
30 minuti
5 minuti
9. IMPLEMENTAZIONE DELLA LINEA GUIDA
L’implementazione della linea guida deve essere supportata da un
programma di continua istruzione, dalla valutazione della letteratura
corrente e da un regolare monitoraggio delle infezioni e delle nuove
resistenze instauratesi con i chemioterapici in uso [7, 132-138]. Occorre
pertanto effettuare regolari audit per valutare l’aderenza alla linea guida.
Un metodo organizzativo potrebbe essere quello di introdurre nella pratica
corrente
sistemi
specifici
di
registrazione
della
somministrazione
dell'antibiotico e riportare un minimo set di dati nella cartella clinica e nel
foglio della terapia, per poter facilitare l'esecuzione di audit atti a valutare
l'appropriatezza della profilassi antibiotica preoperatoria [23].
L’A.O. dovrebbe fornire i supporti, in termini di risorse e di organizzazione,
necessari alla corretta applicazione delle norme di prevenzione delle ISC.
44
10. ASPETTI MEDICO LEGALI RELATIVI ALLA PROFILASSI
ANTIBIOTICA
Lo scopo principale delle Linee Guida è quello di ridurre la variabilità dei
comportamenti nella pratica clinica, al fine di diffondere e sviluppare le
conoscenze basate su evidenze ben documentate.
Le Linee Guida costituiscono, quindi, anche uno strumento di tutela del
cittadino che si rivolge alle strutture sanitarie ed ai suoi professionisti.
Inoltre, sotto il profilo medico-legale, devono essere considerate come le
altre raccomandazioni sulla pratica clinica con identica finalità.
Le
Linee
Guida
non
sono
affatto
deresponsabilizzanti
verso
il
professionista, in quanto lo inducono a valutare attentamente il singolo
paziente e ad utilizzare le conoscenze migliori disponibili se ed in quanto
sono adeguate per singolo caso.
In questo processo assumono grande importanza le annotazioni in cartella
clinica, la quale rappresenta la più importante fonte di informazione sullo
stato del paziente, sui ragionamenti clinici dei professionisti che a lui si
dedicano e sulle azioni terapeutiche pianificate ed effettuate. In cartella va
pertanto riportata qualsiasi annotazione riguardo alla tipologia di
trattamento messo in atto ed agli eventuali esami strumentali eseguiti, al
fine di verificarne l’efficacia.
La cartella clinica, inoltre rappresenta il documento ufficiale su cui
annotare le motivazioni per le quali si è adottata una linea guida ovvero ci
si è discostata da essa.
In mancanza di un’adeguata informazione scritta, nell’eventualità di un
decorso clinico non previsto o, malauguratamente, di danno al paziente,
non sarà possibile ricostruire il processo decisionale alla base della scelta
terapeutica. Quindi, in ambito civile, relativamente alle attribuzioni delle
responsabilità, il nostro ordinamento giuridico prevede l’obbligo per
l’Azienda Ospedaliera e per il singolo professionista, di dimostrare che, a
fronte del verificarsi del danno, è stato fatto tutto il possibile per evitarlo.
45
Al venire meno di questa condizione si instaura una sorta di automatismo
nel risarcimento del danno che trova la sua massima espressione proprio
nelle procedure di prevenzione delle infezioni ospedaliere e nella non
documentata attuazione della profilassi antibiotica chirurgica (anche se
regolarmente eseguita).
Come per tutte le Linee Guida è quindi necessario che il medico
documenti le ragioni per cui in quello specifico caso adotta o si discosta
dalle Linee Guida, avendo in ciò la sua massima libertà e responsabilità
(informando il paziente ed ottenendone il suo consenso); in caso di
assenza di documentazione le Linee Guida stesse, note nella comunità
scientifica e professionale, assumono il ruolo di parametri rigidi di
valutazione per il Magistrato sia nel giudicare i comportamenti del medico,
sia nel processo di identificazione della colpa.
46
11. INDICAZIONI ALLA PROFILASSI ANTIBIOTICA
Il gruppo di lavoro ha accolto la classificazione proposta dagli specialisti di
branca. Per gli interventi chirurgici non presenti nell’elenco e nel caso di
chirurgia sporca è da valutare l’opportunità di instaurare direttamente una
terapia.
Nota: sotto i 50 Kg i dosaggi indicati nelle tabelle successive vanno ridotti
indicativamente come segue Cefazolina 1 g (ev) e Cefoxitina 1 g (ev)
47
CHIRURGIA CARDIACA E TORACICA [6, 43, 99, 139-157]
Intervento
Inserzione
di
Alternativa nei pazienti
Antibiotico di prima scelta
Note
allegici ai betalattamici
pacemaker Cefazolina 2 g ev
Vancomicina 15 mg/Kg ev
cardiaco/defibrillatore
(max 1 g)
Bypass
Continuare per max 24-48
(max 1 g)
ore
protesi
aorto–coronarici, Cefazolina 2 g ev
valvolari,
altra
chirurgia a cuore aperto
Resezione polmonare
Cefazolina 2 g ev
(max 1 g)
48
CHIRURGIA VASCOLARE [158-165]
Intervento
Chirurgia
vascolare
arteriosa Cefazolina 2 g ev
Note
allegici ai betalattamici
addominale (con o senza inserimento
(max 1 g)
di protesi) e dell’arto inferiore
Interventi sulla carotide con utilizzo di Cefazolina 2 g ev
Vancomicina 15 mg/Kg ev Non raccomandata in
protesi
(max 1 g)
caso
di
mancato
uitlizzo di protesi
Amputazione
di
arto
inferiore
(in Cefazolina 2 g ev
assenza di infezioni in atto)
(max 1 g)
49
CHIRURGIA OFTALMICA [166-197]
Intervento
Note
allergici ai betalattamici
Cataratta vitrectomia Iodopovidone 5%* (cute e fornice)
Iodopovidone
anteriore
profilassi antisettica preoperatoria
+ eventualmente collirio antibiotico
utilizzato
per
chinolonico o aminoglicosidico
Cefazolina 10 mg/ml (0.1 ml intra- Vancomicina 10 mg/ml Dubbia raccomandazione. Uso di
camerale a fine intervento)
(0.1 ml intracamerale a Cefazolina e di Vancomicina intrafine intervento)
camerale off label (come via di
somministrazione)
Chirurgia vascolare Chirurgia vascolare
50
CHIRURGIA OTORINOLARINGOIATRICA [96, 104, 111-113, 198-221]
Intervento
Antibiotico di prima
scelta
Chirurgia di testa e collo pulita NO
(tiroidectomia
totale
paratiroidectomia,
svuotamenti
e
parziale,
linfoadenectomie,
laterocervicali
e
sotto-
mascellari elettivi)
Chirurgia di testa e collo pulita- Cefoxitina 2 gr ev + Clindamicina 600 mg ev +
contaminata
e
contaminata Clindamicina 600 mg ev
(chirurgia oncologica del
massiccio
faciale, lembi, fistole rinoliquorali)
Chirurgia
dell’orecchio
pulita NO
(miringoplastica, timpano plastica)
51
Gentamicina 3 mg/Kg ev
Note
Chirurgia
dell’orecchio
contaminata
pulita- Cefoxitina 2 gr ev + Clindamicina 600 mg ev + Dubbia raccomandazione
(otoneurochirurgia,
Clindamicina 600 mg ev
timpano plastiche, ecc)
Chirurgia del naso e dei seni NO
Indicata solo nelle settorino-
paranasali
plastiche complesse (incluso
chirurgia
(settorinoplastica,
funzionale
endoscopica
inserimento di grafts) e nelle
FESS)
FESS
caso
contaminate;
schema
come
in
tal
nella
chirurgia testa e collo pulitacontaminata
Adenotonsillectomia
Amoxicillina/acido
Dubbia raccomandazione
clavulanico 2,2 g ev
52
CHIRURGIA GENERALE [4, 77, 94, 95, 101,107, 222-269]
Intervento
Chirurgia
esofagea
(con Cefazolina 2 g ev
Chirurgia dello stomaco, del Cefazolina 2 g ev
ricostruzione gastrica)
duodeno e dell’intestino tenue
Gastrostomia endoscopica
Chirurgia
biliare
Cefazolina 2 g ev
aperta, Cefazolina 2 g ev
Clindamicina 600 mg ev +/Gentamicina 3 mg/Kg ev
epatica resettiva e pancreatica;
colecistectomia
laparotomica,
colecistectomia laparoscopica
complicata
53
Note
Colecistectomia laparoscopica Cefazolina 2 g ev
non complicata
Chirurgia del colon (colorettale, Cefazolina
appendicectomia,
ricanalizzazione
2
g
ev
+ Clindamicina 600 mg ev + Dubbia
Metronidazolo 500 mg ev
intestinale, chirurgia esofagea con
per la chirurgia proctologica
in
ricostruzione colica)
raccomandazione
tal
caso
solamente
Metronidazolo 500 mg ev
Ernia laparoscopica e non con Cefazolina 2 g ev
o senza utilizzo di materiale
protesico
Chirurgia della mammella
Cefazolina 2 g ev
Altre procedure pulito-
Cefazolina 2 g ev
contaminate non menzionate
altrove
54
UROLOGIA [109, 114, 270-320]
Intervento
Biopsia prostatica trans-rettale
Antibiotico di
prima scelta
allergici
Note
Ciprofloxacina 500 Cotrimossazolo 160/800 Ciprofloxacina per os 1-2 ore
mg per os
mg per os
prima della procedura. La 2°
somministrazione dopo 12,
max 24 ore
Procedure endoscopiche diagnostiche No
Indicata in pazienti a rischio*.
con e senza prelievo bioptico
In tal caso: Cotrimossazolo
Uretrocistoscopia
160/800 mg per os o, nei
Esame urodinamico
pazienti
allergici,
Amoxicillina/acico clavulanico
1g per os, 1-2 ore prima della
procedura
55
Procedure endoscopiche e chirurgia Cefoxitina 2 g ev
Cotrimossazolo 160/800 Dubbia
endoscopica:
mg ev (2 fl in 250 ml FF) TURBT
Rx contrastografia trans-catetere vescicale
Rx pielografia ascendente e discendente
Dilatazioni uretrali
Posizionamento/sostituzione
di
tutori
ureterali MJ/DJ
Ureterorenoscopia;
Pielo-nefro litotomia percutanea (PCNL)
Posizionamento di nefrostomia percutanea
(PCN)
Resezione prostatica transuretrale con
ansa/laser (TURP/TURPT)
Resezione
transuretrale
di
neoplasia
vescicale (TURBT)
Incisione endoscopica del collo vescicale
con ansa/laser (TURBN)
Incisione endoscopica di prostata (TUIP)
Uretrotomia endoscopica con ansa/laser
56
indicazione
nella
Litotripsia extracorporea con onde NO
Indicata in pazienti a rischio*;
d'urto (ESWL)
in tal caso Cefazolina 2 g ev o,
nei
pazienti
allergici,
Cotrimossazolo 160/800 mg ev
(2 fl in 250 ml FF)
Interventi puliti (senza incisione delle NO
Indicata in pazienti a rischio*;
vie urinarie):
in tal caso Cefazolina 2 g ev o,
Legatura delle vene spermatiche
nei
Orchifunicolectomia
Cotrimossazolo 160/800 mg ev
Circoncisione
(2 fl in 250 ml FF)
Frenuloplastica
Interventi
puliti-contaminati
Cotrimossazolo 160/800
(con Cefoxitina 2 g ev
mg ev (2 fl in 250 ml FF)
apertura del tratto urinario):
Nefrectomia semplice e radicale
Nefroureterectomia totale
Linfoadenectomia retroperitoneale
Prostatectomia radicale
Adenomectomia prostatica a cielo aperto
(con e senza CV a permanenza)
57
pazienti
allergici,
Cistectomia parziale
Plastica del giunto pieloureterale
Ureteroneocistostomia
Ureterolisi con omentoplastica
Chirurgia dello scroto (resezione di tonaca
vaginale, biopsia testicolare, fissazione
testicolare, esplorativa testicolare)
Raddrizzamento pene curvo
Colposospensione
Colpoperineoplastica
Uretrolisi
Chirurgia a cielo aperto dell’uretra
Cistectomia con ureterocutaneostomia
Interventi
puliti-contaminati
utilizzo di segmenti intestinali):
+/-
Cistectomia con condotto ileale
Cistectomia
con
neovescica
(con Cefoxitina 2 g ev
Metronidazolo
500 mg ev
+ Gentamicina 3 mg/Kg
ev
ileale
ortotopica
* Si definisce soggetto a rischio infettivo quello caratterizzato dalla presenza di almeno uno dei seguenti fattori:
58
a) Generici:
età > 65 anni
stato nutrizionale scadente
obesità
condizioni di immunodepressione (infezione da HIV, terapia steroidea, neutropenia ecc)
diabete mellito
fumo di sigaretta
presenza di processo infettivo
b) Specifici
ospedalizzazione preoperatoria prolungata o recente ospedalizzazione (ultimi tre mesi)
storia di infezioni genitourinarie ricorrenti
chirurgia coinvolgente segmenti intestinali
colonizzazione batterica delle vie urinarie (es. batteriuria asintomatica)
cateterizzazione per più di 7 giorni
ostruzione e/o calcolosi delle vie urinarie
brachi- o radio-terapia recente
NOTA: gli interventi considerati “sporchi” per contaminazione da contenuto enterico (es.: cistectomia con derivazioni col sigma, chirurgia
iterativa, fistole uro-enteriche) non necessitano di profilassi in quanto è indicata la terapia antibiotica.
59
NEUROCHIRURGIA [321-331]
Intervento
Craniotomia pulita e derivazione Cefazolina 2 g ev
del liquido cerebro-spinale
(max 1 gr)
Craniotomia pulita-contaminata e Cefoxitina 2 gr ev +
Clindamicina 600 mg ev +
contaminata (da seni paranasali o Clindamicina 600 mg ev
rinofaringe)
Chirurgia del rachide (compresa Cefazolina 2 g ev
discectomia)
(max 1 gr)
60
Note
OSTETRICIA E GINECOLOGIA [332-368]
Intervento
Parto cesareo elettivo
Cefazolina
2
clampaggio
g
ev
del
Note
(dopo Clindamicina
cordone (dopo
ombelicale)
Parto cesareo non elettivo (con Cefoxitina
600
mg
clampaggio
ev
del
cordone ombelicale)
2
travaglio in atto e/o rottura di clampaggio
gr
del
(dopo Clindamicina 600 mg ev +/cordone Gentamicina
3
mg/kg
ev
membrane più di 6 ore prima ombelicale)
(dopo clampaggio cordone
dell’intervento)
ombelicale)
Isterectomia
addominale
e Cefoxitina 2 gr
Clindamicina 600 mg
vaginale
Aborto indotto
+/-
Gentamicina 3 mg/kg ev
Doxiciclina 200 mg per os 2 Claritromicina 500 mg per os
ore prima dell’intervento
2 ore prima dell’intervento
61
CHIRURGIA ORTOPEDICA [84, 87, 369-392]
Intervento
Chirurgia
protesi
elettiva
senza No
(meniscectomia
sinoviectomia
e
artroscopica,
riparazione di muscoli, tendini e
fasce)
Chirurgia
ricostruzione
ginocchio,
osteoarticolare, Cefazolina 2 g ev
di
LCA
sinoviectomia
con artrotomia, artrodesi)
Artroprotesi (anca, ginocchio Cefazolina 2 g ev
Vancomicina 1 g ev
altre protesi)
Fissazione di frattura chiusa
Cefazolina 2 g ev
62
Note
Chirurgia del rachide
Cefazolina 2 g ev
(max 1 g)
63
12. BIBLIOGRAFIA
1- Bernard HR, Cole WR. The prophylaxis of surgical infection: the
effect of prophylactic antimicrobial drugs on the incidence of
infection following potentially contaminated operations. Surgery
1964; 56: 151-7
2- Polk HC Jr, Lopez-Mayor JF. Postoperative wound infection: a
prospective study of determinant factors and Prevention. Surgery
1969; 66 (1): 97-103
3- Stone HH. Basic principles in the use of prophylactic antibiotics. J
Antimicrob Chemother. 1984; 14 Suppl B: 33-7
4- Meijer WS, Schmitz PI, Jeekel J. Meta-analysis of randomized,
controlled clinical trials of antibiotic prophylaxis in biliary tract
surgery. Br J Surg. 1990; 77 (3): 283-90
5- Roach A, Kernodle D, Kaiser A. Selecting cost-effective
antimicrobial prophylaxis in surgery: are we getting what we pay
for? DICP Ann Pharmacother. 1990; 24: 183-5
6- Aznar R, Mateu M, Miró JM, Gatell JM, Gimferrer JM, Aznar E,
Mallolas J, Soriano E, Sanchez-Lloret J. Antibiotic prophylaxis in
non-cardiac thoracic surgery: cefazolin versus placebo. Eur J
Cardiothorac Surg. 1991; 5 (10): 515-8
7- McGowan JE Jr. Cost and benefit of perioperative antimicrobial
prophylaxis: methods for economic analysis. Rev Infect Dis. 1991;
13 Suppl 10: S879-89
8- Davey P, Malek M, Thomas P. Measuring the cost-effectiveness
of antibiotic prophylaxis in surgery. Am J Surg. 1992; 164 (4A
Suppl): 39S-43S
9- Page CP, Bohnen JMA, Fletcher JR, et al. Antimicrobial
prophylaxis for surgical wounds: guidelines for clinical care. Arch
Surg. 1993; 128: 79-88
10- Dellinger EP, Gross PA, Barrett TL, Krause PJ, Martone WJ,
McGowan JE Jr, Sweet RL, Wenzel RP. Quality standard for
antimicrobial prophylaxis in surgical procedures. Infections
Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 1994; 18 (3): 422-7
11- Lizán-García M, García-Caballero J, Asensio-Vegas A. Risk
factors for surgical-wound infection in general surgery: a
prospective study. Infect Control Hosp Epidemiol. 1997; 18 (5):
310-5
12- Sasse A, Mertens R, Sion JP, Ronveaux O, Bossens M, De Mol
P, Goossens H, Lauwers S, Potvliege C, Van Landuyt H, Verbist
L, Verschraegen G. Surgical prophylaxis in Belgian hospitals:
estimate of costs and potential savings. J Antimicrob Chemother.
1998; 41 (2): 267-72
13- Külling D, Sonnenberg A, Fried M, Bauerfeind P. Cost analysis of
antibiotic prophylaxis for PEG. Gastrointest Endosc. 2000; 51 (2):
152-6
64
14- Fernández AH, Monge V, Garcinuño MA. Surgical antibiotic
prophylaxis: effect in postoperative infections Eur J Epidemiol.
2001; 17 (4): 369-74
15- Hartmann B, Sucke J, Brammen D, Jost A, Eicher A, Röhrig R,
Junger A. Impact of inadequate surgical antibiotic prophylaxis on
perioperative outcome and length of stay on ICU in general and
trauma surgery. Analysis using automated data collection. Int J
Antimicrob Agents. 2005; 25 (3): 231-6
16- Silber JH, Rosenbaum PR, Trudeau ME, Chen W, Zhang X,
Lorch SA, Kelz RR, Mosher RE, Even-Shoshan O. Preoperative
antibiotics and mortality in the elderly. Ann Surg. 2005; 242 (1):
107-14
17- Manniën J, van Kasteren ME, Nagelkerke NJ, Gyssens IC,
Kullberg BJ, Wille JC, de Boer AS. Effect of optimized antibiotic
prophylaxis on the incidence of surgical site infection. Infect
Control Hosp Epidemiol. 2006; 27 (12): 1340-6
18- Agenzia Regionale della Sanità Regione autonoma Friuli-Venezia
Giulia. Linee guida per la profilassi antibiotica in chirurgia.
(http://www.sanita.fvg.it/ars/specializza/progetti/allegati/tot-00.pdf)
19- Regione Emilia-Romagna - Agenzia sanitaria regionale. Linee
guida per la chemioprofilassi antibiotica in chirurgia. Indagine
conoscitiva
in
Emilia-Romagna.
Dossier
72
2002.
(http://asr.regione.emiliaromagna.it/wcm/asr/collana_dossier/doss072/link/doss72.pdf)
20- American Society of Health-System Pharmacists. ASHP
Therapeutic Guidelines on Antimicrobial Prophylaxis in Surgery,
AM J Health-Syst-Pharm. 1999; 56: 1839-88
21- Mangram AJ, Horan TC, Pearson ML, Silver LC, Jarvis WR
Guideline for prevention of surgical site infection, 1999. Centers
for Disease Control and Prevention (CDC) Hospital Infection
Control Practices Advisory Committee. Am J Infect Control. 1999;
27: 97–132
22- SIGN – Scottish Intercollegiate Guidelines Network. Antibiotic
prophylaxis in surgery - A national clinical guideline. SIGN
publication
n.
104,
Edinburgh,
July
2008)
(http://www.sign.ac.uk/pdf/sign104.pdf)
23- Sistema Nazionale Linee Guida. Documento 17 – Antibioticoprofilassi
perioperatoria
nell’adulto.
Settembre
2008
(http://www.snlgiss.it/cms/files/LG_Antibioticoprofilassi_Unico_2008.pdf)
24- Bratzler DW, Houck PM, Surgical Infection Prevention Guidelines
Writers Workgroup et al. Antimicrobial prophylaxis for surgery: an
advisory statement from the National Surgical Infection
Prevention Project. Clin Infect Dis. 2004; 38 (12): 1706–15
25- No authors listed. Antimicrobial prophylaxis for surgery, Treat
Guidel Med Lett. 2006; 4 (52): 83-8
65
26- ICSI - Institute for Clinical Systems Improvement. Health Care
Protocol: Prevention of Surgical Site Infection. 2006
(http://www.icsi.org/surgical_site_infection__protocol_/surgical_sit
e_infection_prevention__protocol___pdf_.html)
27- Horan TC, Gaynes RP, Martone WJ, Jarvis WR, Emori TG. CDC
definitions of nosocomial surgical site infections, 1992: a
modification of CDC definitions of surgical wound infections.
Infect Control Hosp Epidemiol. 1992; 13 (10): 606-8
28- Green JW, Wenzel RP. Postoperative wound infection: a
controlled study of the increased duration of hospital stay and
direct cost of hospitalization. Ann Surg. 1977;185 (3): 264-8
29- Taylor GJ, Mikell FL, Moses HW, Dove JT, Katholi RE, Malik SA,
Markwell SJ, Korsmeyer C, Schneider JA, Wellons HA.
Determinants of hospital charges for coronary artery bypass
surgery: the economic consequences of postoperative
complications. Am J Cardiol. 1990; 65 (5): 309-13
30- Wenzel RP. Preoperative antibiotic prophylaxis. N Engl J Med
1992; 326 (5): 337-9
31- Kirkland KB, Briggs JP, Trivette SL, Wilkinson WE, Sexton DJ
The impact of surgical site infections in the 1990s: attributable
mortality, excess length of hospitalization, and extra costs. Infect
32- Hollenbeak CS, Murphy D, Dunagan WC, Fraser VJ. Nonrandom
selection and the attributable cost of surgical-site infections. Infect
33- Whitehouse JD, Friedman ND, Kirkland KB, Richardson WJ,
Sexton DJ. The impact of surgical site-infections following
orthopedic surgery at a community hospital and a university
hospital: adverse quality of life, excess length of stay, and extra
cost. Infect Control Hosp Epidemiol. 2002; 23 (4): 183-9
34- Fry DE. The economic costs of surgical site infection. Surg Infect
(Larchmt). 2002; 3 Suppl 1: S37-43
35- Perencevich EN, Sands KE, Cosgrove SE, Guadagnoli E, Meara
E, Platt R. Health and economic impact of surgical site infections
diagnosed after hospital discharge. Emerg Infect Dis. 2003; 9 (2):
196-203
36- McGarry SA, Engemann JJ, Schmader K, Sexton DJ, Kaye KS.
Surgical-site infection due to Staphylococcus aureus among
elderly patients: mortality, duration of hospitalization, and cost.
37- Leaper DJ, van Goor H, Reilly J, Petrosillo N, Geiss HK, Torres
AJ, Berger A. Surgical site infection - a European perspective of
incidence and economic burden. Int Wound J. 2004; 1 (4): 247-73
38- Urban JA. Cost analysis of surgical site infections. Surg Infect
(Larchmt). 2006; 7 Suppl 1: S19-22
66
39- Penel N, Lefebvre JL, Cazin JL, Clisant S, Neu JC, Dervaux B,
Yazdanpanah Y. Additional direct medical costs associated with
nosocomial infections after head and neck cancer surgery: a
hospital-perspective analysis. Int J Oral Maxillofac Surg. 2008; 37
(2): 135-9
40- Fukatsu K, Saito H, Matsuda T, Ikeda S, Furukawa S, Muto T.
Influences of type and duration of antimicrobial prophylaxis on an
outbreak of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and on
the incidence of wound infection. Arch Surg. 1997; 132 (12):
1320-5
41- Shlaes DM, Gerding DN, John JF Jr, Craig WA, Bornstein DL,
Duncan RA, Eckman MR, Farrer WE, Greene WH, Lorian V,
Levy S, McGowan JE Jr, Paul SM, Ruskin J, Tenover FC,
Watanakunakorn C. Society for Healthcare Epidemiology of
America and Infectious Diseases Society of America Joint
Committee on the Prevention of Antimicrobial Resistance:
guidelines for the prevention of antimicrobial resistance in
hospitals. Clin Infect Dis. 1997; 25 (3): 584-99
42- Terpstra S, Noordhoek GT, Voesten HG, Hendriks B, Degener
JE. Rapid emergence of resistant coagulase-negative
staphylococci on the skin after antibiotic prophylaxis. J Hosp
Infect. 1999; 43 (3): 195-202
43- Harbarth S, Samore MH, Lichtenberg D, Carmeli Y. Prolonged
antibiotic prophylaxis after cardiovascular surgery and its effect
on surgical site infections and antimicrobial resistance.
Circulation. 2000; 101 (25): 2916-21
44- Tacconelli E, De Angelis G, Cataldo MA, Pozzi E, Cauda R. Does
antibiotic exposure increase the risk of methicillin-resistant
Staphylococcus aureus (MRSA) isolation? A systematic review
and meta-analysis. J Antimicrob Chemother. 2008; 61 (1): 26-38
45- American Society for Microbiology. Report of the ASM Task Force
on antimicrobial resistance. Washington: The Society, 1994
46- Gold HS, Moellering RC Jr. Antimicrobial-drug resistance. N Engl
J Med. 1996; 335 (19): 1445-53
47- National Nosocomial Infections Surveillance System. National
Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data
summary from January 1992 through June 2004, issued October
2004. Am J Infect Control. 2004; 32 (8): 470-85
48- Privitera G, Scarpellini P, Ortisi G, Nicastro G, Nicolin R, de Lalla
F. Prospective study of Clostridium difficile intestinal colonisation
and disease following single dose antibiotic prophylaxis in
surgery. Antimicrob Agents Chemother. 1991; 35 (1): 208-10
49- Kreisel D, Savel TG, Silver AL, Cunningham JD. Surgical
antibiotic prophylaxis and Clostridium difficile toxin positivity. Arch
Surg. 1995; 130 (9): 989-93
67
50- Spencer RC. The role of antimicrobial agents in the aetiology of
Clostridum difficile-associated disease. J Antimicrob Chemother.
1998; 41 Suppl. C: 21-7
51- Harbarth S, Samore MH, Carmeli Y. Antibiotic prophylaxis and
the risk of Clostridium difficile-associated diarrhoea. J Hosp
Infect. 2001; 48 (2): 93-7
52- Wiström J, Norrby SR, Myhre EB, Eriksson S, Granström G,
Lagergren L, Englund G, Nord CE, Svenungsson B. Frequency of
antibiotic-associated diarrhoea in 2462 antibiotic-treated
hospitalized patients: a prospective study. J Antimicrob
Chemother. 2001; 47 (1): 43-50
53- Mukhtar S, Shaker H, Basarab A, Byrne JP. Prophylactic
antibiotics and Clostridium difficile infection. J Hosp Infect. 2006;
64 (1): 93-4
54- Carignan A, Allard C, Pépin J, Cossette B, Nault V, Valiquette L.
Risk of Clostridium difficile infection after perioperative
antibacterial prophylaxis before and during an outbreak of
infection due to a hypervirulent strain. Clin Infect Dis. 2008; 46
(12): 1838-43
55- Cruse PJ, Foord R. A five year prospective study of 23,649
surgical wounds. Arch. Surg. 1973; 107 (2): 206–10
56- Cruse PJ, Foord R. The epidemiology of wound infection: a 10year prospective study of 62,939 wounds. Surg Clin North Am.
1980; 60 (1): 27-40
57- Haley RW, Culver DH, White JW, Morgan WM, Emori TG, Munn
VP, Hooton TM. The efficacy of infection surveillance and control
programs in preventing nosocomial infections in US hospitals. Am
J Epidemiol. 1985; 121 (2): 182–205
58- Haley RW, Culver DH, Morgan WM, White JW, Emori TG, Hooton
TM. Identifying patients at high risk of surgical wound infection. A
simple multivariate index of patient susceptibility and wound
contamination. Am J Epidemiol. 1985; 121 (2): 206-15
59- Culver DH, Horan TC, Gaynes RP, Martone WJ, Jarvis WR,
Emori TG, Banerjee SN, Edwards JR, Tolson JS, Henderson TS,
et al. Surgical wound infection rates by wound class, operative
procedure and patient risk index. National Nosocomial Infections
Surveillance System. Am J Med. 1991; 91 (3B): 152S-157S
60- Garibaldi RA, Cushing D, Lerer T. Risk factors for postoperative
infection. Am J Med. 1991; 91 (3B): 158S-163S
61- Society for Hospital Epidemiology of America, Robert J. Sherertz,
Richard A. Garibaldi, Randy D. Marosok, C. Glen Mayhall,
William E. Scheckler Association for Practitioners in Infection
Control, Inc., Rosemary Berg, Centers for Disease Control,
Robert P. Gaynes, William R. Jarvis, William J. Martone, Surgical
Infection Society, James T. Lee Jr. Consensus paper on the
68
surveillance of surgical wound infections. Am J Infect Control.
1992; 20 (5): 263-70
62- Leaper DJ. Risk factors for surgical infection. J Hosp Infect. 1995;
30 Suppl: 127-39
63- Perl TM, Roy MC. Postoperative wound infections: risk factors
and role of Staphylococcus aureus nasal carriage. J. Chemother.
1995; 7 Suppl 3: 29–35
64- de Boer AS, Mintjes-de Groot AJ, Severijnen AJ, van den Berg
JM, van Pelt W. Risk assessment for surgical-site infections in
orthopedic patients. Infect Control Hosp Epidemiol. 1999; 20 (6):
402-7
65- Geubbels EL, Mintjes-de Groot AJ, van den Berg JM, de Boer
AS. An operating surveillance system of surgical-site infections in
The Netherlands: results of the PREZIES national surveillance
network. Preventie van Ziekenhuisinfecties door Surveillance
66- Platell C, Hall JC. The prevention of wound infection in patients
undergoing colorectal surgery. J. Hosp. Infect. 2001; 49 (4): 233–
8
67- Scott JD, Forrest A, Feuerstein S, Fitzpatrick P, Schentag JJ.
Factors associated with postoperative infection. Infect Control
Hosp Epidemiol. 2001; 22 (6): 347-51
68- Raja'a YA, Salam AR, Salih YA, Salman MS, Al-Baseer LS, AlKirshi NA, Al-Jalal NS. Rate and risk factors of surgical site
infections with antibiotic prophylaxis. Saudi Med J. 2002; 23 (6):
672-4
69- Vazquez-Aragon P, Lizan-Garcia M, Cascales-Sanchez P, VillarCanovas MT, Garcia-Olmo D. Nosocomial infection and related
risk factors in a general surgery service: a prospective study. J
Infect. 2003; 46 (1):17-22
70- Kasatpibal N, Jamulitrat S, Chongsuvivatwong V. Standardized
incidence rates of surgical site infection: a multicenter study in
Thailand. Am J Infect Control. 2005; 33 (10): 587-94
71- Fiorio M, Marvaso A, Viganò F, Marchetti F. Incidence of surgical
site infections in general surgery in Italy. Infection. 2006; 34 (6):
310-4
72- Cheadle WG. Risk factors for surgical site infection. Surg Infect
(Larchmt). 2006; 7 Suppl 1: S7-11
73- Neumayer L, Hosokawa P, Itani K, El-Tamer M, Henderson WG,
Khuri SF. Multivariable predictors of postoperative surgical site
infection after general and vascular surgery: results from the
patient safety in surgery study. J Am Coll Surg. 2007; 204 (6):
1178-87
74- American Society of Anesthesiologists. New classification of
physical status. Anesthesiology. 1963; 24: 111
69
75- Woodfield JC, Beshay NM, Pettigrew RA, Plank LD, van Rij AM.
American Society of Anesthesiologists classification of physical
status as a predictor of wound infection. ANZ J Surg. 2007; 77
(9): 738-41
76- Burke JF. The effective period of preventive antibiotic action in
experimental incisions and dermal lesions. Surgery. 1961; 50:
161-8
77- Stone HH, Hooper CA, Kolb LD, Geheber CE, Dawkins EJ.
Antibiotic prophylaxis in gastric, biliary and colonic surgery. Ann
Surg. 1976; 184 (4): 443-52
78- Galandiuk S, Polk HC Jr, Jagelman DG, Fazio VW. Re-emphasis
of priorities in surgical antibiotic prophylaxis. Surg Gynecol
Obstet. 1989; 169 (3): 219-22
79- Classen DC, Evans RS, Pestotnik SL, Horn SD, Menlove RL,
Burke JP. The timing of prophylactic administration of antibiotics
and the risk of surgical- wound infection. N Engl J Med. 1992; 326
(5): 281-6
80- Wong-Beringer A, Corelli RL, Schrock TR, Guglielmo BJ.
Influence of timing of antibiotic administration on tissue
concentrations during surgery. Am J Surg. 1995; 169 (4): 379-81
81- Kernodle DS, Kaiser AB. Surgical and trauma-related infections.
In: Mandell GL, Bennet JE, Dolin R, eds. Principles and Practice
of Infectious Diseases, 4th edn. New York: Churchill Livingstone,
1995; 2742–55
82- Woods RK, Dellinger EP. Current guidelines for antibiotic
prophylaxis of surgical wounds. Am Fam Physician. 1998; 57
(11): 2731-40
83- Gyssens IC. Preventing postoperative infections: current
treatment recommendations. Drugs. 1999; 57 (2): 175-85
84- American Academy of Orthopaedics (AAOS). Advisory
Statement. Recommendations for the use of intravenous
antibiotic prophylaxis in primary total joint arthroplasty. 2004.
(http://www.aaos.org/about/papers/advistmt/1027.asp)
85- Bratzler DW, Houck PM, Richards C, Steele L, Dellinger EP, Fry
DE, Wright C, Ma A, Carr K, Red L. Use of antimicrobial
prophylaxis for major surgery: baseline results from the National
Surgical Infection Prevention Project. Arch Surg. 2005; 140 (2):
174-82
86- Gilbert DN, Moellering RC, Eliopoulos GM, Sande MA. The
Sanford Guide to Antimicrobial Therapy. 37th ed. Hyde Park, VT;
2007
87- van Kasteren ME, Manniën J, Ott A, Kullberg BJ, de Boer AS,
Gyssens IC. Antibiotic prophylaxis and the risk of surgical site
infections following total hip arthroplasty: timely administration is
the most important factor. Clin Infect Dis. 2007; 44 (7): 921-7
70
88- Berghella V, Baxter JK, Chauhan SP. Evidence-based surgery for
cesarean delivery. Am J Obstet Gynecol. 2005; 193 (5): 1607-17
89- Goldmann DA, Hopkins CC, Karchmer AW, Abel RM, McEnany
MT, Akins C, Buckley MJ, Moellering RC Jr. Cephalothin
prophylaxis in cardiac valve surgery. A prospective, double-blind
comparison of two-day and six-day regimens. J Thorac
Cardiovasc Surg. 1977; 73 (3): 470–9
90- Stone HH, Haney BB, Kolb LD, Geheber CE, Hooper CA.
Prophylactic and preventive antibiotic therapy: timing, duration
and economics. Ann Surg. 1979; 189 (6): 691-9
91- Pollard JP, Hughes SP, Scott JE, Evans MJ, Benson MK.
Antibiotic prophylaxis in total hip replacement. Br Med J.. 1979; 1
(6165): 707-9
92- Scher KS, Wroczynski AF, Jones CW. Duration of antibiotic
prophylaxis. An experimental study. Am J Surg. 1986; 151 (2):
209-12
93- DiPiro JT, Cheung RP, Bowden TA Jr, Mansberger JA. Single
dose systemic antibiotic prophylaxis of surgical wound infections.
Am J Surg. 1986; 152 (5): 552-9
94- Rowe-Jones DC, Peel AL, Kingston RD, Shaw JF, Teasdale C,
Cole DS. Single dose cefotaxime plus metronidazole versus three
dose cefuroxime plus metronidazole as prophylaxis against
wound infection in colorectal surgery: multicentre prospective
randomised study. BMJ. 1990; 300 (6716): 18-22
95- Aberg C, Thore M. Single versus triple dose antimicrobial
prophylaxis in elective abdominal surgery and the impact on
bacterial ecology. J Hosp Infect. 1991; 18 (2): 149-54
96- Shapiro M. Prophylaxis in otolaryngologic surgery and
neurosurgery: a critical review. Rev Infect Dis. 1991; 13 Suppl 10:
S858-68
97- Boxma H, Broekhuizen T, Patka P, Oosting H. Randomised
controlled trial of single-dose antibiotic prophylaxis in surgical
treatment of closed fractures: the Dutch Trauma Trial. Lancet.
1996; 347 (9009): 1133-7
98- Scher KS. Studies on the duration of antibiotic administration for
surgical prophylaxis. Am Surg. 1997; 63 (1): 59-62
99- Niederhäuser U, Vogt M, Vogt P, Genoni M, Künzli A, Turina MI.
Cardiac surgery in a high-risk group of patients: is prolonged
postoperative antibiotic prophylaxis effective? J Thorac
Cardiovasc Surg. 1997; 114 (2): 162-8
100Martin C, Pourriat JL. Quality of perioperative antibiotic
administration by French anaesthetists. J Hosp Infect. 1998; 40
(1): 47-53
101Glenny AM, Song F. Antimicrobial prophylaxis in colorectal
surgery: a systematic review of randomized controlled trials.
Health Technol Assess. 1998; 2 (7): 1-110
71
102McDonald M, Grabsch E, Marshall C, Forbes A. Singleversus multiple-dose antimicrobial prophylaxis for major surgery:
a systematic review. Aust N Z J Surg. 1998; 68 (6): 388-96
103Namias N, Harvill S, Ball S, McKenney MG, Salomone JP,
Civetta JM. Cost and morbidity associated with antibiotic
prophylaxis in the ICU. J Am Coll Surg. 1999; 188 (3): 225-30
104Coskun H, Erisen L, Basut O. Factors affecting wound
infection rates in head and neck surgery. Otolaryngol Head Neck
Surg. 2000; 123 (3): 328-33
105Yousuf M, Hussain M. Need and duration of antibiotic
therapy in clean and clean contaminated operations. J Pak Med
Assoc. 2002; 52 (7): 284-7
106Velmahos GC, Toutouzas KG, Sarkisyan G, Chan LS, Jindal
A, Karaiskakis M, Katkhouda N, Berne TV, Demetriades D.
Severe trauma is not an excuse for prolonged antibiotic
prophylaxis. Arch Surg. 2002; 137 (5): 537-41
107Mui LM, Ng CS, Wong SK, Lam YH, Fung TM, Fok KL,
Chung SS, Ng EK. Optimum duration of prophylactic antibiotics in
acute non-perforated appendicitis. ANZ J Surg. 2005; 75 (6): 4258
108Su HY, Ding DC, Chen DC, Lu MF, Liu JY, Chang FY.
Prospective randomized comparison of single-dose versus 1-day
cefazolin for prophylaxis in gynecologic surgery. Acta Obstet
Gynecol Scand. 2005; 84 (4): 384-9
109Takahashi S, Takeyama K, Miyamoto S, Tanuma Y, Takagi
Y.
Surgical
antimicrobial
prophylaxis
in
transurethral
ureterolithotripsy. J Infect Chemother. 2005; 11 (5): 239-43
110Fonseca SN, Kunzle SR, Junqueira MJ, Nascimento RT, de
Andrade JI, Levin AS. Implementing 1-dose antibiotic prophylaxis
for prevention of surgical site infection. Arch Surg. 2006; 141 (11):
1109-13
111Avery CM, Ameerally P, Castling B, Swann RA. Infection of
surgical wounds in the maxillofacial region and free flap donor
sites with methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Br J Oral
Maxillofac Surg. 2006; 44 (3): 217-21
112Andrews PJ, East CA, Jayaraj SM, Badia L, Panagamuwa C,
Harding L. Prophylactic vs postoperative antibiotic use in complex
septorhinoplasty surgery: a prospective, randomized, single-blind
trial comparing efficacy. Arch Facial Plast Surg. 2006; 8 (2): 84-7
113Liu SA, Tung KC, Shiao JY, Chiu YT. Preliminary report of
associated factors in wound infection after major head and neck
neoplasm operations--does the duration of prophylactic antibiotic
matter? Laryngol Otol. 2008; 122 (4): 403-8
114Nix DE, DiPiro JT, Bowden TA Jr, Vallner JJ. Cephalosporins
for surgical prophylaxis: computer projections of intraoperative
availability. South Med J. 1985; 78 (8): 962-6
72
115DiPiro JT, Vallner JJ, Bowden TA Jr, Clark BA, Sisley JF
Intraoperative serum and tissue activity of cefazolin and cefoxitin.
Arch Surg. 1985; 120 (7): 829-32
116Levy M, Egersegi P, Strong A, Tessoro A, Spino M,
Bannatyne R, Fear D, Posnick JC, Koren G. Pharmacokinetic
analysis of cloxacillin loss in children undergoing major surgery
with massive bleeding Antimicrob Agents Chemother. 1990; 34
(6): 1150-3
117Wollinsky KH, Büchele M, Oethinger M, Kluger P, Mehrkens
HH, Marre R, Puhl W. Influence of hemodilution on cefuroxime
levels and bacterial contamination of intra- and postoperative
processed wound blood during hip replacement. Beitr
Infusionsther Transfusionsmed. 1996; 33: 191-5
118Swoboda SM, Merz C, Kostuik J, Trentler B, Lipsett PA Does
intraoperative blood loss affect antibiotic serum and tissue
concentrations? Arch Surg. 1996; 131 (11): 1165-71
119[No authors listed]. Antibiotic prophylaxis in surgery:
summary of a Swedish-Norwegian Consensus Conference.
Scand J Infect Dis. 1998; 30 (6): 547-57
120Ohge H, Takesue Y, Yokoyama T, Murakami Y, Hiyama E,
Yokoyama Y, Kanehiro T, Itaha H, Matsuura Y. An additional
dose of cefazolin for intraoperative prophylaxis. Surg Today.
1999; 29 (12): 1233-6
121Zanetti G, Giardina R, Platt R. Intraoperative redosing of
cefazolin and risk for surgical site infection in cardiac surgery.
Emerg Infect Dis. 2001; 7 (5): 828-31
122Dehne MG, Mühling J, Sablotzki A, Nopens H, Hempelmann
G. Pharmacokinetics of antibiotic prophylaxis in major orthopedic
surgery and blood-saving techniques. Orthopedics. 2001; 24 (7):
665-9
123Gould FK, Elliott TS, Foweraker J, Fulford M, Perry JD,
Roberts GJ, Sandoe JA, Watkin RW, Working Party of the British
Society for Antimicrobial Chemotherapy. Guidelines for the
prevention of endocarditis: report of the Working Party of the
British Society for Antimicrobial Chemotherapy. J Antimicrobial
Chemother. 2006; 57 (6): 1035-42
124Wilson W, Taubert KA, Gewitz M, Lockhart PB, Baddour LM,
Levison M, Bolger A, Cabell CH, Takahashi M, Baltimore RS,
Newburger JW, Strom BL, Tani LY, Gerber M, Bonow RO,
Pallasch T, Shulman ST, Rowley AH, Burns JC, Ferrieri P,
Gardner T, Goff D, Durack DT; American Heart Association
Rheumatic Fever, Endocarditis, and
Kawasaki Disease
Committee;
American
Heart
Association
Council
on
Cardiovascular
Disease in the Young; American Heart
Association Council on Clinical Cardiology; American Heart
Association Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia;
73
Quality of Care and Outcomes Research Interdisciplinary Working
Group Prevention of infective endocarditis. Prevention of infective
endocarditis: guidelines from the American Heart Association: a
guideline from the American Heart Association Rheumatic Fever,
Endocarditis, and Kawasaki Disease Committee, Council on
Cardiovascular Disease in the Young, and the Council on Clinical
Cardiology, Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia,
and the Quality of Care and Outcomes Research Interdisciplinary
Working Group Circulation 2007; 116 (15): 1736-54
125Polk HC Jr, Trachtenberg L, Finn MP. Antibiotic activity in
surgical incisions. The basis of prophylaxis in selected operations.
JAMA. 1980; 244 (12): 1353-4
126Waddell TK, Rotstein OD. Antimicrobial prophylaxis in
surgery. Committee on Antimicrobial Agents, Canadian Infectious
Disease Society. CMAJ. 1994; 151 (7): 925-31
127Martin C. Antimicrobial prophylaxis in surgery: general
concepts and clinical guidelines. French Study Group on
Antimicrobial Prophylaxis in Surgery, French Society of
Anesthesia and Intensive Care. Infect Control Hosp Epidemiol.
1994; 15 (7): 463-71
128Geroulanos S, Marathias K, Kriaras J, Kadas B.
Cephalosporins in surgical prophylaxis. J Chemother. 2001; 13
Spec No 1 (1): 23-6
129Bolon MK, Morlote M, Weber SG, Koplan B, Carmeli Y,
Wright SB. Glycopeptides are no more effective than beta-lactam
agents for prevention of surgical site infection after cardiac
surgery: a meta-analysis. Clin Infect Dis. 2004; 38 (10): 1357-63
130[No authors listed]. National Nosocomial Infections
Surveillance (NNIS) report, data summary from October 1986April 1997, issued May 1997. A report from the NNIS System. Am
J Infect Control. 1997; 25 (6): 477-87
131Argentero P.A, Campobasso G.A, Farina E.C, Vietti A.M.
Linee guida per la prevenzione delle infezioni del sito chirurgico,
1999. Traduzione italiana di “Guideline for Prevention of Surgical
Site Infection” Center for Disease Control, Atlanta, U.S.A., 1999.
Regione
Piemonte.
Assessorato
Sanità.
www.regione.piemonte.it/sanita/sanpub/dwd/infezioni.pdf
132Davis DA, Taylor-Vaisey A. Translating guidelines into
practice. A systematic review of theoretic concepts, practical
experience and research evidence in the adoption of clinical
practice guidelines. CMAJ. 1997; 157 (4): 408-16
133Cabana MD, Rand CS, Powe NR, Wu AW, Wilson MH,
Abboud PA, Rubin HR. Why don't physicians follow clinical
practice guidelines? A framework for improvement. JAMA. 1999;
282 (15): 1458-65
74
134Burke JP. Maximizing appropriate antibiotic prophylaxis for
surgical patients: an update from LDS Hospital, Salt Lake City.
Clin Infect Dis. 2001; 33 Suppl 2: S78–83
135Brusaferro S, Rinaldi O, Pea F, Faruzzo A, Barbone F.
Protocol implementation in hospital infection control practice: an
Italian experience of preoperative antibiotic prophylaxis. J Hosp
Infect. 2001; 47 (4): 288-93
136Gross PA, Pujat D. Implementing practice guidelines for
appropriate antimicrobial usage: a systematic review. Med Care.
2001; 39 (8 Suppl 2): II55-69
137Burnett KM, Scott MG, Kearney PM, Humphreys WG,
McMillen RM. The identification of barriers preventing the
successful implementation of a surgical prophylaxis protocol.
Pharm World Sci. 2002; 24 (5): 182-7
138Alerany C, Campany D, Monterde J, Semeraro C. Impact of
local guidelines and an integrated dispensing system on antibiotic
prophylaxis quality in a surgical centre. J Hosp Infect. 2005; 60
(2): 111-7
139Doebbeling BN, Pfaller MA, Kuhns KR, Massanari RM,
Behrendt DM, Wenzel RP. Cardiovascular surgery prophylaxis. A
randomized, controlled comparison of cefazolin and cefuroxime. J
Thorac Cardiovasc Surg. 1990; 99 (6): 981-9
140Townsend TR, Reitz BA, Bilker WB, Bartlett JG. Clinical trial
of cefamandole, cefazolin, and cefuroxime for antibiotic
prophylaxis in cardiac operations. J Thorac Cardiovasc Surg.
1993; 106 (4): 664-70
141Curtis JJ, Boley TM, Walls JT, Hamory B, Schmaltz RA.
Randomized, prospective comparison of first- and secondgeneration cephalosporins as infection prophylaxis for cardiac
surgery. Am J Surg. 1993; 166 (6): 734-7
142Saginur R, Croteau D, Bergeron MG. Comparative efficicy of
teicoplanin and cefazolin for cardiac operation prophylaxis in
3027 patients. The ESPRIT Group. J Thorac Cardiovasc Surg.
2000; 120 (6): 1120-30
143Kriaras I, Michalopoulos A, Turina M, Geroulanos S,
Evolution of antimicrobial prophylaxis in cardiovascular surgery,
Eur J Cardiothorac Surg. 2000; 18 (4): 440-6
144Bucknell SJ, Mohajeri M, Low J, McDonald M, Hill DG.
Single- versus multiple-dose antibiotics prophylaxis for cardiac
surgery. Aust N Z J Surg. 2000; 70 (6): 409-11
145Finkelstein R, Rabino G, Mashiah T, Bar-El Y, Adler Z,
Kertzman V, Cohen O, Milo S. Vancomycin versus cefazolin
prophylaxis for cardiac surgery in the setting of a high prevalence
of methicillin-resistant staphyloccal infections. J Thorac
Cardiovasc Surg. 2002; 123 (2): 326-32
75
146Bolon MK, Morlote M, Weber SG, Koplan B, Carmeli Y,
Wright SB. Glycopeptides are no more effective than beta-lactam
agents for prevention of surgical site infection after cardiac
surgery: a meta-analysis. Clin Infect Dis. 2004; 38 (10): 1357-63
147Miglioli PA, Merlo F, Calabrò GB, Allerberger F, Fille M.
Cefazolin concentrations in serum during cardiopulmonary
bypass surgery. Drugs Exp Clin Res. 2005; 31 (1): 29-33
148Dohmen PM. Influence of skin flora and preventive measures
on surgical site infection during cardiac surgery. Surg Infect
(Larchmt). 2006; 7 Suppl 1: S13-7
149Garey KW, Dao T, Chen H, Amrutkar P, Kumar N, Reiter M,
Gentry LO. Timing of vancomycin prophylaxis for cardiac surgery
patients and the risk of surgical site infections. J Antimicrob
Chemother. 2006; 58 (3): 645-50
150Edwards FH, Engelman RM, Houck P, Shahian DM, Bridges
CR, Society of Thoracic Surgeons. The Society of Thoracic
Surgeons Practice Guideline Series: Antibiotic Prophylaxis in
Cardiac Surgery, Part I: Duration. Ann Thorac Surg. 2006; 81 (1):
397-404
151Engelman R, Shahian D, Shemin R, Guy TS, Bratzler D,
Edwards F, Jacobs M, Fernando H, Bridges C; Workforce on
Evidence-Based Medicine, Society of Thoracic Surgeons. The
Society of Thoracic Surgeons practice guideline series: Antibiotic
prophylaxis in cardiac surgery, part II: Antibiotic choice. Ann
Thorac Surg. 2007; 83 (4): 1569-76
152Da Costa A, Kirkorian G, Cucherat M, Delahaye F, Chevalier
P, Cerisier A, Isaaz K, Touboul P. Antibiotic prophylaxis for
permanent pacemaker implantation: a meta-analysis. Circulation.
1998; 97 (18): 1796-801
153Bertaglia E, Zerbo F, Zardo S, Barzan D, Zoppo F, Pascotto
P. Antibiotic prophylaxis with a single dose of cefazolin during
pacemaker implantation: incidence of long-term infective
complications. Pacing Clin Electrophysiol. 2006; 29 (1): 29-33
154Sohail MR, Uslan DZ, Khan AH, Friedman PA, Hayes DL,
Wilson WR, Steckelberg JM,Stoner SM, Baddour LM. Risk factor
analysis of permanent pacemaker infection. Clin Infect Dis. 2007;
45 (2): 166-73
155Klug D, Balde M, Pavin D, Hidden-Lucet F, Clementy J,
Sadoul N, Rey JL, Lande G, Lazarus A, Victor J, Barnay C,
Grandbastien B, Kacet S; PEOPLE Study Group. Risk factors
related to infections of implanted pacemakers and cardioverterdefibrillators: results of a large prospective study. Circulation.
2007; 116 (12): 1349-55
156Eagle KA, Guyton RA, Davidoff R, Edwards FH, Ewy GA,
Gardner TJ, Hart JC, Herrmann HC, Hillis LD, Hutter AM Jr, Lytle
BW, Marlow RA, Nugent WC, Orszulak TA, Antman EM, Smith
76
SC Jr, Alpert JS, Anderson JL, Faxon DP, Fuster V, Gibbons RJ,
Gregoratos G, Halperin JL, Hiratzka LF, Hunt SA, Jacobs AK,
Ornato JP; American College of Cardiology; American Heart
Association Task Force on Practice Guidelines; American Society
for Thoracic Surgery and the Society of Thoracic
SurgeonsACC/AHA 2004 guideline update for coronary artery
bypass graft surgery: summary article: a report of the American
College of Cardiology/American Heart Association Task Force on
Practice Guidelines (Committee to Update the 1999 Guidelines
for Coronary Artery Bypass Graft Surgery). Circulation. 2004; 110
(9): 1168-76
157Pezzella AT, Adebonojo SA, Hooker SG, Mabogunje OA,
Conlan AA. Complications of general thoracic surgery. Curr Probl
Surg. 2000; 37 (11): 733-858
158Kaiser AB, Clayson KR, Mulherin JL Jr, Roach AC, Allen TR,
Edwards WH, Dale WA. Antibiotic prophylaxis in vascular
surgery. Ann Surg. 1978; 188 (3): 283-9
159Pitt HA, Postier RG, MacGowan AW, Frank LW, Surmak AJ,
Sitzman JV, Bouchier-Hayes D. Prophylactic antibiotics in
vascular surgery. Topical, systemic, or both? Ann Surg. 1980;
192 (3): 356-64
160Edwards WH Jr, Kaiser AB, Kernodle DS, Appleby TC,
Edwards WH Sr, Martin RS 3rd, Mulherin JL Jr, Wood CA Jr.
Cefuroxime versus cefazolin as prophylaxis in vascular surgery. J
Vasc Surg. 1992; 15 (1): 35-41
161Edwards WH Jr, Kaiser AB, Tapper S, Edwards WH Sr,
Martin RS 3rd, Mulherin JL Jr, Jenkins JM, Roach AC.
Cefamandole versus cefazolin in vascular surgical wound
infection prophylaxis: cost-effectiveness and risk factors. J Vasc
Surg. 1993; 18 (3): 470-5
162Bandyk DF. Antibiotics-why so many and when should we
use them? Semin Vasc Surg. 2002; 15 (4): 268-74
163Vardakas KZ, Soteriades ES, Chrysanthopoulou SA,
Papagelopoulos PJ, Falagas ME. Perioperative anti-infective
prophylaxis with teicoplanin compared to cephalosporins in
orthopaedic and vascular surgery involving prosthetic material.
Clin Microbiol Infect. 2005; 11 (10): 775-7
164Stewart A, Eyers PS, Earnshaw JJ. Prevention of infection in
arterial reconstruction. Cochrane Database Syst Rev. 2006; 3:
CD003073
165Stewart AH, Eyers PS, Earnshaw JJ. Prevention of infection
in peripheral arterial reconstruction: a systematic review and
meta-analysis. J Vasc Surg. 2007; 46 (1): 148-55
166Società Oftalmologica Italiana. Raccomandazioni clinico
organizzative per la chirurgia della cataratta non in regime di
ricovero ordinario, 2000. (http://www.sedesoi.com/)
77
167The Royal College of Ophthalmologist. Cataract surgery
guidelines 2004. (http://www.rcophth.ac.uk/)
168American Academy of Ophthalmology. Cataract in the Adult
Eye, Preferred Practice Pattern. San Francisco: American
Academy of Ophthalmology, 2006.
(http://one.aao.org/CE/PracticeGuidelines/PPP.aspx)
169Berkelman RL, Holland BW, Anderson RL. Increased
bactericidal activity of dilute preparations of povidone-iodine
solutions. J Clin Microbiol. 1982; 15 (4): 635-9
170Apt L, Isenberg S, Yoshimori R, Paez JH. Chemical
preparation of the eye in ophthalmic surgery. III. Effect of
povidone-iodine on the conjunctiva. Arch Ophthalmol. 1984; 102
(5): 728-9
171Speaker MG, Menikoff JA. Prophylaxis of endophthalmitis
with topical povidone-iodine. Ophthalmology 1991; 98 (12): 17691775
172Bohigian GM. A study of the incidence of culture-positive
endophthalmitis after cataract surgery in an ambulatory care
center. Ophthalmic Surg Lasers. 1999; 30 (4): 295-8
173Ferguson AW, Scott JA, McGavigan J, Elton RA, McLean J,
Schmidt U, Kelkar R, Dhillon B. Comparison of 5% povidoneiodine solution against 1% povidone–iodine solution in
preoperative cataract surgery antisepsis: a prospective
randomised double blind study. Br J Ophthalmol. 2003; 87 (2):
163-7
174Miño de Kaspar H, Chang RT, Singh K, Egbert PR,
Blumenkranz MS, Ta CN. Prospective randomized comparison of
2 different methods of 5% povidone-iodine applications for
anterior segment intraocular surgery. Arch Ophthalmol. 2005; 123
(2): 161-5
175Trinavarat A, Atchaneeyasakul LO, Nopmaneejumruslers C,
Inson K. Reduction of endophthalmitis rate after cataract surgery
with preoperative 5% povidone-iodine. Dermatology. 2006; 212
Suppl 1: 35-40
176Ta CN, Singh K, Egbert PR, de Kaspar HM. Prospective
comparative evaluation of povidone-iodine (10% for 5 minutes
versus 5% for 1 minute) as prophylaxis for ophthalmic surgery. J
Cataract Refract Surg. 2008; 34 (1): 171-2
177Kaufman AH, Baum J. Penicillins and cephalosporins. In:
Zimmerrman TJ, ed, Textbook of Ocular Pharmacology.
Philadelphia, Lippincott- Raven, 1997; 473–91
178AAO-CDC Task Force on Vancomycin Prophylaxis in
Ophthalmic Surgery. The Prophylactic Use of Vancomycin For
Intraocular Surgery - Information Statement. American Academy
of Ophthalmology, 1999.
78
(http://one.aao.org/CE/PracticeGuidelines/ClinicalStatements.asp
x?sid=a3043761-ec14-40a0-bb84-d353240d211e)
179Gordon YJ Vancomycin prophylaxis and emerging
resistance: are ophthalmologists the villains? The heroes? Am J
Ophthalmol. 2001; 131 (3): 371-6
180Wang RC, Lou PL, Ryan EA, Kroll AJ. Antibiotic therapy in
post-operative endophthalmitis. Semin Ophthalmol. 2002; 17 (34): 153-61
181Ciulla TA, Starr MB, Masket S. Bacterial endophthalmitis
prophylaxis for cataract surgery: an evidence-based update.
Ophthalmology. 2002; 109 (1): 13-24
182Libre PE, Della Latta P, Chin NX. Intracameral antibiotic
agents for endophthalmitis prophylaxis: a pharmacokinetic model.
J Cataract Refract Surg. 2003; 29(9): 1791-4
183Benz MS, Scott IU, Flynn HW Jr, Unonius N, Miller D.
Endophthalmitis isolates and antibiotic sensitivities: a 6-year
review of culture-proven cases. Am J Ophthalmology. 2004; 137
(1): 38-42
184Busbee BG. Advances in knowledge and treatment: an
update on endophthalmitis. Curr Opin Ophthalmol. 2004; 15 (3):
232-7
185Tipperman R. Pharmacologic considerations for cataract
surgery. Curr Opin Ophthalmol. 2004; 15 (1): 51-5
186Soriano ES, Nishi M. Endophthalmitis: incidence and
prevention. Curr Opin Ophthalmol. 2005; 16 (1): 65-70
187Wejde G, Samolov B, Seregard S, Koranyi G, Montan PG.
Risk factors for endophthalmitis following cataract surgery: a
retrospective case-control study. J Hosp Infect. 2005; 61 (3): 2516
188Garat M, Moser CL, Alonso-Tarrés C, Martín-Baranera M,
Alberdi A. Intracameral cefazolin to prevent endophthalmitis in
cataract surgery: 3-year retrospective study. J Cataract Refract
Surg. 2005; 31 (11): 2230-4
189Romero P, Méndez I, Salvat M, Fernández J, Almena M.
Intracameral cefazolin as prophylaxis against endophthalmitis in
cataract surgery, J Cataract Refract Surg. 2006; 32 (3): 438-41
190Barry P, Seal DV, Gettinby G, Lees F, Peterson M, Revie
CW; ESCRS Endophthalmitis Study Group. ESCRS study of
prophylaxis of postoperative endophthalmitis after cataract
surgery: Preliminary report of principal results from a European
multicenter study. J Cataract Refract Surg. 2006; 32 (3): 407-10
191Seal DV, Barry P, Gettinby G, Lees F, Peterson M, Revie
CW, Wilhelmus KR; ESCRS Endophthalmitis Study Group.
ESCRS study of prophylaxis of postoperative endophthalmitis
after cataract surgery: Case for a European multicenter study. J
79
192Endophthalmitis Study Group, European Society of Cataract
& Refractive Surgeons. Prophylaxis of
postoperative
endophthalmitis following cataract surgery: results of the ESCRS
multicenter study and identification of risk factors. J Cataract
Refract Surg. 2007; 33 (6): 978-88
193Chang DF, Braga-Mele R, Mamalis N, Masket S, Miller KM,
Nichamin LD, Packard RB, Packer M; ASCRS Cataract Clinical
Committee. Prophylaxis of postoperative endophthalmitis after
cataract surgery: results of the 2007 ASCRS member survey. J
194Murphy CC, Nicholson S, Quah SA, Batterbury M, Neal T,
Kaye SB. Pharmacokinetics of vancomycin following intracameral
bolus injection in patients undergoing phacoemulsification
cataract surgery. Br J Ophthalmol. 2007; 91 (10): 1350-3
195Thoms SS, Musch DC, Soong HK. Postoperative
endophthalmitis associated with sutured versus unsutured clear
corneal cataract incisions. Br J Ophthalmol. 2007; 91 (6): 728-30
196DeCroos FC, Afshari NA. Perioperative antibiotics and antiinflammatory agents in cataract surgery. Curr Opin Ophthalmol.
2008; 19 (1): 22-6
197Miño de Kaspar H, Kreutzer TC, Aguirre-Romo I, Ta CN,
Dudichum J, Bayrhof M, Klauss V, Kampik A. A prospective
randomized study to determine the efficacy of preoperative topical
levofloxacin in reducing conjunctival bacterial flora. Am J
Ophthalmol. 2008; 145 (1): 136-142
198ASL 3 Regione Piemonte. “Protocolli di antibiotico profilassi
in chirurgia O.R.L.” Settembre 2002.
(http://www.pri-asl3to.it/Protocolli/Schede/otorino.pdf)
199David N.F. Fairbanks. Pocket Guide to Antimicrobial Therapy
in Otolaryngology – Head & Neck Surgery. The American
Academy of Otolaryngology - Head and Neck Surgery
Foundation, Inc, 13th Edition, 2007, pp. 68-72.
(http://www.entnet.org/EducationAndResearch/upload/AAO-PGS9-4-2.pdf)
200Becker GD, Parell GJ. Cefazolin prophylaxis in head and
neck cancer surgery. Ann Otol Rhinol Laryngol. 1979; 88 (2 Pt 1):
183-6
201Righi M, Manfredi R, Farneti G, Pasquini E, Cenacchi V.
Short-term versus long-term antimicrobial prophylaxis in
oncologic head and neck surgery. Head Neck. 1996; 18 (5): 399404
202Rodrigo JP, Alvarez JC, Gómez JR, Suárez C, Fernández
JA, Martínez JA. Comparison of three prophylactic antibiotic
regimen in clean-contaminated head and neck surgery. Head
Neck. 1997; 19 (3): 188-93
80
203Carroll WR, Rosenstiel D, Fix JR, de la Torre J, Solomon JS,
Brodish B, Rosenthal EL, Heinz T, Niwas S, Peters GE. Threedose vs extended-course clindamycin prophylaxis for free.flap
reconstruction of the head and neck. Arch Otolaryngol Head Neck
Surg. 2003; 129 (7): 771-4
204Shinagawa N, Yamanaka N, Suzuki K, Kawauchi H, Oda M,
Yajin K, Ishizuka Y, Kurono Y, Iwai S, Yokoyama T, Takeyama H.
A questionnaire survey on the theory of postoperative infection
prophylaxis in otorhinolaryngology. Jpn J Antibiot. 2003; 56 (1):
15-26
205Seven H, Sayin I, Turgut S. Antibiotic prophylaxis in clean
neck dissections. J Laryngol Otol. 2004; 118 (3): 213-6
206Ong SK, Morton RP, Kolbe J, Whitlock RM, McIvor NP.
Pulmonary complications following major head and neck surgery
with tracheostomy: a prospective, randomized, controlled trial of
prophylactic antibiotics. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 2004;
130 (9): 1084-7
207Skitarelić N, Morović M, Manestar D. Antibiotic prophylaxis in
clean contaminated head and neck oncological surgery. J
Craniomaxillofac Surg. 2007; 35 (1): 15-20
208Lotfi CJ, Cavalcanti Rde C, Costa e Silva AM, Latorre Mdo
R, Ribeiro Kde C,Carvalho AL, Kowalski LP. Risk factors for
surgical-site infections in head and neck cancer surgery.
Otolaryngol Head Neck Surg. 2008; 138 (1): 74-80
209Verschuur HP, de Wever WW, van Benthem PP. Antibiotic
prophylaxis in clean and clean-contaminated ear surgery.
Cochrane Database Syst Rev. 2004; (3): CD003996
210Annys E, Jorissen M. Short term effects of antibiotics (Zinnat)
after endoscopic sinus surgery. Acta Otorhinolaryngol Belg. 2000;
54 (1): 23-8
211Rajan GP, Fergie N, Fischer U, Romer M, Radivojevic V,
Hee GK. Antibiotic prophylaxis in septorhinoplasty? A
prospective, randomized study. Plast Reconstr Surg. 2005; 116
(7): 1995-8
212Kaygusuz I, Gök U, Yalçin S, Keleş E, Kizirgil A, Demirbağ E
Bacteremia during tonsillectomy. Int J Pediatr Otorhinolaryngol.
2001; 58 (1): 69-73
213Okur E, Aral M, Yildirim I, Kiliç MA, Ciragil P. Bacteremia
during adenoidectomy Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2002; 66
(2): 149-53
214Al-Kindy SA. Do antibiotics decrease post-tonsillectomy
morbidity? Saudi Med J. 2002; 23 (6): 705-7
215Piltcher OB, Scarton FB. Antibiotic use in tonsillectomies:
therapeutic or prophylactic? Required or excessive? Rev Bras
Otorrinolaringol (Engl Ed). 2005; 71 (5): 686-90
81
216Burkart CM, Steward DL. Antibiotics for reduction of
posttonsillectomy morbidity: a meta-analysis. Laryngoscope.
2005; 115 (6): 997-1002
217Sánchez-Carrión S, Prim MP, De Diego JI, Sastre N, PeñaGarcía P. Utility of prophylactic antibiotics in pediatric
adenoidectomy. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2006; 70 (7):
1275-81
218Iyer S, DeFoor W, Grocela J, Kamholz K, Varughese A,
Kenna M. The use of perioperative antibiotics in tonsillectomy:
does it decrease morbidity? Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2006;
70 (5): 853-61
219Dhiwakar M, Eng CY, Selvaraj S, McKerrow WS. Antibiotics
to improve recovery following tonsillectomy: a systematic review.
Otolaryngol Head Neck Surg. 2006; 134 (3): 357-64
220Sistema Nazionale Linee Guida. SNLG 15 Appropriatezza e
sicurezza degli interventi di tonsillectomia e/o adenoidectomia –
Linea guida. Pubblicazione: Marzo 2008
(http://www.snlg-iss.it/cms/files/Snlg_Tonsille'08_interni.pdf)
221Dhiwakar M, Clement W, Supriya M, McKerrow W.
Antibiotics to reduce post-tonsillectomy morbidity. Cochrane
Database Syst Rev. 2008; (2): CD005607
222Gleisner AL, Argenta R, Pimentel M, Simon TK, Jungblut CF,
Petteffi L, de Souza RM, Sauerssig M, Kruel CD, Machado AR.
Infective complications according to duration of antibiotic
treatment in acute abdomen. Int J Infect Dis. 2004, 8 (3): 155-62
223Baum ML, Anish DS, Chalmers TC, Sacks HS, Smith H Jr,
Fagerstrom RM. A survey of clinical trials of antibiotic prophylaxis
in colon surgery: evidence against further use of no-treatment
controls. N Engl J Med. 1981; 305 (14): 795-9
224Price SA, Polk HC Jr. Prophylactic and therapeutic use of
antibiotics in pelvic surgery. J Surg Oncol. 1999; 71 (4): 261-8
225Mittelkötter U. Antimicrobial prophylaxis for abdominal
surgery: is there a need for metronidazole? J Chemother.
2001;13 Spec No 1(1): 27-34
226Platell C, Hall JC. The prevention of wound infection in
patients undergoing colorectal surgery. J Hosp Infect. 2001; 49
(4): 233-8
227Rovera F, Diurni M, Dionigi G, Boni L, Ferrari A, Carcano G,
Dionigi R. Antibiotic prophylaxis in colorectal surgery. Expert Rev
Anti Infect Ther. 2005; 3 (5): 787-95
228Koch A, Zippel R, Marusch F, Schmidt U, Gastinger I, Lippert
H. Prospective multicenter study of antibiotic prophylaxis in
operative treatment of appendicitis. Dig Surg. 2000; 17 (4): 370-8
229Andersen BR, Kallehave FL, Andersen HK. Antibiotics
versus placebo for prevention of postoperative infection after
82
appendicectomy. Cochrane Database Syst Rev. 2005; 20 (3):
CD001439
230Kasatpibal N, Nørgaard M, Sørensen HT, Schønheyder HC,
Jamulitrat S, Chongsuvivatwong V. Risk of surgical site infection
and efficacy of antibiotic prophylaxis: a cohort
study of
appendectomy patients in Thailand. BMC Infect Dis. 2006; 6: 111
231Al-Mulhim AS, Ali AM, Al-Masuod N, Alwahidi A. Post
hemorrhoidectomy pain. A randomized controlled trial. Saudi Med
J. 2006; 27 (10): 1538-41
232Wesarachawit W, Pattana-arun J. Antibiotics and early post
operative complications of closed hemorrhoidectomy: a
retrospective matched pair study. J Med Assoc Thai. 2007; 90 (9):
1828-32
233Jewesson PJ, Stiver G, Wai A, Frighetto L, Nickoloff D, Smith
J, Schwartz L,Sleigh K, Danforth D, Scudamore C, Chow A.
Double-blind comparison of cefazolin and ceftizoxime for
prophylaxis against infections following elective biliary tract
surgery. Antimicrob Agents Chemother. 1996; 40 (1): 70-4
234Westphal JF, Brogard JM. Biliary tract infections: a guide to
drug treatment. Drugs. 1999; 57(1): 81-91
235Illig KA, Schmidt E, Cavanaugh J, Krusch D, Sax HC. Are
prophylactic antibiotics required for elective laparoscopic
cholecystectomy? J Am Coll Surg. 1997; 184 (4): 353-6
236Dobay KJ, Freier DT, Albear P. The absent role of
prophylactic antibiotics in low-risk patients undergoing
laparoscopic cholecystectomy. Am Surg. 1999; 65 (3): 226-8
237McGuckin M, Shea JA, Schwartz JS. Infection and
antimicrobial use in laparoscopic cholecystectomy. Infect Control
Hosp Epidemiol. 1999; 20 (9): 624-6
238Higgins A, London J, Charland S, Ratzer E, Clark J, Haun W,
Maher DP. Prophylactic antibiotics for elective laparoscopic
cholecystectomy: are they necessary? Arch Surg. 1999; 134 (6):
611-3
239Tocchi A, Lepre L, Costa G, Liotta G, Mazzoni G, Maggiolini
F. The need for antibiotic prophylaxis in elective laparoscopic
cholecystectomy: a prospective randomized study. Arch Surg.
2000; 135 (1): 67-70
240Mahatharadol V. A reevaluation of antibiotic prophylaxis in
laparoscopic cholecystectomy: a randomized controlled trial. J
Med Assoc Thai. 2001; 84 (1): 105-8
241Koc M, Zulfikaroglu B, Kece C, Ozalp N. A prospective
randomized study of prophylactic antibiotics in elective
laparoscopic cholecystectomy. Surg Endosc. 2003;17 (11): 17168
242Catarci M, Mancini S, Gentileschi P, Camplone C, Sileri P,
Grassi GB. Antibiotic prophylaxis in elective laparoscopic
83
cholecystectomy. Lack of need or lack of evidence? Surg Endosc.
2004; 18 (4): 638-41
243Kuthe SA, Kaman L, Verma GR, Singh R. Evaluation of the
role of prophylactic antibiotics in elective laparoscopic
cholecystectomy: a prospective randomized trial. Trop
Gastroenterol. 2006; 27 (1): 54-7
244Chang WT, Lee KT, Chuang SC, Wang SN, Kuo KK, Chen
JS, Sheen PC. The impact of prophylactic antibiotics on
postoperative infection complication in elective laparoscopic
cholecystectomy: a prospective randomized study. Am J Surg.
2006; 191 (6): 721-5
245Platt R, Zucker JR, Zaleznik DF, Hopkins CC, Dellinger EP,
Karchmer AW, Bryan CS, Burke JF, Wikler MA, Marino SK, et al.
Perioperative antibiotic prophylaxis and wound infection following
breast surgery. J Antimicrob Chemother. 1993; 31 Suppl B: 43-8
246Hall JC, Hall JL. Antibiotic prophylaxis for patients
undergoing breast surgery. J Hosp Infect. 2000; 46 (3): 165-70
247D'Amico DF, Parimbelli P, Ruffolo C. Antibiotic prophylaxis in
clean surgery: breast surgery and hernia repair. J Chemother.
2001; 13 Spec No 1(1):108-11
248Tejirian T, DiFronzo LA, Haigh PI. Antibiotic prophylaxis for
preventing wound infection after breast surgery: a systematic
review and metaanalysis. J Am Coll Surg. 2006; 203 (5): 729-34
249Cunningham M, Bunn F, Handscomb K. Prophylactic
antibiotics to prevent surgical site infection after breast cancer
surgery. Cochrane Database Syst Rev. 2006; 19 (2): CD005360
250Gossner L, Keymling J, Hahn EG, Ell C. Antibiotic
prophylaxis in percutaneous endoscopic gastrostomy (PEG): a
prospective randomized clinical trial. Endoscopy. 1999;31 (2):
119-24
251Külling D, Sonnenberg A, Fried M, Bauerfeind P. Cost
analysis of antibiotic prophylaxis for PEG. Gastrointest Endosc.
2000; 51(2):152-6
252Sharma VK, Howden CW. Meta-analysis of randomized,
controlled trials of antibiotic prophylaxis before percutaneous
endoscopic gastrostomy. Am J Gastroenterol. 2000; 95 (11):
3133-6
253Nicholson FB, Korman MG, Richardson MA. Percutaneous
endoscopic gastrostomy: a review of indications, complications
and outcome. J Gastroenterol Hepatol. 2000; 15 (1): 21-5
254Panigrahi H, Shreeve DR, Tan WC, Prudham R, Kaufman R.
Role of antibiotic prophylaxis for wound infection in percutaneous
endoscopic gastrostomy (PEG): result of a prospective doubleblind randomized trial. J Hosp Infect. 2002; 50 (4): 312-5
255Ahmad I, Mouncher A, Abdoolah A, Stenson R, Wright J,
Daniels A, Tillett J, Hawthorne AB, Thomas G. Antibiotic
84
prophylaxis for percutaneous endoscopic gastrostomy--a
prospective, randomised, double-blind trial. Aliment. Pharmacol
Ther. 2003; 18 (2): 209-15
256Saadeddin A, Freshwater DA, Fisher NC, Jones BJ.
Antibiotic prophylaxis for percutaneous endoscopic gastrostomy
for non-malignant conditions: a double-blind prospective
randomized controlled trial. Aliment. Pharmacol Ther. 2005; 22
(6): 565-70
257Lipp A, Lusardi G. Systemic antimicrobial prophylaxis for
percutaneous endoscopic gastrostomy. Cochrane Database Syst
Rev. 2006; 18 (4):CD005571
258Imamura H, Furukawa H, Iijima S, Sugihara S, Tsujinaka T,
Tsukuma H, Shimokawa T. Multicenter phase II study of
antimicrobial prophylaxis in low-risk patients undergoing distal
gastrectomy for gastric cancer. Gastric Cancer. 2006; 9 (1): 32-5
259Mohri Y, Tonouchi H, Kobayashi M, Nakai K, Kusunoki M,
Mie Surgical Infection Research Group. Randomized clinical trial
of singleversus multiple-dose antimicrobial prophylaxis in gastric
cancer surgery. Br J Surg. 2007; 94 (6): 683-8
260Ríos A, Rodríguez JM, Munitiz V, Alcaraz P, Pérez Flores D,
Parrilla P. Antibiotic prophylaxis in incisional hernia repair using a
prosthesis. Hernia. 2001; 5 (3): 148-52
261Celdrán A, Frieyro O, de la Pinta JC, Souto JL, Esteban J,
Rubio JM, Señarís JF. The role of antibiotic prophylaxis on wound
infection after mesh hernia repair under local anesthesia on an
ambulatory basis. Hernia. 2004; 8 (1): 20-2
262Aufenacker TJ, van Geldere D, van Mesdag T, Bossers AN,
Dekker B, Scheijde E, van Nieuwenhuizen R, Hiemstra E, Maduro
JH, Juttmann JW, Hofstede D, van Der Linden CT, Gouma DJ,
Simons MP. The role of antibiotic prophylaxis in prevention of
wound infection after Lichtenstein open mesh repair of primary
inguinal hernia: a multicenterdouble-blind randomized controlled
trial. Ann Surg. 2004; 240 (6): 955-60
263Perez AR, Roxas MF, Hilvano SS. A randomized, doubleblind, placebo-controlled trial to determine effectiveness of
antibiotic prophylaxis for tension-free mesh herniorrhaphy. J Am
Coll Surg. 2005; 200 (3): 393-7
264Biswas S. Elective inguinal hernia repair with mesh: is there
a need for antibiotic prophylaxis? - A review. World J Surg. 2005;
29 (7): 830-6
265Aufenacker TJ, Koelemay MJ, Gouma DJ, Simons MP.
Systematic review and meta analysis of the effectiveness of
antibiotic prophylaxis in prevention of wound infection after mesh
repair of abdominal wall hernia. Br J Surg. 2006; 93 (1): 5-10
85
266Terzi C. Antimicrobial prophylaxis in clean surgery with
special focus on inguinal hernia repair with mesh. J Hosp Infect.
2006; 62 (4): 427-36
267Tzovaras G, Delikoukos S, Christodoulides G, Spyridakis M,
Mantzos F, Tepetes K, Athanassiou E, Hatzitheofilou C. The role
of antibiotic prophylaxis in elective tension-free mesh inguinal
hernia repair: results of a single-centre prospective randomised
trial. Int J Clin Pract. 2007; 61 (2): 236-9
268Sanabria A, Domínguez LC, Valdivieso E, Gómez G.
Prophylactic antibiotics for mesh inguinal hernioplasty: a metaanalysis. Ann Surg. 2007; 245 (3): 392-6
269Sanchez-Manuel FJ, Lozano-García J, Seco-Gil JL.
Antibiotic prophylaxis for hernia repair. Cochrane Database Syst
Rev. 2007; (3): CD003769
270Dørflinger T, Madsen PO. Antibiotic prophylaxis in
transurethral surgery: a comparison of sulbactam-ampicillin and
cefoxitin. Infection. 1985; 13 (2): 66-9
271Botto H. Antibiotic prophylaxis in urology. Surgical and
endoscopic surgery. Lithotripsy. Transplantation. Ann Fr Anesth
Reanim. 1994; 13 (5 Suppl): S110-7
272Llanes González L, Ruiz de la Roja JC, Martín Oses E, de
Paz Cruz L, Zarate Rodríguez E, Sánchez Sánchez E, Paez
Borda A, Llorente Abarca C, Berenguer Sánchez A. Antimicrobial
prophylaxis in urology. Actas Urol Esp. 1997; 21 (6): 540-8
273Kraklau DM, Wolf JS Jr. Review of antibiotic prophylaxis
recommendations for office based urologic procedures. Techn
Urol. 1999; 5: 123-128
274Grabe M. Perioperative antibiotic prophylaxis in urology. Curr
Opinion Urol. 2001; 11: 81-85
275Grabe M, Shortliffe L, Lobel B et al. Risk factors. In: Naber
KG, Pechère JC, Kumazawa J et al., eds. Nosocomial and health
care associated infections in urology. Health Publications Ltd,
2001, pp. 35-57
276Olson ES, Cookson BD. Do antimicrobials have a role in
preventing septicaemia following instrumentation of the urinary
tract? J Hosp Infect. 2000; 45 (2): 85-97
277Grabe M. Controversies in antibiotic prophylaxis in urology.
Int J Antimicrob Agents. 2004; 23 Suppl 1: S17-23
278Takeyama K, Shimizu T, Mutoh M, Nishiyama N, Kunishima
Y, Matsukawa M, Takahashi S, Hotta H, Itoh N, Tsukamoto T.
Prophylactic antimicrobial agents in urologic laparoscopic
surgery: 1-day versus 3-day treatments. J Infect Chemother.
2004; 10 (3): 168-71
279Johansen TE. Nosocomially acquired urinary tract infections
in urology departments. Why an international prevalence study is
86
needed in urology. Int J Antimicrob Agents. 2004; 23 Suppl 1:
S30-4
280Matsumoto T, Kiyota H, Matsukawa M, Yasuda M, Arakawa
S, Monden K; Japanese Society of UTI Cooperative Study Group
(Chairman; Tetsuro Matsumoto). Japanese guidelines for
prevention of perioperative infections in urological field. Int J Urol.
2007; 14 (10): 890-909
281Wolf JS Jr, Bennett CJ, Dmochowski RR, Hollenbeck BK,
Pearle MS, Schaeffer AJ; Urologic Surgery Antimicrobial
Prophylaxis Best Practice Policy Panel. Best practice policy
statement on urologic surgery antimicrobial prophylaxis. J Urol.
2008; 179 (4): 1379-90
282Grabe M, Bishop M.C, Bjerklund-Johansen T.E, Botto H, Çek
M, Lobel B, Naber K.G, Palou J, Tenke P. Guidelines on the
management of urinary and male genital tract infections.
(http://www.uroweb.org/fileadmin/user_upload/Guidelines/The
Management of Male Urinary and Genital Tract Infections.pdf)
283Yamamoto S, Shima H, Matsumoto T. Controversies in
perioperative management and antimicrobial prophylaxis in
urologic surgery. Int J Urol. 2008; 15 (6): 467-71
284Taylor HM, Bingham JB. Antibiotic prophylaxis for transrectal
prostate biopsy. J Antimicrob Chemother. 1997;39 (2): 115-117
285Taylor HM, Bingham JB. The use of prophylactic antibiotics
in ultrasound-guided transrectal prostate biopsy. Clin Radiol.
1997; 52 (10): 787-90
286Sieber PR, Rommel FM, Agusta VE, Breslin JA, Huffnagle
HW, Harpster LE. Antibiotic prophylaxis in ultrasound guided
transrectal prostate biopsy. J Urol. 1997; 157 (6): 2199-200
287Kapoor DA, Klimberg IW, Malek GH, Wegenke JD, Cox CE,
Patterson AL, Graham E, Echols RM, Whalen E, Kowalsky SF.
Single-dose oral ciprofloxacin versus placebo for prophylaxis
during transrectal prostate biopsy. Urology. 1998; 52 (4): 552-8
288Shandera KC, Thibault GP, Deshon GE Jr. Efficacy of one
dose fluoroquinolone before prostate biopsy. Urology. 1998; 52
(4): 641-3
289Isen K, Küpeli B, Sinik Z, Sözen S, Bozkirli I. Antibiotic
prophylaxis for transrectal biopsy of the prostate: a prospective
randomized study of the prophylactic use of single dose oral
fluoroquinoloneversus trimethoprim-sulfamethoxazole. Int Urol
Nephrol. 1999; 31 (4): 491-5
290Aron M, Rajeev TP, Gupta NP. Antibiotic prophylaxis for
transrectal needle biopsy of the prostate: a randomized controlled
study. BJU Int. 2000; 85 (6): 682-5
291Griffith BC, Morey AF, Ali-Khan MM, Canby-Hagino E, Foley
JP, Rozanski TA. Single dose levofloxacin prophylaxis for
87
prostate biopsy in patients at low risk. J Urol. 2002; 168 (3): 10213
292Webb NR, Woo HH. Antibiotic prophylaxis for prostate
biopsy. BJU Int. 2002; 89: 824-828
293Villers A, Mouton D, Rebillard X, Chautard D, Ruffion A,
Staerman F, Cornud F. Biopsy Technique and biopsy schemes
for a first series of prostatic biopsies Progr Urol. 2004; 14 (2):
144-53
294Sabbagh R, Mc Cormack M, Peloquin F, Faucher R,
Perreault JP, perrotte P, Karakiewicz PI, Saad F. A prospective
randomized trial of 1-day versus 3-day antibiotic prophylaxis for
transrectal ultrasound guided prostate biopsy. Can J Urol. 2004;
11 (2): 2216-9
295Shigemura K, Tanaka K, Yasuda M, Ishihara S, Muratani T,
Deguchi T, Matsumoto T, Kamidono S, Nakano Y, Arakawa S,
Fujisawa M. Efficacy of 1-day prophylaxis medication with
fluoroquinolone for prostate biopsy. World J Urol. 2005; 23 (5):
356-60
296Raja J, Ramachandran N, Munneke G, Patel U. Current
status of transrectal ultrasound-guided prostate biopsy in the
diagnosis of prostate cancer. Clin Radiol. 2006; 61 (2): 142-53
297Puig J, Darnell A, Bermúdez P, Malet A, Serrate G, Baré M,
Prats J. Transrectal ultrasound-guided prostate biopsy: is
antibiotic prophylaxis necessary? Eur Radiol. 2006; 16 (4): 93943
298Nielsen OS, Maigaard S, Frimodt-Møller N, Madsen PO.
Prophylactic antibiotics in transurethral prostatectomy. J Urol.
1981; 126 (1):60-2
299Prokocimer P, Quazza M, Gibert C, Lemoine JE, Joly ML,
Dureuil B, Moulonguet A, Manuel C, Desmonts JM. Short-term
prophylactic antibiotics in patients undergoing prostatectomy:
report of a double-blind randomized trial with 2 intravenous doses
of cefotaxime. J Urol. 1986; 135 (1): 60-4
300Grabe M, Forsgren A, Bjork T, Hellsten S. Controlled trial of
a short and a prolonged course with ciprofloxacin in patients
undergoing transurethral prostatic surgery. Eur J Clin Microbiol.
1987; 6 (1): 11-17
301Grabe M. Antimicrobial agents in transurethral prostatic
resection. J Urol. 1987; 138 (2): 245-52
302Cox CE. Comparison of intravenous ciprofloxacin and
intravenous cefotaxime for antimicrobial prophylaxis in
transurethral surgery. Am J Med. 1989; 87 (5A): 252S-254S
303Viitanen J, Talja M, Jussila E, Nurmi M, Permi J, Puolakka
VM, Rintala E, salamela H, Tiitinen J, Tuhkanen K, et al.
Randomized controlled study of chemoprophylaxis in
transurethral prostatectomy. J Urol. 1993; 150 (5 Pt 2): 1715-7
88
304Hargreave TB, Botto H, Rikken GH, Hindmarsh JR,
McDermott TE, Mjolnerod OK, Petays P, Schalkhäuser K, Stellos
A. European collaborative study of antibiotic prophylaxis for
transurethral resection of the prostate. Eur Urol. 1993; 23 (4):
437-43
305Lukkarinen O, Hellström P, Leppilahti M, Kontturi M,
Tammela T. Antibiotic prophylaxis in patients with urinary
retention undergoing transurethral prostatectomy. Ann Chir
Gynaecol. 1997; 86 (3): 239-42
306Liu GG, Nguyen T, Nichol MB. An economic analysis of
antimicrobial prophylaxis against urinary tract infection in patients
undergoing transurethral resection of the prostate. Clin Ther.
1999; 21 (9): 1589-604
307Berry A, Barratt A. Prophylactic antibiotic use in transurethral
prostatic resection: a meta-analysis. J Urol. 2002;167 (2 Pt 1):
571-7
308Qiang W, Jianchen W, MacDonald R, Monga M, Wilt TJ.
Antibiotic prophylaxis for transurethral prostatic resection in men
with preoperative urine containing less than 100,000 bacteria per
ml: a systematic review. J Urol. 2005; 173 (4): 1175-81
309Wagenlehner FM, Wagenlehner C, Schinzel S, Naber KG;
Working Group “Urological Infections” of German Society of
Urology.
Prospective,
randomized,
multicentric,
open,
comparative study on the efficacy of a prophylactic single dose of
500 mg levofloxacin versus 1920 mg trimethoprim/
sulfamethoxazole versus a control group in patients undergoing
TUR of the prostate. Eur Urol. 2005; 47: 549-56
310Terai A, Ichioka K, Kohei N, Ueda N, Utsunomiya N, Inoue K.
Antibiotic prophylaxis in radical prostatectomy: 1-day versus 4day treatments. Int J Urol. 2006; 13 (12): 1488-93
311Takeyama K, Takahashi S, Maeda T, Mutoh M, Kunishima Y,
Matsukawa M, Takagi Y. Comparison of 1-day, 2-day, and 3-day
administration
of
antimicrobial
prophylaxis
in
radical
prostatectomy. J Infect Chemother. 2007; 13 (5): 320-3
312Ozturk M, Koca O, Kaya C, Karaman MI. A prospective
randomized and placebo-controlled study for the evaluation of
antibiotic prophylaxis in transurethral resection of the prostate.
Urol Int. 2007; 79 (1): 37-40
313Sakura M, Kawakami S, Yoshida S, Masuda H, Kobayashi T,
Kihara K. Prospective comparative study of single dose versus 3day administration of antimicrobial prophylaxis in minimum
incision endoscopic radical prostatectomy. Int J Urol. 2008; 15
(4): 328-31
314Charton M, Vallancien G, Veillon B, Brisset JM. Urinary tract
infection in percutaneous surgery for renal calculi. J Urol. 1986;
135 (1): 15-7
89
315Pearle MS, Roehrborn CG. Antimicrobial prophylaxis prior to
shock wave lithotripsy in patients with sterile urine before
treatment: a meta-analysis and cost-effectiveness analysis.
Urology. 1997; 49 (5): 679-86
316Doğan HS, Sahin A, Cetinkaya Y, Akdoğan B, Ozden E,
Kendi S. Antibiotic prophylaxis in percutaneous nephrolithotomy:
prospective study in 81 patients. J Endourol. 2002; 16 (9): 649-53
317Knopf HJ, Graff HJ, Schulze H. Perioperative antibiotic
prophylaxis in ureteroscopic stone removal. Eur Urol. 2003; 44
(1): 115-8
318MacDermott JP, Ewing RE, Somerville JF, Gray BK.
Cephradine prophylaxis in transurethral procedures for carcinoma
of the bladder. Br J Urol. 1988; 62 (2): 136-9
319Wilson L, Ryan J, Thelning C, Masters J, Tuckey J. Is
antibiotic prophylaxis required for flexible cystoscopy? A
truncated randomized double-blind controlled trial. J Endourol.
2005; 19 (8): 1006-8
320Hara N, Kitamura Y, Saito T, Komatsubara S, Nishiyama T,
Takahashi K. Perioperative antibiotics in radical cystectomy with
ileal conduit urinary diversion: Efficacy and risk of antimicrobial
prophylaxis on the operation day alone. Int J Urol. 2008; 15 (6):
511-5
321McClelland S 3rd, Hall WA. Postoperative central nervous
system infection: incidence and associated factors in 2111
neurosurgical procedures. Clin Infect Dis. 2007 45 (1): 55-9
322Valentini LG, Casali C, Chatenoud L, Chiaffarino F, UbertiFoppa C, Broggi G. Surgical site infections after elective
neurosurgery: a survey of 1747 patients. Neurosurgery. 2008; 62
(1): 88-95
323Langley JM, LeBlanc JC, Drake J, Milner R. Efficacy of
antimicrobial prophylaxis in placement of cerebrospinal fluid
shunts: meta-analysis. Clin Infect Dis. 1993;17 (1): 98-103
324Haines SJ, Walters BC. Antibiotic prophylaxis for
cerebrospinal fluid shunts: a metanalysis. Neurosurgery. 1994 34
(1): 87-92
325Barker FG 2nd. Efficacy of prophylactic antibiotics for
craniotomy: a meta-analysis. Neurosurgery. 1994; 35 (3): 484-90
326Korinek AM, Golmard JL, Elcheick A, Bismuth R, van
Effenterre R, Coriat P, Puybasset L. Risk factors for neurosurgical
site infections after craniotomy: a critical reappraisal of antibiotic
prophylaxis on 4,578 patients. Br J Neurosurg. 2005; 19 (2): 15562
327Brown EM. Antibiotic prophylaxis in patients undergoing
clean, non-implant craniotomy. Br J Neurosurg. 2006; 20 (5): 2734
90
328Ratilal B, Costa J, Sampaio C. Antibiotic prophylaxis for
surgical introduction of intracranial ventricular shunts. Cochrane
Database Syst Rev. 2006 19; 3: CD005365
329Barker FG 2nd. Efficacy of prophylactic antibiotics against
meningitis after craniotomy: a meta-analysis. Neurosurgery. 2007;
60 (5): 887-94
330Brown SM, Anand VK, Tabaee A, Schwartz TH. Role of
perioperative antibiotics in endoscopic skull base surgery.
Laryngoscope. 2007; 117 (9): 1528-32
331Ratilal B, Costa J, Sampaio C. Antibiotic prophylaxis for
surgical introduction of intracranial ventricular shunts: a
systematic review. J Neurosurg Pediatrics. 2008; 1 (1): 48-56
332Price SA, Polk HC Jr. Prophylactic and therapeutic use of
antibiotics in pelvic surgery. J Surg Oncol. 1999; 71 (4): 261-8
333Giuliani B, Periti E, Mecacci F. Antimicrobial prophylaxis in
obstetric and gynecological surgery. J Chemother. 1999; 11 (6):
577-80
334Guaschino S, De Santo D, De Seta F. New perspectives in
antibiotic prophylaxis for obstetric and gynaecological surgery. J
Hosp Infect. 2002; 50 Suppl A: S13-6
335Cormio G, Di Fazio F, Lorusso F, Di Gesù G, Cacciapuoti C,
Loverro G, Nappi L, Selvaggi L. Antimicrobial prophylaxis in
laparotomic gynecologic surgery: a prospective randomized study
comparing amoxicillin-clavulanic acid with cefazolin. J
Chemother. 2002; 14 (6): 618-22
336Larsen JW, Hager WD, Livengood CH, Hoyme U. Guidelines
for the diagnosis, treatment and prevention of postoperative
infections. Infect Dis Obstet Gynecol. 2003; 11(1): 65-70
337Cormio G, Di Fazio F, Cacciapuoti C, Bettocchi S, Borraccino
L, Selvaggi L. Prospective randomized study comparing
amoxicillin-clavulanic acid with cefazolin as antimicrobial
prophylaxis in laparotomic gynecologic surgery. Acta Obstet
Gynecol Scand. 2003; 82 (12): 1130-4
338Cormio G, Bettocchi S, Ceci O, Nappi L, Di Fazio F,
Cacciapuoti C, Selvaggi L. Antimicrobial prophylaxis in
laparoscopic gynecologic surgery: a prospective randomized
study comparing amoxicillin-clavulanic acid with cefazolin. J
Chemother. 2003; 15 (6): 574-8
339Scardigno D, Lavermicocca T, Magazino MP, Cazzolla A,
Lorusso M, Vicino M. A randomized study comparing amoxicillinclavulanic acid with cefazolin as antimicrobial prophylaxis in
laparotomic gynecologic surgery. Minerva Ginecol. 2006; 58 (2):
85-90
340ACOG Committee on Practice Bulletins. ACOG Practice
Bulletin No. 74. Antibiotic prophylaxis for gynecologic procedures.
Obstet Gynecol. 2006;108 (1): 225-34
91
341Ledger WJ. Prophylactic antibiotics in obstetrics-gynecology:
a current asset, a future liability? Expert Rev Anti Infect Ther.
2006; 4 (6): 957-64
342Cormio G, Vicino M, Loizzi V, Tangari D, Selvaggi L.
Antimicrobial prophylaxis in vaginal gynecologic surgery: a
prospective randomized study comparing amoxicillin-clavulanic
acid with cefazolin. J Chemother. 2007; 19 (2):193-7
343Popović J, Grujić Z, Sabo A. Influence of pregnancy on
ceftriaxone, cefazolin and gentamicin pharmacokinetics in
caesarean vs. non-pregnant sectioned women. J Clin Pharm
Ther. 2007; 32 (6): 595-602
344Faro S, Martens MG, Hammill HA, Riddle G, Tortolero G.
Antibiotic prophylaxis: is there a difference? Am J Obstet
Gynecol. 1990; 162 (4): 900-7
345Carlson C, Duff P. Antibiotic prophylaxis for cesarean
delivery: is an extended-spectrum agent necessary? Obstet
Gynecol. 1990; 76 (3 Pt 1): 343-6
346Currier JS, Tosteson TD, Platt R. Cefazolin compared with
cefoxitin for cesarean section prophylaxis: the use of a two-stage
study design. J Clin Epidemiol. 1993; 46 (7): 625-30
347Noyes N, Berkeley AS, Freedman K, Ledger W. Incidence of
postpartum endomyometritis following single-dose antibiotic
prophylaxis with either ampicillin/sulbactam, cefazolin, or
cefotetan in high-risk cesarean section patients. Infect Dis Obstet
Gynecol. 1998; 6 (5): 220-3
348Hopkins L, Smaill. Antibiotic prophylaxis regimens and drugs
for cesarean section. Cochrane Database Syst Rev. 2000; (2):
CD001136
349Chelmow D, Ruehli MS, Huang E. Prophylactic use of
antibiotics for nonlaboring patients undergoing cesarean delivery
with intact membranes: a meta-analysis. Am J Obstet Gynecol.
2001; 184 (4): 656-61
350Killian CA, Graffunder EM, Vinciguerra TJ, Venezia RA. Risk
factors for surgical-site infections following cesarean section.
351Smaill F, Hofmeyr GJ. Antibiotic prophylaxis for cesarean
section. Cochrane Database Syst Rev. 2002; (3): CD000933
352American College of Obstetricians and Gynecologists. ACOG
practice bulletin number 47, October 2003: Prophylactic
Antibiotics in Labor and Delivery. Obstet Gynecol. 2003; 102 (4):
875-82
353Chelmow D, Hennesy M, Evantash EG. Prophylactic
antibiotics for non-laboring patients with intact membranes
undergoing cesarean delivery: an economic analysis. Am J
Obstet Gynecol. 2004; 191 (5): 1661-5
92
354Berghella V, Baxter JK, Chauhan SP. Evidence-based
surgery for cesarean delivery. Am J Obstet Gynecol. 2005; 193
(5): 1607-17
355Martins AC, Krauss-Silva L. Systematic reviews of antibiotic
prophylaxis in cesareans. Cad Saude Publica. 2006; 22 (12):
2513-26
356Olsen MA, Butler AM, Willers DM, Devkota P, Gross GA,
Fraser VJ. Risk factors for surgical site infection after low
transverse cesarean section. Infect Control Hosp Epidemiol.
2008; 29 (6): 477-84
357Mittendorf R, Aronson MP, Berry RE, Williams MA, Kupelnick
B, Klickstein A, Herbst AL, Chalmers TC. Avoiding serious
infections associated with abdominal hysterectomy: a metaanalysis of antibiotic prophylaxis. Am J Obstet Gynecol. 1993;
169 (5): 1119-24
358Tanos V, Rojansky N. Prophylactic antibiotics in abdominal
hysterectomy. J Am Coll Surg. 1994; 179 (5): 593-600
359Meltomaa SS, Mäkinen JI, Taalikka MO, Helenius HY.
Incidence, risk factors and outcome of infection in a 1-year
hysterectomy cohort: a prospective follow-up study. J Hosp Infect.
2000; 45 (3): 211-7
360Chongsomchai C, Lumbiganon P, Thinkhamrop J, Ounchai
J,
Vudhikamraksa
N.
Placebo-controlled,
double-blind,
randomized study of prophylactic antibiotics in elective abdominal
hysterectomy. J Hosp Infect. 2002; 52 (4): 302-6
361Löfgren M, Poromaa IS, Stjerndahl JH, Renström B.
Postoperative infections and antibiotic prophylaxis for
hysterectomy in Sweden: a study by the Swedish National
Register for Gynecologic Surgery. Acta Obstet Gynecol Scand.
2004; 83 (12): 1202-7
362Eason EL, Wells GA, Garber GE, Hopkins ML; Vaginal
Antisepsis for Abdominal Hysterectomy Study Group.
Prophylactic antibiotics for abdominal hysterectomy: indication for
low-risk Canadian women. J Obstet Gynaecol Can. 2004; 26 (12):
1067-72
363Costa RJ, Krauss-Silva L. Systematic review and metaanalysis of antibiotic prophylaxis in abdominal hysterectomy. Cad
Saude Publica. 2004; 20 Suppl 2: S175-89
364Kocak I, Ustün C, Gürkan N. Prophylactic antibiotics in
elective abdominal hysterectomy. Int J Gynaecol Obstet. 2005; 90
(2): 157-8
365Chang WC, Hung YC, Li TC, Yang TC, Chen HY, Lin CC.
Short course of prophylactic antibiotics in laparoscopically
assisted vaginal hysterectomy. J Reprod Med. 2005; 50 (7): 5248
93
366Sawaya GF, Grady D, Kerlikowske K, Grimes DA. Antibiotics
at the time of induced abortion: the case for universal prophylaxis
based on a meta-analysis. Obstet Gynecol. 1996; 87 (5 Pt 2):
884-90
367Penney GC. Preventing infective sequelae of abortion. Hum
Reprod. 1997; 12 (11 Suppl):107-12
368Keder LM. Best practices in surgical abortion. Am J Obstet
Gynecol. 2003;189 (2): 418-22
369No authors listed. Antimicrobial prophylaxis for orthopaedic
surgery. Drug Ther Bull. 2001; 39 (6): 43-6
370Vardakas KZ, Soteriades ES, Chrysanthopoulou SA,
Papagelopoulos PJ, Falagas ME. Perioperative anti-infective
prophylaxis with teicoplanin compared to cephalosporins in
orthopaedic and vascular surgery involving prosthetic material.
Clin Microbiol Infect. 2005; 11 (10): 775-7
371W-Dahl A, Toksvig-Larsen S. Infection prophylaxis: a
prospective study in 106 patients operated on by tibial osteotomy
using the hemicallotasis technique. Arch Orthop Trauma Surg.
2006; 126 (7): 441-7
372Kato D, Maezawa K, Yonezawa I, Iwase Y, Ikeda H, Nozawa
M, Kurosawa H. Randomized prospective study on prophylactic
antibiotics in clean orthopedic surgery in one ward for 1 year. J
Orthop Sci. 2006; 11 (1): 20-7
373Ali M, Raza A. Role of single dose antibiotic prophylaxis in
clean orthopedic surgery. Coll Physicians Surg Pak. 2006; 16 (1):
45-8
374Trampuz A, Zimmerli W. Antimicrobial agents in orthopaedic
surgery: Prophylaxis and treatment. Drugs. 2006; 66 (8): 1089105
375Fletcher N, Sofianos D, Berkes MB, Obremskey WT.
Prevention of perioperative infection. J Bone Joint Surg Am.
2007; 89 (7): 1605-18
376Prokuski L. Prophylactic antibiotics in orthopaedic surgery. J
Am Acad Orthop Surg. 2008; 16 (5): 283-93
377Glenny A, Song F. Antimicrobial prophylaxis in total hip
replacement: a systematic review. Health Technol Assess. 1999;
3 (21): 1-57
378Hanssen AD, Osmon DR. The use of prophylactic
antimicrobial agents during and after hip arthroplasty. Clin Orthop
Relat Res. 1999; (369): 124-38
379Eshkenazi AU, Garti A, Tamir L, Hendel D. Serum and
synovial vancomycin concentrations following prophylactic
administration in knee arthroplasty. Am J Knee Surg. 2001 Fall;
14 (4): 221-3
94
380Tang WM, Chiu KY, Ng TP, Yau WP, Ching PT, Seto WH.
Efficacy of a single dose of cefazolin as a prophylactic antibiotic in
primary arthroplasty. J Arthroplasty. 2003; 18 (6): 714-8
381Gillespie WJ; Walenkamp G. Antibiotic Prophylaxis for
surgery for proximal femoral and other closed long bone
fractures. Cochrane Database Syst Rev. 2001; (1): CD000244
382Gosselin RA, Roberts I, Gillespie WJ. Antibiotics for
preventing infection in open limb fractures. Cochrane Database
Syst Rev. 2004; (1): CD003764
383Southwell-Keely JP, Russo RR, March L, Cumming R,
Cameron I, Brnabic AJ. Antibiotic prophylaxis in hip fracture
surgery: a metaanalysis. Clin Orthop Relat Res. 2004; (419): 17984
384Hauser CJ, Adams CA Jr, Eachempati SR; Council of the
Surgical Infection Society. Surgical Infection Society guideline:
prophylactic antibiotic use in open fractures: an evidence-based
guideline. Surg Infect (Larchmt). 2006; 7 (4): 379-405
385Slobogean GP, Kennedy SA, Davidson D, Oʼbrien PJ.
Single- Versus Multiple-Dose Antibiotic Prophylaxis in the
Surgical Treatment of Closed Fractures: A Meta-Analysis. J
Orthop Trauma. 2008; 22 (4): 264-269
386Dimick JB, Lipsett PA, Kostuik JP. Spine update:
antimicrobial prophylaxis in spine surgery: basic principles and
recent advances. Spine. 2000; 25 (19): 2544-8
387Barker FG 2nd. Efficacy of prophylactic antibiotic therapy in
spinal surgery: a meta-analysis. Neurosurgery. 2002; 51 (2): 391400
388Mathis JM. Percutaneous vertebroplasty: complication
avoidance and technique optimization. AJNR Am J Neuroradiol.
2003; 24 (8): 1697-706
389Dobzyniak MA, Fischgrund JS, Hankins S, Herkowitz HN.
ingle versus multiple dose antibiotic prophylaxis in lumbar disc
surgery. Spine. 2003; 28 (21): E453-5
390Brown EM, Pople IK, de Louvois J, Hedges A, Bayston R,
Eisenstein SM, Lees P; British Society for Antimicrobial
Chemotherapy Working Party on Neurosurgical Infections. Spine
update: prevention of postoperative infection in patients
undergoing spinal surgery. Spine. 2004; 29 (8): 938-45
391Mastronardi L, Rychlicki F, Tatta C, Morabito L, Agrillo U,
Ducati A. Spondylodiscitis after lumbar microdiscectomy:
effectiveness of two protocols of intraoperative antibiotic
prophylaxis in 1167 cases. Neurosurg Rev. 2005; 28 (4): 303-7
392Kanayama M, Hashimoto T, Shigenobu K, Oha F, Togawa D.
Effective prevention of surgical site infection using a Centers for
Disease Control and Prevention guideline-based antimicrobial
95
prophylaxis in lumbar spine surgery. J Neurosurg Spine. 2007; 6
(4): 327-9
96

scarica

Transcript

Documenti analoghi

La profilassi antibiotica in chirurgia

Risposta alle note di parte nella ctu definitiva del caso LV

Consenso informato

embryological basis of surgery.pub

IL TUO PIANO TERAPEUTICO PERSONALIZZATO

Approcci Conservativi e Recupero Precoce nella Protesizzazione

goal directed therapy - Università degli Studi di Udine

Europass Curriculum Vitae - Facoltà di Farmacia e Medicina

View Curriculum Vitae

Profilassi antimicrobica negli interventi di chirurgia pulita