ematologia ed emostasi
Transcript
ematologia ed emostasi
EMATOLOGIA ED EMOSTASI Services suisses d'essais d’aptitude Schweizerische Eignungsprüfungsdienststellen Servizi svizzeri di prove valutative interlaboratorio Swiss proficiency testing services SPTS 0004 1. Ematologia Caratteristiche ————————————————————————————————————————— Nome del programma Frequenza delle inchieste Identificazione dei campioni Numero di campioni per inchiesta Tipo di campione Tipo di valutazione 1a inchiesta organizzata nel Numero di partecipanti (2017) Descrizione • • • • • HE 4, 6 o 12 volte l’anno, a scelta VS: 4 volte l’anno Ematologia: ABX Micros®, Microsemi CRP® ,QuikRead go: Reticolociti – Microscopio: Reticolociti – Apparecchio: Velocità di eritrosedimentazione: Citometria, 3 popolazioni di leucociti: Citometria, 5 popolazioni di leucociti: Da 1 a 4 Sangue stabilizzato R1: vetrino colorato Quantitativa 1972 Ematologia: 3’150 H1 H70 R1 R2 VS H31, H32, H70 H51, H52, H53, H55, H56 Reticolociti: 195 VS: 200 3 popolazioni: 370 5 popolazioni: 200 ——————————————————————————————————————————— Questo programma è destinato a tutti gli apparecchi per l’ematologia, inclusi i POCT. Ogni campione è destinato a parametri specifici. E’ importante utilizzare il campione adatto, a seconda del parametro da analizzare. Ogni apparecchio risp. ogni metodica richiede il suo specifico campione. Ogni cambiamento d’apparecchio e/o di metodica ci va quindi comunicato al più presto. Le valutazioni quantitative vengono effettuate in funzione dei diversi parametri e dei metodi utilizzati. Offriamo anche un programma specifico per l'ematologia differenziale al microscopio (vedere scheda “Ematologia differenziale”), che comprende degli strisci di sangue già colorati accompagnati da un'anamnesi. Rendiamo attenti tutti i laboratori che eseguono queste analisi che esse sottostanno agli obblighi legali. Per qualsiasi domanda, non esiti a contattare il CSCQ. CSCQ Manuale Ematologia ed Emostasi © CSCQ Versione: 17.00 Aggiornamento: 2017/01/02 Pagina 1/6 Parametri valutati ———————————————————————————————————————— Sg-Ematocrito Sg-Emoglobina totale Abbreviazione Sg-Ht Sg-Hb Codice Valutazione QUALAB - Tolleranza Risultato: Criterio di qualità OPre CSCQ esempio 1375.00 43 ±9% ±3% 1396.00 141 ±9% ±3% ; Sg-Eritrociti, conteggio degli - Sg-Eri 1297.00 ± 25 % ±3% 5,1 10 /L (= E12/L) ; Sg-Leuc Sg-MCH Sg-MCHC Sg-MCV Sg-RetiAut Sg-Reti M Sg-Tro 1532.00 1649.00 1648.00 1715.00 ± 25 % -----± 25 % ±8% ±6% ±6% ±6% ± 30 % ± 30 % ±9% 7,2 28,2 317 88,9 1,50 1,20 187 10 /L (= E9/L) pg g/L fL % % 10 /L (= E9/L) Sg-Gran % -- -- ± 25 % 85,0 % Sg-Gra % Sg-Eo/Neu % Sg-Lym % Sg-Mono % Sg-Baso % Sg-Mo/Ba % Sg-Eosin % Sg-Mo/Eo % --------- --------- ± 25 % ± 25 % ± 25 % ± 25 % ± 25 % ± 25 % ± 25 % ± 25 % 85,0 85,0 12,0 2,9 1,0 2,9 2,0 2,9 % % % % % % % % Sg-MXD % -- -- ± 25 % 2,9 % Sg-Neutro % -- -- ± 25 % 85,0 % Sg-VS 1 ora 1666.00 -- ± 15 % 12 mm / h Sg-VS 2 ore -- -- ± 20 % 19 mm / h 9023 Sg-Leucociti, conteggio dei Sg-MCH Sg-MCHC Sg-MCV Sg-Reticolociti, automatizzato Sg-Reticolociti, microscopio Sg-Trombociti, conteggio dei Eosinofili totali, Basofili, Neutrofili % Eosinofili, Basofili, Neutrofili % Eosinofili, Neutrofili % Linfociti % Monociti % Basofili % Monociti, Basofili % Eosinofili % Monociti, Eosinofili % Monociti, Eosinofili, Basofili (MXD) % Neutrofili % Sg-Velocità di eritrosedimentazione, dopo 1 ora Sg-Velocità di eritrosedimentazione, dopo 2 ore Qualità colorazione reticolociti QColorReti -- -- -- Bon -- 9022 Qualità striscio reticolociti QStrisReti -- -- -- Bon -- Codice CSCQ 71 ; 72 ; 73 74 81 82 70 601 600 75 ; 650 645 640 610 615 617 620 622 625 630 635 88 89 ; • Nome 1370.00 Unità % g/L 12 9 9 Parametri attualmente sottoposti obbligatoriamente a un CQE, secondo la QUALAB. Valutazione QUALAB – “criteri di numero”: per tutti i parametri, il 75 % dei risultati dev’essere conforme. Sottostanno agli obblighi legali anche le analisi con i codici OPre elencati di seguito 1370.00 Eritrociti, Leucociti, Emoglobina, Ematocrito, Indici 1371.00 Idem 1370.00 + Trombociti 1372.00 Idem 1371.00 + 3 sottopopolazioni 1373.00 e 1374.00 Idem 1371.00 + 5 sottopopolazioni (codici in funzione dei metodi) Conservazione, stabilità e fase pre–analitica • • • • • • ——————————————————————————— Il sangue stabilizzato dev’essere conservato in frigorifero (+2 – +6°C). Il campione è stabile fino alla data di scadenza indicata sul flacone. Dopo la ricezione del campione, le analisi vanno eseguite rapidamente, e i risultati vanno spediti al CSCQ entro la data indicata sul bollettino di consegna o sul formulario dei risultati (2 settimane dopo la data di spedizione, salvo eccezioni). Portare il campione a temperatura ambiente (20–25°C), durante circa 30 minuti, prima di eseguire le analisi. Immediatamente prima di eseguire le analisi, omogeneizzare delicatamente e ripetutamente il campione, evitando di agitarlo. 1. Far rotolare il campione facendolo scorrere tra i palmi delle mani, per 30-45 secondi. 2. Mescolare lentamente per inversione, ca. 10 volte. Utilizzare il campione di controllo come un campione di paziente. CSCQ Manuale Ematologia ed Emostasi © CSCQ Versione: 17.00 Aggiornamento: 2017/01/02 Pagina 2/6 Campioni di controllo • • —————————————————————————————————————— Qualsiasi campione biologico dev’essere considerato come potenzialmente infettivo. Questo campione non va mai utilizzato per il dosaggio del glucosio. Unità e fattore di conversione —————————————————————————————————— • Eritrociti 109/LÆ ÷ 1 000 Æ 1012/L 106/µL = 1012/L 106/mm3 = 1012/L Esempio di calcolo per ottenere un risultato con l’unità SI 5 100 109/L ÷ 1 000 = 5,1 1012/L 5,1 106/µL = 5,1 1012/L 5,1 106/mm3 = 5,1 1012/L • Ematocrito L/L Æ x 100 Æ % 0,45 L/L x 100 = 45 % • Emoglobina g/dL Æ x 10 Æ g/L mmol/L Æ x 16,1 Æ g/L 14 g/dL x 10 = 140 g/L 5,56 mmol/L x 16,1 = 88 g/L • MCH fmol Æ x 16,1 Æ pg 1,89 fmol x 16,1 = 30 pg • MCHC mmol/L Æ x 16,1 Æ g/L 20,6 mmol/L x 16,1 = 332 g/L • MCV µ3 = fL 89 µ3 = 89 fL • Leucociti 106/LÆ ÷ 1 000 Æ 109/L 103/µL = 109/L 103/mm3 = 109/L 7 200 106/L ÷ 1 000 = 7,2 109/L 7,2 103/µL = 7,2 109/L 7,2 103/mm3 = 7,2 109/L • Trombociti 106/LÆ ÷ 1 000 Æ 109/L 103/µL = 109/L 103/mm3 = 109/L 151 000 106/L ÷ 1 000 = 151 109/L 151 103/µL = 151 109/L 151 103/mm3 = 151 109/L Particolarità legate a metodi e/o apparecchi ———————————————————————————— E’ importante seguire attentamente le istruzioni del suo apparecchio. Per qualsiasi domanda inerente l’utilizzo dei diversi apparecchi, la invitiamo a contattare il rispettivo rappresentante. • MS4: analizzare il campione di CQE in modalità “controllo”. • Poch-100i: utilizzare gli adattatori (beige) per i prelievi di sangue venoso. • Seditainer®: Sul nostro sito Internet troverà una guida pratica per la determinazione del CQE: http://www.cscq.ch/SiteCSCQ/FichierPDF_IT/VS-GuidaPraticaBD.pdf • Velocità di eritrosedimentazione: alcuni apparecchi estrapolano un risultato dopo 20–30 minuti, e ciò equivale ad un valore ottenuto con una lettura manuale dopo 1 ora. I risultati ottenuti con questi apparecchi vengono valutati in un gruppo separato. CSCQ Manuale Ematologia ed Emostasi © CSCQ Versione: 17.00 Aggiornamento: 2017/01/02 Pagina 3/6 2) Emostasi Caratteristiche ————————————————————————————————————————— Nome del programma Frequenza delle inchieste Identificazione dei campioni Numero di campioni per inchiesta Tipo di campione Tipo di valutazione 1a inchiesta organizzata nel Numero di partecipanti (2017) Descrizione • • HE 4 o 6 volte l’anno, a scelta D-dimero: D-Dimero per NycoCard® e test qualitativi: TP, aPTT, fibrinogeno: aPTT per Hemochron Junior®: TP CoaguChek® XS: TP Hemochron®: TP per microINR® e Xprecia Stride®: TP per i-STAT®: Da 1 a 3 Plasma liofilizzato o liquido Quantitativa e qualitativa 1972 Totale: 3740 DD DN T1 T3 K2 K3 K4 K5 ——————————————————————————————————————————— Questo programma è destinato a tutti gli apparecchi per l’emostasi, inclusi i POCT. Ogni campione è destinato a parametri specifici. E’ importante utilizzare il campione adatto, a seconda del parametro da analizzare. Ogni apparecchio risp. ogni metodica richiede il suo specifico campione. Ogni cambiamento d’apparecchio e/o di metodica-reagente ci va quindi comunicato al più presto. Le valutazioni quantitative vengono effettuate in funzione dei diversi parametri e dei metodi utilizzati. • • Parametri valutati Codice CSCQ 691 692 693 68 ; ; ; ; 67 ; 65 ; 66 ; 6500 6501 694 ; • • # • ———————————————————————————————————————— Nome P-D Dimero P-D Dimero P-D Dimerp qualitativo P-Fibrinogeno P-Tromboplastina parziale, Tempo di P-Tromboplastina INR, Tempo di P-Tromboplastina %, Tempo di Lotto numero, CoaguChek Lotto numero, ProTime Lotto numero, D-dimero Abbreviazione Codice OPre Valutazione QUALAB Criterio di qualità ± 21 % ± 21 % Giusto ± 15 % P-DDi P-DDi P-DDi ql P-Fibr 1260.00 1260.00 1259.00 1320.00 P-aPTT 1019.00 ± 25 % P-TP-INR P-TP-% Lot.CoaguC Lot. N.PrT Lot. N. DD 1700.00 1700.00 ---- ± 15 % ± 15 % ---- # Tolleranza CSCQ Risultato: esempio Unità ± 20 % ± 20 % Giusto ± 10 % 0,28 0,14 Positivo 3,2 mg/L FEU mg/L DD mg/L g/L ± 10 % 34 s ±8% ± 15 % ---- 1,7 41 654 32B L4P3C227 D20134 INR % ---- Parametri attualmente sottoposti obbligatoriamente a un CQE, secondo la QUALAB. Valutazione QUALAB – “criteri di numero”: per tutti i parametri, il 75 % dei risultati dev’essere conforme. Il tempo di tromboplastina (TP, Quick) può essere espresso in INR e in %. I laboratori che utilizzano entrambe le unità devono iscriversi sia per il metodo TP-INR sia per il TP-%. TP-INR: se il valore bersaglio è < 1,3, la tolleranza QUALAB è di ± 0,2. Il numero di lotto è utilizzato in caso di valutazioni particolari. CSCQ Manuale Ematologia ed Emostasi © CSCQ Versione: 17.00 Aggiornamento: 2017/01/02 Pagina 4/6 Conservazione, stabilità e fase pre–analitica • • • • • Il campione liquido o liofilizzato dev’essere conservato in frigorifero (+2 – +6°C). Il campione è stabile fino alla data di scadenza riportata sul flacone. Portare il campione a temperatura ambiente (20–25°C), durante circa 30 minuti, prima di eseguire le analisi. Appena prima di effettuare le analisi, omogeneizzare il campione capovolgendolo delicatamente più o utilizzando un agitatore a rulli. Evitare la formazione di schiuma. Per il campione liofilizzato, vedere qui sotto. Campioni di controllo • ——————————————————————————— —————————————————————————————————————— Qualsiasi campione biologico dev’essere considerato come potenzialmente infettivo. Ricostituzione del campione liofilizzato T1: Per aggiungere l’acqua distillata, non va utilizzata alcuna siringa. Non bisogna utilizzare diversi volumi di diluente o riempire direttamente il flacone. 1. Far precipitare tutto il liofilizzato sul fondo del flacone. 2. Aprire delicatamente il flacone evitando assolutamente ogni perdita di materiale (lasciar penetrare dell’aria prima di aprire completamente il flacone). 3. Utilizzando una pipetta certificata o garantita, aggiungere il volume esatto di acqua distillata (o bi-distillata) indicato sul flacone (in generale 1 mL). L’acqua deve essere a temperatura ambiente. 4. Richiudere il flacone e lasciarlo riposare per 15–20 minuti al riparo dalla luce, senza agitarlo. 5. Mescolare delicatamente il campione per inversione (circa 30 volte) oppure per 10 min. utilizzando un agitatore a rulli o rotante. Evitare la formazione di schiuma. 6. Verificare che tutto il liofilizzato si sia sciolto e procedere alle analisi. K2 e K5: Il materiale va conservato in frigorifero (+2 – +6°C) fino al momento della ricostituzione (1 fiala con plasma liofilizzato, 1 fiala di diluente, 1 pipetta Pasteur di plastica). Aggiungere il diluente con la pipetta Pasteur allegata. K3: Il materiale va conservato in frigorifero (+2 – +6°C) fino al momento della ricostituzione (1 provetta di plastica contenente il diluente e 1 fiala di vetro contenente sangue liofilizzato). K4: Il materiale va conservato in frigorifero (+2 – +6°C) fino al momento della ricostituzione (1 flacone di plasma liofilizzato, 1 pipetta di plastica contenente il diluente). • L’errore di ricostituzione dev’essere < 3 %. Una procedura per la verifica delle pipette si trova sul sito del CSCQ sotto Documenti / Allegati del Manuale / “Verifica delle pipette”. • Una volta ricostituito, il campione va analizzato immediatamente, o altrimenti va conservato in frigorifero (+ 2°C - + 6°C) .La tabella seguente indica i limiti massimi di tempo entro i quali eseguire le analisi. Immediatamente aPTT Unità e fattore di conversione D-dimero CSCQ Manuale Limiti massimi dopo la ricostituzione < 1 ora Fibrinogeno TP —————————————————————————————————— Per agevolare l’acquisizione del risultato del D-Dimero, il CSCQ propone il parametro 691 per i sistemi analitici che danno il risultato in unità FEU (Fibrinogen Equivalent Unit) e il parametro 692 per quelli che danno il risultato in unità DD (D-Dimer Units). Ematologia ed Emostasi © CSCQ Versione: 17.00 Aggiornamento: 2017/01/02 Pagina 5/6 Particolarità legate a metodi e/o apparecchi ———————————————————————————— E’ importante seguire attentamente le istruzioni del suo apparecchio. Sul nostro sito Internet sono disponibili alcuni manuali in versione semplificata: http://www.cscq.ch/SiteCSCQ/SiteCSCQ_IT/DocumentationIT.html Per qualsiasi domanda riguardante l’utilizzo di questi apparecchi, la preghiamo rivolgersi ai rispettivi rappresentanti. Particolarità legate all’esame del D-dimero ——————————————————————————— I risultati qualitativi devono essere espressi con “positivo” o “negativo”. E’ importante seguire attentamente il manuale d’uso del fabbricante dell’apparecchio e trattare il campione di CQE come un campione di paziente. A n n o t a z i o n i CSCQ Manuale Ematologia ed Emostasi © CSCQ Versione: 17.00 Aggiornamento: 2017/01/02 Pagina 6/6