CHE IMPORTANZA HA LA STRUTTURA? WHY STRUCTURE?
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CHE IMPORTANZA HA LA STRUTTURA? WHY STRUCTURE?
CHE IMPORTANZA HA LA STRUTTURA? IL RUOLO ESSENZIALE DELLE CORRELAZIONI TRA STRUTTURA E FUNZIONE NEL RIVELARE IL MECCANISMO DI ACCOPPIAMENTO ECCITAZIONE-CONTRAZIONE NEL MUSCOLO WHY STRUCTURE? THE CONTRIBUTION OF STRUCTURE-FUNCTION CORRELATIONS TO THE UNDERSTANDING OF EXCITATION-CONTRACTION COUPLING IN MUSCLE Clara Franzini-Armstrong L ’architettura tridimensionale dei muscoli striati aiuta a comprendere le correlazioni tra struttura e funzione che sono alla base dell’interpretazione di molti se non tutti i processi funzionali degli organismi viventi. In questo articolo si considera il ruolo storico delle scoperte strutturali che hanno guidato la rivelazione del meccanismo di accoppiamento tra eccitazione e contrazione (e-c) nel muscolo. Un tema comune è che la ricerca comparativa nella scala zoologica è stata molto produttiva rivelando la massima parte dei meccanismi di base di questo fondamentale meccanismo. Andrew F. Huxley nel 1971 pro30 T he stereotyped architecture of striated muscles simplifies the task of establishing structure-function correlations. This review illustrates the historical role played by structural considerations in uncovering the basic mechanisms underlying the events in muscle activation, collectively called excitation-contraction (e-c) coupling. One connecting thread in this account is the extremely fruitful use of “Nature’s experiments” in solving outstanding questions. Andrew F. Huxley (1971) convincingly argues the case for com- p H s ci e n c e • 1 - 2011 pose, in maniera convincente, il vantaggio di studiare le diverse tipologie muscolari striate che sono presenti in natura. Gli interventi sperimentali fatti con l’intento di estendere e confermare i dati ottenuti in questo modo sono, invece, relativamente recenti. L’Autrice è costretta, per brevità, a ridurre i riferimenti bibliografici, e si scusa per non poter citare i numerosi scienziati che, per un periodo di più di cinquanta anni, hanno contribuito a delineare i contorni di questa affascinante storia. IL PROBLEMA Gli esperimenti iniziali di elettrofisiologia hanno messo in evidenza che le proprietà passive delle fibre muscolari erano alquanto differenti da quelle degli assoni neuronali. Il calcolo effettuato indicava un’apparente capacitanza specifica di ~ 8 !F/cm2 per la rana e ~ 40 !F/cm 2 per il granchio (Fatt e Katz, 1953). Le osservazioni strutturali, mostrando che la membrana cellulare della fibra penetra a formare i tubuli trasversali (T) e anche delle pieghe estese nel granchio, sono la base per parative approaches using the wonderful variety of existing muscle types. Human experimental interventions aimed at further altering what Nature provided are relatively recent. The author regrets the necessity of referring to a very limited number of publications (mostly review articles), thus failing to give credit to the numerous scientists that have contributed to this story over a period of over 50 years. AN APPARENT PUZZLE With the use of internal microelectrodes it was discovered that passive electrical properties of muscle fibers differed from those of axons. The apparent specific membrane capacitance was ~ 8 !F/cm2 for frog and ~ 40 !F/ cm2 for crab (Fatt and Katz, 1953). Structural observations directly solved this mystery by showing that the surface plasmalemma invaginates into transverse (T) tu- p H s ci e n c e • 1 - 2011 la soluzione di quest’apparente discrepanza. La superficie esterna delle fibre muscolari è difatti molto più estesa di quella che può apparire a un’osservazione bidimensionale e ciò implica un’alta capacitanza totale. Con l’aggiunta delle caveole, si calcola infatti che la capacitanza specifica delle fibre di rana è 0,8 !F/ cm 2 (Franzini-Armstrong, 2004). La soluzione del problema Nel 1949 il fisiologo inglese A.V. Hill aveva posto l’attenzione su un punto fondamentale dell’accoppiamento elettromeccanico: tutta la fibra è attivata subito dopo la depolarizzazione del plasmalemma più rapidamente di quello che ci si potesse aspettare sulla base della diffusione, dalla periferia al centro, di un elemento attivatore (successivamente identificato con il Ca 2+) generato alla superficie. Il problema attrasse l’attenzione di Huxley il quale ideò una serie di esprimenti di “stimolazione localizzata”, dove piccole zone della superficie esterna della fibra erano depolarizzante, mentre la contrazione locale dei sarcomeri veniva registrata al microscopio ottico. Con questo metodo venne dimostrata la necessità della presenza di un elemento conduttore bules and also into large folds in crab fibers, thus increasing the effective surface area and accounting for the large specific capacitance values. Further consideration of the caveolae reduced the calculated specific capacitance of frog fibers to 0.8 !F/ cm2 (Franzini-Armstrong, 2004) Solution to a question In 1949 the English physiologist A.V. Hill identified a challenge to e-c coupling: the entire fiber cross section is activated following plasmalemma’s depolarization faster than could be accounted for by inward diffusion of a solute (Ca 2+) generated at the fiber surface. This stimulated the imagination of Huxley. In a series of “local stimulation” experiments he combined localized depolarization of small surface patches with imaging of the resulting sarcomere shortening, demonstrating the presence of a component that could transmit the effect of depolarization into the fiber interior (AF Huxley, 1971). By lucky coincidence, EM 31 che potesse trasmettere la depolarizzazione in direzione trasversale entro la fibra (AF Huxley, 1971). Per buona fortuna, il reticolo sarcoplasmatico (RS), i tubuli trasversi (T) e le triadi furono proprio allora descritti in ME (Porter and Palade, 1957). Così gli esperimenti di Huxley, che aveva affrontato il problema con metodo comparativo, usando muscoli di rana, lucertole e granchi, trovò la sua naturale conferma dalla presenza di alcune delle strutture evidenziate al ME. Ciò permise di correlare in maniera incontrovertibile le zone attive con la posizione dei tubuli T (figura 1) e dette inizio alla ricerca sull’accoppiamento e-c. Dalle osservazioni ultrastrutturali allora disponibili, però, mancava ancora un elemento essenziale: la dimostrazione che i tubuli T sono aperti alla superficie verso l’interstizio. La continuità diretta tra il tubulo T e il plasmalemma fu rivelata prima nei muscoli d’insetti, poi nel muscolo scheletrico e fu confermata indirettamente con l’infiltrazione nel lume dei tubuli T di tracer visibili al microscopio elettronico o per fluorescenza (Franzini-Armstrong, 2004). I due ultimi metodi sperimentali sono oggi di uso corrente nello studio delle alterazioni al sistema di tubuli T indotte da eventi patologici. was just then describing the sarcoplasmic reticulum (SR), triads and T tubules (Porter and Palade, 1957). AF Huxley approached the problem using a variety of sources: frog, lizard and crab. The comparative approach was essential to the triumphant meshing of function and structure that quickly followed, allowing a correspondence to be established between activation hot spots and the mouth of T tubules. This provided the basis for inward spread of activation (Fig. 1), and initiated the modern era of e-c coupling research. A key element was still missing: a visualization of the continuity between the membranes of T tubules and plasmalemma. This was first detected in insect muscle, later shown in skeletal muscles and indirectly confirmed by infiltration of electron dense and/or fluorescent tracers into the tubule lumen (Franzini-Armstrong, 2004). The latter experimental approaches are current in the study of T tubules alterations under pathological conditions. 32 LA RESISTENZA DI ACCESSO Nello studio delle proprietà elettriche passive dei tubuli T si evidenziò subito una complicazione. Le soluzioni dei complessi modelli elettrotonici sviluppati per spiegare le proprietà delle reti di tubuli T prevedevano una resistenza di “accesso” al lume dei tubuli T. Questo si supponeva indicasse l’esistenza di un cancello o un restringimento dell’apertura del tubulo verso l’interstizio. Anche in questo caso, la struttura risolse il dubbio, dimostrando che in effetti i segmenti periferici dei tubuli T sono di forma molto complessa e che le aperture della rete di tubuli che attraversa la fibra sono poche e spesso a diametro ridotto. Tutti questi fattori contribuiscono a produrre una, relativamente elevata, resistenza di accesso al lume dei tubuli. QUALE STRUTTURE SEQUESTRANO IL Ca 2+? La scoperta, nel muscolo striato, della conduzione del segnale elettrico via tubuli T chiarisce il problema del tempo di latenza che coincide con la diffusione della de- THE ACCESS RESISTANCE A complication soon arose in determining the passive electrical properties of T tubules. The solutions of complicated modeling required an access resistance perhaps either a “plug” or narrowing at the mouth of the tubules or complicated network factors. Again, structural considerations helped elucidate the problem. EM showed that the most peripheral segments of the T tubule network are often quite convoluted and the actual openings are limited in frequency and narrow. These configurations would result in an apparent access resistance. WHICH ELEMENTS SEQUESTER Ca 2+? Discovery of electrical events in T tubules solved the question of timing, but did not identify the source of p H s ci e n c e • 1 - 2011 Figura 1 Sezioni longitudinali di muscoli scheletrici di rana (a) e lucertola (b). Triadi col tubulo T centrale sono in prossimità della linea Z e della giunzione A-I (frecce), dove la depolarizzazione localizzata produce una contrazione. Figure 1 Longitudinal sections of skeletal muscles from frog (a) and lizard (b). Triads with a central T tubule (arrows) are located at the Z line and A-I junction respectively. The location coincides the sites at which local depolarization elicits an inward spread of contraction. polarizzazione, ma non identifica le strutture di origine del Ca 2+ necessario per attivare, o disinibire, la contrazione. Queste strutture furono definite solo quando vennero identificati i sistemi interni che riprendono il Ca 2+ durante il rilasciamento del muscolo. Anche qui la ME ha giocato un ruolo fondamentale. Nel 1962 Ebashi and Lipmann scoprirono che la frazione dell’omogenato di muscolo che ha un effetto rilasciante è composta di vescicole che derivano dal RS. Quest’ultime sono dotate, nella membrana, di un sistema di pompaggio del Ca 2+ la cui azione nell’accumulare Ca 2+ al loro interno spiega completamente il rilasciamento muscolare (Weber et al., 1963). A differenza del muscolo scheletrico dove il ciclo del Ca 2+ è ben controllato e per lo più ristretto al ciclo interno del RS, il muscolo cardiaco ha un traffico notevole di Ca 2+ anche attraverso il plasmalemma, per mezzo dei canali voltaggio-dipendenti (CaV1.2), dello scambio Na/Ca e di una pompa del Ca 2+ della membrana esterna. p H s ci e n c e • 1 - 2011 Ca 2+ necessary for activating (or disinhibiting) contraction. That question was addressed by defining the fiber component responsible for Ca 2+ uptake during relaxation. Here again EM played a major role. The fraction of the muscle homogenate that accounted for relaxation by sequestering Ca 2+ was discovered to be a collection of vesicles derived from the SR (Ebashi and Lipmann, 1962). The vesicles had an intrinsic ATPase (the Ca 2+ pump) in their membrane and by their action in accumulating Ca 2+ they could fully account for relaxation (Weber et al., 1963). In skeletal muscle Ca 2+ cycling is very tight: very little Ca 2+ enters the fiber at each action potential and very little of course exits after contraction. The SR is a very efficient Ca 2+ sink. In cardiac muscle on the other hand, there is considerable trafficking of Ca 2+ across the plasmalemma, via the voltage gated calcium channels (CaV1.2), the Na/Ca exchange and the plasmalemma’s Ca 2+ pump. 33 UN’IDEA SBAGLIATA! Una volta saputo che il tubulo T conduce la depolarizzazione e che il RS immagazzina Ca 2+, è chiaro che la sequenza degli eventi depolarizzazione ! liberazione di Ca 2+ !" contrazione, impone che i tubuli T e il RS debbano comunicare tra loro. Anche in questo caso l’analisi della struttura ha preceduto la definizione del meccanismo fisiologico con la scoperta delle triadi nel muscolo scheletrico e poi delle diadi e i peripheral couplings nel muscolo cardiaco (Porter and Palade, 1957). Questi elementi costituiscono variazioni strutturali di un tema comune: l’accoppiamento di domini specializzati del RS (il RS giunzionale, RSg) con i tubuli T (triadi e diadi) o il plasmalemma (peripheral couplings, PCs). Si era inizialmente proposto che la connessione T/RS (triade) potesse costituire un tipo di sinapsi elettrica, in cui la corrente, passando dal tubulo T al RS, potesse depolarizzare direttamente il reticolo. Invece dall’analisi strutturale fu subito evidente che la superficie totale del RS è ~ 10 volte maggiore di quella dei tubuli T (figura 2a). Considerando la placca motrice, alcuni anni prima, Del Castillo e Katz avevano calcolato che un simile rapporto di superfici tra il nervo terminale e la fibra musco- A WRONG IDEA! Once it was clear that T tubules transmit the depolarization and that the SR contains Ca 2+, it was clear that somehow T and SR must communicate. Here structural findings preceded functional discoveries with the description of triads in skeletal muscle (Porter and Palade. 1957), followed shortly by that of dyads and peripheral couplings in cardiac and invertebrate muscles. These elements are structural variations on one theme: they all consist of specialized SR domains (the junctional, jSR) that come to close proximity to either T tubules (triads and dyads) or plasmalemma (peripheral couplings, PCs). It was initially proposed that the T tubule/ SR connection could be a type of “electrical synapse” by which the T tubule could depolarize the SR by direct current flow. However the SR surface area is higher than that of T tubules by ~ ten fold (Fig. 2A). In considering motor endplates, at an earlier date, Del Castillo 34 lare avrebbe reso un sinapsi elettrica non efficace per via di un impedance mismatch. Il problema fu risolto con l’identificazione della natura chimica della sinapsi neuromuscolare, ma nel caso delle triadi, dopo infruttuosi tentativi per l’identificazione di un trigger chimico, si andò alla ricerca di un nuovo meccanismo, con la guida di considerazioni strutturali. UNA FUNZIONE IN CERCA DI UN CANALE L’attivazione del muscolo è iniziata dalla depolarizzazione del plasmalemma (e dei tubuli T), suggerendo l’esistenza di un “sensore di voltaggio”. Schneider e Chandler (1973) sono andati in cerca di un segnale elettrico che potesse rivelare la presenza di un tale componente. Hanno rivelato un “movimento di carica” attivato ai potenziali critici per l’attivazione del muscolo. Anticiparono il futuro proponendo che il “sensore di voltaggio” con componente molecolare non ancora identificata, potesse controllare la permeabilità di un canale di rilascio del Ca 2+ del RS per mezzo di un’interazione molecolare diretta. Questa è una predizione che precedette e guidò il cammino della ricerca sull’accoppiamento e-c per molti anni. and Katz calculated that an equivalent difference between nerve terminal and muscle fiber would result in an impedance mismatch such that the nerve could not effectively depolarize the muscle. A chemical synapse was the alternative in the case of the neuromuscular junction, a new mechanism had to be discovered for the triad, and structure helped to guide thinking. A FUNCTION WITHOUT A CHANNEL Muscle activation is initiated by a depolarization of the surface membrane, implying the presence of a “voltage sensor”. Schneider and Chandler (1973) looked for an electrical signal that would betray the presence of such a component. They detected such a signal in the form of a “charge movement” at voltages critical for the initiation of contraction, and they anticipated the future by suggesting that the yet uniden- p H s ci e n c e • 1 - 2011 Figura 2 Sezioni longitudinali di muscolo EDL nel topo. a, I colori indicano: verde RS libero; turchese RS giunzionale; arancione tubuli T; viola: mitocondri. La superficie del RS è più larga che quella dei tubuli T. b, Dettaglio di una triade con densità periodiche, i piedi, o RyR o canali di rilascio del calcio tra le due cisterne del RSg e i tubuli T. Figure 2 Longitudinal sections from mouse EDL muscle. a, Compartments are color-coded. Green: free SR. Turquoise: jSR. Orange: T tubules. Purple: mitochondria. The SR has a surface area much larger than T tubules. b, Detail of a triad showing periodically disposed densities, the feet, between the two jSR cisternae and the central T tubule. Feet are ryanodine receptors or SR Ca2+ release channels. I CANALI DEL RILASCIO DEL Ca 2+ Il canale che permette l’uscita del Ca 2+ dal RS fu alla fine trovato proprio nella membrana che si affaccia verso i tubuli T. Triadi, diadi e PCs hanno gli stessi componenti. In particolare, lo spazio tra il RSg e il tubulo T è occupato da strutture chiaramente visibili al ME denominate “piedi” (figura 2b) (Franzini-Armstrong, 2004). I piedi sono parte della membrane del RS e sono presenti in tutti i muscoli, una dimostrazione della loro importanza fondamentale nell’accoppiamento e-c. Nel 1985 Pessah identificò un sito ad alta affinità per la rianodina nel RSg dei muscoli scheletrici e cardiaci. Poco dopo la molecola chiamata “recettore della rianodina” (RyR) fu purificata e identificata con il canale che rilascia il Ca2+ dal RSg. Fu subito chiaro che il RyR isolato aveva le stesse dimensioni e le stesse quattro subunità dei piedi, indicando che il rilascio del Ca2+ avviene proprio dove il RSg si accoppia al tubulo T (Block et al., 1988). Quindi si può identificare la funzione di triadi, diadi e PC come unità di rilascio del Ca2+ o, in breve, CRUs. p H s ci e n c e • 1 - 2011 tified voltage sensor would control yet unidentified SR channels by some direct, or “mechanical” interaction. This was an incredible foresight, that predicted and guided the course of future e-c coupling research. THE Ca 2+ RELEASE CHANNELS The channel that allows the release of Ca 2+ from the SR was indeed found to be located where the SR faces the T tubules, ready to get a signal from them. A feature common to triads, dyads and PCs is the presence of a junctional gap occupied by large structures, the feet, see Fig. 2B (Franzini-Armstrong, 2004). Feet belong to the jSR membrane and are present in all muscles indicating that they are an essential feature of the muscle cell. In 1985 Pessah identified a high affinity ryanodine binding site on the jSR of skeletal and cardiac muscle 35 INTERAZIONE TRA DUE CANALI DEL Ca 2+ L’identificazione del sensore di voltaggio con un canale del calcio ad attivazione lenta, CaV1, richiese vari anni, perché la natura ha giocato uno scherzo ai fisiologi: il canale in questione porta pochissima corrente nel muscolo scheletrico (o addirittura nulla nel muscolo di pesce) quando è attivato. Da ciò ne deriva che il passaggio di corrente di Ca2+ attraverso il canale non è necessario per attivare il muscolo. Comunque il canale è bloccato dalle diidropiridine, un profilo farmacologico che ne permise l’identificazione, la purificazione e la localizzazione nei tubuli T. Nel 1987 Rios e Brum scoprirono che le diidropiridine hanno un effetto sia sul canale CaV1.1 del muscolo scheletrico sia sulla liberazione del Ca 2+ dal SRg: indicando, con ciò, una relazione tra i due fenomeni. La prova finale fu ottenuta analizzando i muscoli provenienti da un topo con una mutazione spontanea, in cui il canale CaV1.1 non veniva espresso in maniera normale e perciò mancavano sia la corrente di Ca 2+ sia il “movimento di carica” nei tubuli T. A ciò corrispondeva il blocco dell’accoppiamento e-c. Tutti questi difetti erano riconducibili alla mancanza della subunità "1 di CaV1.1 (Knudson et al., 1989) e venivano eliminati utilizzando la tecnica di ripri- and briefly after the ryanodine receptor (RyR) was purified and identified as the SR Ca 2+ release channel. Importantly, the isolated RyR had the same structure as the feet, indicating that Ca 2+ is released where the SR contacts the T tubules (Block et al., 1988). Triads, dyads and PCs can thus be functionally identified as Ca 2+ release units or CRUs. TWO INTERACTING Ca 2+ CHANNELS Identification of the voltage sensor as a slow activating Ca 2+ channel, CaV1, took a few more years because Nature played a bad trick on physiologists: the channel carries very little current in skeletal muscle. However, it also has a specific pharmacological profile: a high affinity for dihydropyridines, a property that allowed its isolation and identification as a component of T tubules. 36 stino del gene mancante mediante inclusione del cDNA corrispondente. Nel frattempo la ME era di nuovo all’avanguardia. La tecnica di criofrattura rivelava la presenza di una proteina intrinseca dei tubuli T organizzata in gruppi di quattro (tetradi) che erano perfettamente allineate con i piedi del RSg (figura 3a,b) (Block et al. 1988). L’ipotesi iniziale che le tetradi dei tubuli T rappresentino gruppi di quattro canali CaV1.1 direttamente attaccati alle quattro subunità dei piedi (RyR) fu confermata dalla mancanza di tetradi nel muscolo disgenico (KO per la subunità alfa1) e il loro ripristino col cDNA per CaV1.1. L’ipotesi corrente che il CaV1.1 interagisce direttamente con RyR1 nel muscolo scheletrico è confermata dalla dimostrazione che i due canali hanno una reciprocità funzionale (Nakai et al., 1996) che deriva dalla relazione diretta tra piedi e tetradi. CARDIACO VERSUS SCHELETRICO La natura ha provveduto a formare un’altra situazione sperimentale interessante. All’inizio dell’evoluzione dei vertebrati ci fu un raddoppiamento del numero dei Rios and Brum (1987) found that dihydropyridines affected both the channels and SR c Ca 2+ release providing the first indication of a relationship between the two. The clinching proof came with the dysgenic mouse model, in which lack of slow Ca 2+ current and charge movement coincided with e-c coupling block. All defects were due to lack of CaV1.1 "1 subunit (Knudson et al., 1989). and were restored by its cDNA. In the meantime, EM was again a step ahead. The freeze-fracture technique revealed an intrinsic protein of T tubules organized in small groups of four (the tetrads) in perfect alignment with the underlying SR feet, see Fig. 3A and B (Block et al. 1988). Once the voltage sensors of e-c coupling were identified, the connection was quickly made with the proposal that T tubule tetrads represented clusters of four CaV1.1 channels specifically locked in position over the RyR1 and this was confirmed by lack of tetrads in dysgenic muscles and its restoration by CaV1.1 cDNA.. p H s ci e n c e • 1 - 2011 Figura 3 Diagramma (sinistra) e immagini di criofrattura (destra) dimostrano il rapporto tra tetradi di CaV1.1 e RyR1 in muscolo scheletrico (a e b) e tra CaV1.2 e RyR2 nel muscolo cardiaco (c e d) (d, foto di F. Protasi). Figure 3 Diagrams (at left) and freeze-fracture images (at right) showing the retaionship between CaV1.1/ RyR1 in skeletal (a and b) and RyR2/Cav1.2 cardiac (c and d) muscles (d, courtesy of F. Protasi. geni e si stabilirono così i rapporti strutturali dell’attivazione del muscolo scheletrico: CaV1 tetradi e interazione diretta tra CaV1.1 e RyR1 (DiBiase e FranziniArmstrong, 2005). Nel processo evolutivo il muscolo cardiaco rimase, per così dire, indietro mantenendo il meccanismo degli invertebrati, in cui la corrente di Ca 2+ attraverso il canale CaV1.2 è necessaria per l’attivazione (vedi gli esperimenti classici di Ringer). Rispetto a CaV1.1, CaV1.2 ha una cinetica d’attivazione più rapida e una corrente più forte. Prese piede così l’ipotesi che l’interazione tra CaV1.2 e RyR2 nel muscolo cardiaco fosse mediata dal Ca 2+ stesso. Il meccanismo ipotizzato prese il nome di Ca 2+ induced Ca 2+ release, (CICR; Fabiato, 1989). Il meccanismo di CICR necessita di una vicinanza tra i due canali, ma non ha bisogno che essi siano connessi direttamente. In effetti la ME dimostra proprio questo: il canale CaV1.2 nel muscolo cardiaco è associato con le CRUs in vicinanza dei RyR2, ma non forma tetradi e quindi non è direttamente connesso con esse, (figura 3c,d; Protasi et al., p H s ci e n c e • 1 - 2011 The current hypothesis that CaV1.1 directly interacts with RyR1 in skeletal muscle is strongly supported by the demonstration of a reciprocal interaction between the two channels (Nakai et al., 1996) and by the tetrad/ feet relationship. CARDIAC VERSUS SKELETAL Nature provides an additional experiment. At the threshold of vertebrate evolution a duplication of muscle genes occurred and the paradigms of skeletal muscle e-c coupling (direct interaction and structural association of CaV1and RyR) were established (DiBiase and Franzini-Armstrong, 2005). In this process cardiac muscle was left behind, maintaining the e-c coupling mechanisms of invertebrate muscles. Differently from skeletal, cardiac muscle requires extracellular Ca 2+ for e-c coupling (see the classical experiments by 37 1996). Anche in questo caso, la struttura conferma e rinforza i concetti funzionali. Le diverse relazioni tra struttura e funzione nei muscoli scheletrici e cardiaci hanno offerto potenti metodi sperimentali. Il concetto che l’associazione diretta tra le tetradi di CaV1.1 e i RyR1 è necessaria per l’accoppiamento funzionale di tipo scheletrico e che la prossimità tra CaV1.2 e RyR2, senza bisogno di legame diretto è sufficiente per il coupling cardiaco è stato confermato in numerosi esperimenti degli ultimi 10-15 anni. Clara Franzini-Armstrong University of Pennsylvania, Philadelphia (PA) USA [email protected] Ringer), and its Ca 2+ channel (CaV1.2) has faster activation kinetics and larger currents than CaV1.1. The concept was developed that CaV1.2 interacts with RyR2 in cardiac muscle by an indirect link via Ca 2+ (calcium induced calcium release, CICR, reviewed by Fabiato, 1989). CICR would require proximity between the two channels but not necessarily a locked position. Indeed this is what EM shows: CaV1.2 in cardiac muscle is associated with CRUs, but does not aggregate into tetrads (Protasi et al., 1996). Again, structure supports and strengthens functional concepts (Fig. 3, C and D). Structure/function differences between skeletal and cardiac e-c coupling have provided powerful research tools. The concepts that tetrads/feet association is required for a skeletal type e-c coupling independent of extracellular Ca 2+ and mediated by a direct CaV1/RyR1 interaction, and that close CaV1.2-RyR2 positioning, but not close association, is sufficient for cardiac-type e-c coupling have been repeatedly tested and stood the test of time. 38 Bibliografia - Bibliography Block BA, Imagawa T, Campbell KP, Franzini-Armstrong C (1988) Structural evidence for direct interaction between the molecular components of the transverse tubule/sarcoplasmic reticulum junction in skeletal muscle. J Cell Biol 107:2587-2600. Di Biase V, Franzini-Armstrong C (2005) Evolution of skeletal type e-c coupling: a novel means of controlling calcium delivery. J Cell Biol 171:695-704. Ebashi S, Lipmann F (1962) Adenosine Triphosphate-Linked Concentration of Calcium Ions in a Particulate Fraction of Rabbit Muscle. J Cell Biol 14:389-400. Fabiato A (1989) Appraisal of the physiological relevance of two hypothesis for the mechanism of calcium release from the mammalian cardiac sarcoplasmic reticulum: calcium-induced release versus charge-coupled release. Mol Cell Biochem 89:135-140. Fatt P, Katz B (1953) The electrical properties of crustacean muscle fibres. J Physiol 120:171-204. Franzini-Armstrong C (2004) The Membrane Systems of Muscle Cells In Engel, A.G. and Franzini-Armstrong, C. Eds. Myology III Edition. McGrawHill NY, pp 232-256. Huxley AF (1971) The activation of striated muscle and its mechanical response. Proc R Soc Lond B Biol Sci 178:1-27. Knudson CM, Chaudhari N, Sharp AH, Powell JA, Beam KG, Campbell KP (1989) Specific absence of the alpha 1 subunit of the dihydropyridine receptor in mice with muscular dysgenesis. J Biol Chem 264:1345-1348. Nakai J, Dirksen RT, Nguyen HT, Pessah IN, Beam KG, Allen PD (1996) Enhanced dihydropyridine receptor channel activity in the presence of ryanodine receptor. Nature380:72-75. Porter KR, Palade GE (1957) Studies on the endoplasmic reticulum. III. Its form and distribution in striated muscle cells. J Biophys Biochem Cytol 3:269-300. Protasi F, Sun X-H, Franzini-Armstrong C (1996) Formation and maturation of calcium release units in developing and adult avian myocardium. Dev. Biol. 173:265-278, 1996. Rios E, Brum G (1987) Involvement of dihydropyridine receptors in excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Nature 325:717-720. Schneider MF, Chandler WK (1973) Voltage dependent charge movement of skeletal muscle: a possible step in excitationcontraction coupling. Nature 242:244-246. Weber A, Herz R, Reiss I (1963) On the mechanism of the relaxing effect of fragmented sarcoplasmic reticulum. J Gen Physiol 46:679-702. Acknowledgements: Supported by NIH RO1 HL 48093 p H s ci e n c e • 1 - 2011